- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
Materials and methodsIsolation of x
Materials and methods
Isolation of xylose assimilation yeast strains
Yeast strains were isolated from different natural
sources, including flowers, fruits, wood, and soil,
obtained from the Kyoto area in Japan (approximately
100 samples in total). The samples were collected in
sterilized polypropylene bottles of 15 mL capacity (Becton
Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA) and suspended
in 10 mL of SX liquid medium (3% xylose and 0.67%
YNB without amino acid; Difco, Detroit, MI, USA) containing
chloramphenicol at a concentration of 100 μg/
mL. The samples were cultivated for 4 days at 30°C in
static culture with the lids slightly opened. Aliquots (200
μL) of the culture supernatants were spread onto SX
agar medium and incubated aerobically at 30°C for 3
days. Yeasts were purified using single-colony isolation.
The yeast strains were routinely maintained on YPD
agar plates (2% glucose, 2% peptone [Difco], 1% yeast extract
[Difco] and 1.5% agar) and grown at 30°C. YPX
medium (4% xylose, 2% peptone [Difco] and 1% yeast
extract [Difco]) was used for the screening of xylosefermenting
yeast.
Selection of xylose-fermenting yeast with
thermotolerance
Prior to the fermentation experiments, strain ATY839
was inoculated into 3 mL of YPD medium in test tubes
and incubated overnight at 30°C with reciprocal shaking
at 150 opm (preculture). The preculture was suspended
to 25 mL of synthetic glucose (SG) medium (2% glucose
and 0.67% YNB without amino acid) or synthetic xylose
(SX) medium (2% xylose and 0.67% YNB without amino
acid) in a 50 mL Erlenmeyer flask to a cell optical density
of 0.1 at 600 nm (OD600) and then cultured at 35°C,
37°C, 38°C, or 39°C for 48 h at 120 rpm. Sugars and
ethanol concentrations of the culture supernatants were
determined by following the procedures detailed below.
Cell growth was determined at OD600 using a spectrophotometer.
All experiments were performed in
triplicate.
Isolation of xylose assimilation yeast strains
Yeast strains were isolated from different natural
sources, including flowers, fruits, wood, and soil,
obtained from the Kyoto area in Japan (approximately
100 samples in total). The samples were collected in
sterilized polypropylene bottles of 15 mL capacity (Becton
Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA) and suspended
in 10 mL of SX liquid medium (3% xylose and 0.67%
YNB without amino acid; Difco, Detroit, MI, USA) containing
chloramphenicol at a concentration of 100 μg/
mL. The samples were cultivated for 4 days at 30°C in
static culture with the lids slightly opened. Aliquots (200
μL) of the culture supernatants were spread onto SX
agar medium and incubated aerobically at 30°C for 3
days. Yeasts were purified using single-colony isolation.
The yeast strains were routinely maintained on YPD
agar plates (2% glucose, 2% peptone [Difco], 1% yeast extract
[Difco] and 1.5% agar) and grown at 30°C. YPX
medium (4% xylose, 2% peptone [Difco] and 1% yeast
extract [Difco]) was used for the screening of xylosefermenting
yeast.
Selection of xylose-fermenting yeast with
thermotolerance
Prior to the fermentation experiments, strain ATY839
was inoculated into 3 mL of YPD medium in test tubes
and incubated overnight at 30°C with reciprocal shaking
at 150 opm (preculture). The preculture was suspended
to 25 mL of synthetic glucose (SG) medium (2% glucose
and 0.67% YNB without amino acid) or synthetic xylose
(SX) medium (2% xylose and 0.67% YNB without amino
acid) in a 50 mL Erlenmeyer flask to a cell optical density
of 0.1 at 600 nm (OD600) and then cultured at 35°C,
37°C, 38°C, or 39°C for 48 h at 120 rpm. Sugars and
ethanol concentrations of the culture supernatants were
determined by following the procedures detailed below.
Cell growth was determined at OD600 using a spectrophotometer.
All experiments were performed in
triplicate.
