Glutathione-S-transferases belong t

Glutathione-S-transferases belong to phase II detoxification enzyme family. The functions of GSTs include catalysis of tripeptide glutathione (GSH) conjugation with diverse electrophilic substrates, metabolism of toxic substances, and protection of cells from oxidative damage (Hao et al., 2008). The significant elevation of GST subsequent to both cyanotoxins exposure observed in the present study could be due to higher rates of MCs or CYN conjugation in the cells, and also by transformation of cellular components damaged by ROS (Storey, 1996).The promotion of oxidative stress in plants caused by exposure to cyanobacterial toxins (Microcystins) has been shown previously in several plants (Chen et al., 2004; Pflugmacher, 2004; Pflugmacher et al., 2006). By contrast, to our knowledge, no data on the toxicity of CYN or mixtures of both cyanotoxins (MCs and CYN) are available in plants. Pflugmacher et al. (2007) found elevated mGST activities in different spinach (Spinacia oleracea) variants exposed to an extract of Microcystis aeruginosa containing MC-LR, under semi-field conditions (0.5 mg/L). Moreover, MC-LR has been reported to be conjugated with GSH as the first step in the detoxification of this cyanobacterial toxin in fish (Pflugmacher et al., 1998). The substantial GSH depletion, observed after CYN oral administration to rats, leads to the hypothesis that CYN can be further metabolized by GSH conjugation (Runnegar et al., 1995), although metabolic information about CYN is very limited and based mainly on indirect observations (Funari and Testai, 2008).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กลูตาไธโอน-S-transferases เป็นของครอบครัวระยะ II ความเอนไซม์ ฟังก์ชันของ GSTs รวมถึงการเร่งปฏิกิริยาของ tripeptide conjugation กลูตาไธโอน (GSH) มีพื้นผิว electrophilic หลากหลาย เมแทบอลิซึมของสารพิษ และปกป้องเซลล์จากความเสียหาย oxidative (Hao et al., 2008) ความสูงอย่างมีนัยสำคัญของ GST subsequent to cyanotoxins แสงทั้งสังเกตในการศึกษาปัจจุบัน อาจจะเนื่องจากราคาสูงของเอ็มซีหรือ CYN conjugation ในเซลล์ และการเปลี่ยนแปลงของส่วนประกอบโทรศัพท์มือถือเสียหาย โดย ROS (ชั้น 1996) ส่งเสริมความเครียด oxidative ในพืชที่เกิดจากการสัมผัสกับสารพิษ cyanobacterial (Microcystins) ได้รับการแสดงไว้ก่อนหน้านี้ในหลายพืช (Chen et al., 2004 Pflugmacher, 2004 Pflugmacher และ al., 2006) โดยคมชัด การเพิ่ม ไม่มีข้อมูลความเป็นพิษของ CYN หรือน้ำยาผสมของทั้งสอง cyanotoxins (เอ็มซีและ CYN) มีอยู่ในพืช Pflugmacher et al. (2007) พบ mGST ยกระดับกิจกรรมย่อยต่าง ๆ ผักโขม (ตื่นสาย Spinacia) สัมผัสกับส่วนของ Microcystis aeruginosa ประกอบด้วย MC-LR สภาวะกึ่งฟิลด์ (0.5 mg/L) นอกจากนี้ MC-LR ได้รับรายงานจะกลวง มี GSH เป็นขั้นตอนแรกในการล้างพิษของสารพิษนี้ cyanobacterial ในปลา (Pflugmacher et al., 1998) การพบ GSH จนหมด สังเกตหลังจากจัดการ CYN ปากหนู นำไปสู่การสมมติฐานว่า CYN สามารถจะเพิ่มเติม metabolized โดยการ conjugation GSH (Runnegar และ al., 1995), แม้ว่าจะเผาผลาญข้อมูลเกี่ยวกับ CYN จำกัดมาก และใช้หลักในการสังเกตทางอ้อม (Funari และ Testai, 2008)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