0/5000
วัสดุและวิธีการ
แยก xylose ผสมยีสต์
ยีสต์ที่แยกจากธรรมชาติแตกต่าง
แหล่ง ดอกไม้ ผลไม้ ไม้ ดิน และ
รับจากพื้นที่เกียวโตประเทศญี่ปุ่น (ประมาณ
100 ตัวอย่างรวม) ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวมใน
sterilized polypropylene ขวดความจุ 15 มล. (Becton
สัน แฟรงคลินทะเลสาบ NJ สหรัฐอเมริกา) และระงับ
ใน 10 mL ของ SX ขนาดกลางของเหลว (xylose 3% และ 0.67%
YNB โดยที่กรดอะมิโน Difco ดีทรอยต์ MI สหรัฐอเมริกา) ประกอบด้วย
chloramphenicol ที่ความเข้มข้นของ 100 μg /
mL ตัวอย่างดีปลูกมา 4 วันที่ 30° C ใน
วัฒนธรรมคง มีฝาที่เปิดเล็กน้อย Aliquots (200
μL) ของวัฒนธรรม supernatants ถูกแพร่กระจายไป SX
agar กลาง และ incubated aerobically ที่ 30° C สำหรับ 3
วัน Yeasts ได้บริสุทธิ์ที่ใช้แยกโคโลนีเดียวกัน
ยีสต์มีอยู่เป็นประจำใน YPD
แผ่น agar (กลูโคส 2% สารสกัดจากยีสต์ 1%, 2% peptone [Difco]
[Difco] และ 1.5% agar) และเติบโตที่ 30 องศาเซลเซียส YPX
ปานกลาง (xylose 4%, 2% peptone [Difco] และยีสต์ 1%
แยก [Difco]) ใช้สำหรับคัดกรองของ xylosefermenting
ยีสต์
เลือก xylose fermenting ยีสต์กับ
thermotolerance
ก่อนทดลองหมัก สายพันธุ์ ATY839
ถูก inoculated เป็น 3 mL ของกลาง YPD ในหลอดทดสอบ
และค้างคืนที่ 30 ° C ด้วยกันและเขย่า incubated
ที่ 150 แผ่น/นาที (preculture) Preculture ที่ถูกระงับ
ไป 25 mL ของน้ำตาลกลูโคสที่สังเคราะห์ (SG) กลาง (กลูโคส 2%
0.67% และ YNB ไม่ มีกรดอะมิโน) หรือกลาง xylose
(SX) สังเคราะห์ (0.67% และ 2% xylose YNB โดยอะมิโน
กรด) ใน 50 มล Erlenmeyer หนาวเพื่อความหนาแน่นออปติคอลเซลล์
ของ 0.1 ที่ 600 nm (OD600) แล้ว อ่างที่ 35 ° C,
37 ° C, 38 ° C หรือ 39 ° C สำหรับ h 48 ที่ 120 รอบต่อนาที น้ำตาล และ
เอทานอลความเข้มข้นของ supernatants วัฒนธรรมถูก
ตามรายละเอียดด้านล่างตอน.
กำหนดเซลล์เจริญเติบโตที่ OD600 โดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง
ดำเนินการทดลองทั้งหมดใน
triplicate
แยก xylose ผสมยีสต์
ยีสต์ที่แยกจากธรรมชาติแตกต่าง
แหล่ง ดอกไม้ ผลไม้ ไม้ ดิน และ
รับจากพื้นที่เกียวโตประเทศญี่ปุ่น (ประมาณ
100 ตัวอย่างรวม) ตัวอย่างถูกเก็บรวบรวมใน
sterilized polypropylene ขวดความจุ 15 มล. (Becton
สัน แฟรงคลินทะเลสาบ NJ สหรัฐอเมริกา) และระงับ
ใน 10 mL ของ SX ขนาดกลางของเหลว (xylose 3% และ 0.67%
YNB โดยที่กรดอะมิโน Difco ดีทรอยต์ MI สหรัฐอเมริกา) ประกอบด้วย
chloramphenicol ที่ความเข้มข้นของ 100 μg /
mL ตัวอย่างดีปลูกมา 4 วันที่ 30° C ใน
วัฒนธรรมคง มีฝาที่เปิดเล็กน้อย Aliquots (200
μL) ของวัฒนธรรม supernatants ถูกแพร่กระจายไป SX
agar กลาง และ incubated aerobically ที่ 30° C สำหรับ 3
วัน Yeasts ได้บริสุทธิ์ที่ใช้แยกโคโลนีเดียวกัน
ยีสต์มีอยู่เป็นประจำใน YPD
แผ่น agar (กลูโคส 2% สารสกัดจากยีสต์ 1%, 2% peptone [Difco]
[Difco] และ 1.5% agar) และเติบโตที่ 30 องศาเซลเซียส YPX
ปานกลาง (xylose 4%, 2% peptone [Difco] และยีสต์ 1%
แยก [Difco]) ใช้สำหรับคัดกรองของ xylosefermenting
ยีสต์
เลือก xylose fermenting ยีสต์กับ
thermotolerance
ก่อนทดลองหมัก สายพันธุ์ ATY839
ถูก inoculated เป็น 3 mL ของกลาง YPD ในหลอดทดสอบ
และค้างคืนที่ 30 ° C ด้วยกันและเขย่า incubated
ที่ 150 แผ่น/นาที (preculture) Preculture ที่ถูกระงับ
ไป 25 mL ของน้ำตาลกลูโคสที่สังเคราะห์ (SG) กลาง (กลูโคส 2%
0.67% และ YNB ไม่ มีกรดอะมิโน) หรือกลาง xylose
(SX) สังเคราะห์ (0.67% และ 2% xylose YNB โดยอะมิโน
กรด) ใน 50 มล Erlenmeyer หนาวเพื่อความหนาแน่นออปติคอลเซลล์
ของ 0.1 ที่ 600 nm (OD600) แล้ว อ่างที่ 35 ° C,
37 ° C, 38 ° C หรือ 39 ° C สำหรับ h 48 ที่ 120 รอบต่อนาที น้ำตาล และ
เอทานอลความเข้มข้นของ supernatants วัฒนธรรมถูก
ตามรายละเอียดด้านล่างตอน.
กำหนดเซลล์เจริญเติบโตที่ OD600 โดยใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง
ดำเนินการทดลองทั้งหมดใน
triplicate
การแปล กรุณารอสักครู่..
Materials and methods
Isolation of xylose assimilation yeast strains
Yeast strains were isolated from different natural
sources, including flowers, fruits, wood, and soil,
obtained from the Kyoto area in Japan (approximately
100 samples in total). The samples were collected in
sterilized polypropylene bottles of 15 mL capacity (Becton
Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA) and suspended
in 10 mL of SX liquid medium (3% xylose and 0.67%
YNB without amino acid; Difco, Detroit, MI, USA) containing
chloramphenicol at a concentration of 100 μg/
mL. The samples were cultivated for 4 days at 30°C in
static culture with the lids slightly opened. Aliquots (200
μL) of the culture supernatants were spread onto SX
agar medium and incubated aerobically at 30°C for 3
days. Yeasts were purified using single-colony isolation.
The yeast strains were routinely maintained on YPD
agar plates (2% glucose, 2% peptone [Difco], 1% yeast extract
[Difco] and 1.5% agar) and grown at 30°C. YPX
medium (4% xylose, 2% peptone [Difco] and 1% yeast
extract [Difco]) was used for the screening of xylosefermenting
yeast.
Selection of xylose-fermenting yeast with
thermotolerance
Prior to the fermentation experiments, strain ATY839
was inoculated into 3 mL of YPD medium in test tubes
and incubated overnight at 30°C with reciprocal shaking
at 150 opm (preculture). The preculture was suspended
to 25 mL of synthetic glucose (SG) medium (2% glucose
and 0.67% YNB without amino acid) or synthetic xylose
(SX) medium (2% xylose and 0.67% YNB without amino
acid) in a 50 mL Erlenmeyer flask to a cell optical density
of 0.1 at 600 nm (OD600) and then cultured at 35°C,
37°C, 38°C, or 39°C for 48 h at 120 rpm. Sugars and
ethanol concentrations of the culture supernatants were
determined by following the procedures detailed below.
Cell growth was determined at OD600 using a spectrophotometer.
All experiments were performed in
triplicate.