กลูตาไธโอน-S-รานเป็นระยะที่สองครอบครัวเอนไซม์ล้างพิษ ฟังก์ชั่นของ GSTs รวมถึงปฏิกิริยาของกลูตาไธโอน tripeptide (GSH) ผันกับพื้นผิวที่มีความหลากหลาย electrophilic การเผาผลาญอาหารของสารพิษและการปกป้องเซลล์จากความเสียหายออกซิเดชัน (Hao et al., 2008) ความสูงที่สำคัญของจีเอสทีที่ตามมาทั้ง cyanotoxins การเปิดรับข้อสังเกตในการศึกษานี้อาจเป็นเพราะราคาที่สูงขึ้นของพิธีกรหรือผัน CYN ในเซลล์และยังตามการเปลี่ยนแปลงของชิ้นส่วนโทรศัพท์มือถือความเสียหายจาก ROS (ชั้น 1996) โปรโมชั่นได้โดยเริ่มต้นของการเกิดออกซิเดชัน ความเครียดในพืชที่เกิดจากการสัมผัสกับสารพิษไซยาโนแบคทีเรีย (Microcystins) ได้รับการแสดงก่อนหน้านี้ในพืชหลายคน (Chen et al, 2004;. Pflugmacher 2004. Pflugmacher et al, 2006) ในทางตรงกันข้ามความรู้ของเราไม่มีข้อมูลความเป็นพิษของ CYN หรือผสมของทั้งสอง cyanotoxins (พิธีกรและ CYN) ที่มีอยู่ในพืช Pflugmacher et al, (2007) พบกิจกรรม mGST สูงในผักโขมที่แตกต่างกัน (Spinacia oleracea) สายพันธุ์สัมผัสกับสารสกัดจาก Microcystis aeruginosa มี MC-LR ภายใต้เงื่อนไขกึ่งสนาม (0.5 มก. / ลิตร) นอกจากนี้ MC-LR ได้รับรายงานที่จะผันกับ GSH เป็นขั้นตอนแรกในการล้างพิษของสารพิษไซยาโนแบคทีเรียนี้ในปลา (Pflugmacher et al., 1998) พร่อง GSH มากสังเกตได้หลังการบริหาร CYN ปากหนูจะนำไปสู่​​สมมติฐานที่ว่า CYN สามารถเผาผลาญต่อไปโดยการผัน GSH (Runnegar et al., 1995) แม้ว่าข้อมูลการเผาผลาญเกี่ยวกับ CYN มี จำกัด มากและตามหลักในการสังเกตทางอ้อม ( Funari และ Testai 2008)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

glutathione-s-transferases เป็นของการล้างพิษเอนไซม์ระยะที่ 2 ครอบครัว ฟังก์ชั่นของบริการรวมถึงปฏิกิริยาของไตรเพปไทด์กลูตาไธโอน ( GSH ) การรับกับพื้นผิวหลากหลาย เมแทบอลิซึมของสารพิษ และป้องกันเซลล์จากความเสียหายที่เกิดออกซิเดชัน ( Hao et al . , 2008 )ระดับความสูงที่สําคัญของ GST ที่ตามมาทั้ง cyanotoxins การตรวจสอบในการศึกษาครั้งนี้อาจเป็นเพราะอัตราที่สูงขึ้นหรือซิน ) ในเซลล์ และยังเปลี่ยนแปลงของเซลล์ส่วนประกอบความเสียหาย โดยผลตอบแทน ( ชั้น 1996 )ส่งเสริมความเครียดออกซิเดชันในพืชที่เกิดจากการสัมผัสกับสารพิษระบบยู ( วิธีการใช้ ) ได้แสดงไว้ก่อนหน้านี้ในพืชหลาย ( Chen et al . , 2004 ; pflugmacher , 2004 ; pflugmacher et al . , 2006 ) โดยคมชัด , ให้ความรู้ของเรา ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับความเป็นพิษของซิน หรือส่วนผสมของทั้งสอง cyanotoxins ( MCS ) และซิน ) ที่มีอยู่ในพืช pflugmacher et al .( 2007 ) พบว่ากิจกรรมยกระดับโดยแป้งข้าวเหนียวดัดแปรในผักขมที่แตกต่างกัน ( spinacia oleracea ) ตัวแปรที่สัมผัสกับสารสกัดของแอลเอ ที่มี mc-lr ภายใต้สภาวะกึ่ง ( 0.5 mg / l ) นอกจากนี้ mc-lr ได้ผลิตภัณฑ์ที่มีชนิดเป็นขั้นตอนแรกในการล้างพิษสารพิษนี้ในระบบยูปลา ( pflugmacher et al . , 1998 ) การพร่อง GSH เป็นชิ้นเป็นอันสังเกตหลังจากรับประทานยาให้หนูซินนำไปสู่สมมติฐานที่ว่า ซินสามารถเพิ่มเติม metabolized โดย GSH ) ( runnegar et al . , 1995 ) แม้ว่าการเผาผลาญข้อมูลเกี่ยวกับซินมาก จำกัด และตามหลักในการสังเกตทางอ้อม ( funari และ testai , 2008 )