Isolation of xylose assimilation yeast strains
Yeast strains were isolated from different natural
sources, including flowers, fruits, wood, and soil,
obtained from the Kyoto area in Japan (approximately
100 samples in total). The samples were collected in
sterilized polypropylene bottles of 15 mL capacity (Becton
Dickinson, Franklin Lakes, NJ, USA) and suspended
in 10 mL of SX liquid medium (3% xylose and 0.67%
YNB without amino acid; Difco, Detroit, MI, USA) containing
chloramphenicol at a concentration of 100 μg/
mL. The samples were cultivated for 4 days at 30°C in
static culture with the lids slightly opened. Aliquots (200
μL) of the culture supernatants were spread onto SX
agar medium and incubated aerobically at 30°C for 3
days. Yeasts were purified using single-colony isolation.
The yeast strains were routinely maintained on YPD
agar plates (2% glucose, 2% peptone [Difco], 1% yeast extract
[Difco] and 1.5% agar) and grown at 30°C. YPX
medium (4% xylose, 2% peptone [Difco] and 1% yeast
extract [Difco]) was used for the screening of xylosefermenting
yeast.
Selection of xylose-fermenting yeast with
thermotolerance
Prior to the fermentation experiments, strain ATY839
was inoculated into 3 mL of YPD medium in test tubes
and incubated overnight at 30°C with reciprocal shaking
at 150 opm (preculture). The preculture was suspended
to 25 mL of synthetic glucose (SG) medium (2% glucose
and 0.67% YNB without amino acid) or synthetic xylose
(SX) medium (2% xylose and 0.67% YNB without amino
acid) in a 50 mL Erlenmeyer flask to a cell optical density
of 0.1 at 600 nm (OD600) and then cultured at 35°C,
37°C, 38°C, or 39°C for 48 h at 120 rpm. Sugars and
ethanol concentrations of the culture supernatants were
determined by following the procedures detailed below.
Cell growth was determined at OD600 using a spectrophotometer.
All experiments were performed in
triplicate.
การแปล กรุณารอสักครู่..
วัสดุและวิธีการ การแยกยีสต์สายพันธุ์ B
สายพันธุ์ยีสต์ที่แยกได้จากแหล่งธรรมชาติ
ที่แตกต่างกัน ได้แก่ ดอกไม้ ผลไม้ ไม้ และดิน
ได้จากแถบเกียวโตในญี่ปุ่น ( ประมาณ
ตัวอย่าง 100 ในทั้งหมด ) โดยเก็บตัวอย่างใน
ฆ่าเชื้อ Polypropylene ขวดความจุ 15 ml ( เบคตอน
ดิกคินสัน Franklin Lakes , NJ , USA ) และระงับ
ใน 10 ml ของ SX เหลว ( ร้อยละ 3 และ 6 0.67 %
ynb ไม่มีกรดอะมิโน ; difco ดีทรอยท์ มิ สหรัฐอเมริกา ) ที่ประกอบด้วย
chloramphenicol ความเข้มข้น 100 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตรμ
จำนวนปลูก 4 วันที่ 30 ° C
วัฒนธรรมคงที่กับเปลือกตาเล็กน้อย เปิด เฉยๆ ( 200
μ L ) ของวัฒนธรรม supernatants ถูกกระจายลงบนอาหารวุ้น เ เ กซ์
aerobically บ่มที่ 30 ° C 3
วันยีสต์บริสุทธิ์ใช้แยกเป็นโคโลนีเดี่ยว
ยีสต์สายพันธุ์ ตรวจรักษา ypd
วุ้นแผ่น ( 2 % glucose 2% ตามลำดับ [ difco ] 1 % สารสกัดจากยีสต์
[ difco ] และ 1.5% วุ้น ) และโตที่ 30 องศา ypx
ขนาดกลาง ( 4 % B , 2% ตามลำดับ [ difco และสารสกัดจากยีสต์
% ] 1 [ difco ] ) คือใช้สำหรับการ xylosefermenting
ยีสต์ เลือก
6 หมักยีสต์ ด้วย
thermotoleranceก่อนการหมัก โดยสายพันธุ์ aty839
เป็นเชื้อ 3 มล. ในหลอดทดลองขนาดกลาง ypd
บ่มค้างคืนที่ 30 ° C แบบสั่น
150 OPM ( พันธุ์ ) ส่วนพันธุ์ ถูกพักงาน
25 มล. น้ำตาลสังเคราะห์ ( SG ) ขนาดกลาง ( 2
% กลูโคสและกรดอะมิโนเท่ากับ 0.67 % ynb โดยไม่ ) หรือสังเคราะห์ 6
( SX ) ปานกลาง ( ร้อยละ 2 และ 6 0.67 %
ynb โดยไม่ อะมิโนกรด ) ใน 50 ml ขวดไปเออร์เลนเมเยอร์ความหนาแน่นเซลล์แสง
0.1 ที่ 600 nm ( od600 ) จากนั้นนำไปเลี้ยงที่อุณหภูมิ 35 องศา C ,
37 ° C , 38 ° C หรือ 39 ° C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง 120 รอบต่อนาที น้ำตาลและเอทานอลความเข้มข้นของวัฒนธรรม supernatants
มีกำหนดตามขั้นตอนรายละเอียดด้านล่าง .
การเจริญเติบโตของเซลล์ถูกกำหนดที่ od600 โดยใช้วัสดุ ทดลองใน
ทั้งหมดทำสำเนาสามฉบับ .
สายพันธุ์ยีสต์ที่แยกได้จากแหล่งธรรมชาติ
ที่แตกต่างกัน ได้แก่ ดอกไม้ ผลไม้ ไม้ และดิน
ได้จากแถบเกียวโตในญี่ปุ่น ( ประมาณ
ตัวอย่าง 100 ในทั้งหมด ) โดยเก็บตัวอย่างใน
ฆ่าเชื้อ Polypropylene ขวดความจุ 15 ml ( เบคตอน
ดิกคินสัน Franklin Lakes , NJ , USA ) และระงับ
ใน 10 ml ของ SX เหลว ( ร้อยละ 3 และ 6 0.67 %
ynb ไม่มีกรดอะมิโน ; difco ดีทรอยท์ มิ สหรัฐอเมริกา ) ที่ประกอบด้วย
chloramphenicol ความเข้มข้น 100 ไมโครกรัมต่อมิลลิลิตรμ
จำนวนปลูก 4 วันที่ 30 ° C
วัฒนธรรมคงที่กับเปลือกตาเล็กน้อย เปิด เฉยๆ ( 200
μ L ) ของวัฒนธรรม supernatants ถูกกระจายลงบนอาหารวุ้น เ เ กซ์
aerobically บ่มที่ 30 ° C 3
วันยีสต์บริสุทธิ์ใช้แยกเป็นโคโลนีเดี่ยว
ยีสต์สายพันธุ์ ตรวจรักษา ypd
วุ้นแผ่น ( 2 % glucose 2% ตามลำดับ [ difco ] 1 % สารสกัดจากยีสต์
[ difco ] และ 1.5% วุ้น ) และโตที่ 30 องศา ypx
ขนาดกลาง ( 4 % B , 2% ตามลำดับ [ difco และสารสกัดจากยีสต์
% ] 1 [ difco ] ) คือใช้สำหรับการ xylosefermenting
ยีสต์ เลือก
6 หมักยีสต์ ด้วย
thermotoleranceก่อนการหมัก โดยสายพันธุ์ aty839
เป็นเชื้อ 3 มล. ในหลอดทดลองขนาดกลาง ypd
บ่มค้างคืนที่ 30 ° C แบบสั่น
150 OPM ( พันธุ์ ) ส่วนพันธุ์ ถูกพักงาน
25 มล. น้ำตาลสังเคราะห์ ( SG ) ขนาดกลาง ( 2
% กลูโคสและกรดอะมิโนเท่ากับ 0.67 % ynb โดยไม่ ) หรือสังเคราะห์ 6
( SX ) ปานกลาง ( ร้อยละ 2 และ 6 0.67 %
ynb โดยไม่ อะมิโนกรด ) ใน 50 ml ขวดไปเออร์เลนเมเยอร์ความหนาแน่นเซลล์แสง
0.1 ที่ 600 nm ( od600 ) จากนั้นนำไปเลี้ยงที่อุณหภูมิ 35 องศา C ,
37 ° C , 38 ° C หรือ 39 ° C เป็นเวลา 48 ชั่วโมง 120 รอบต่อนาที น้ำตาลและเอทานอลความเข้มข้นของวัฒนธรรม supernatants
มีกำหนดตามขั้นตอนรายละเอียดด้านล่าง .
การเจริญเติบโตของเซลล์ถูกกำหนดที่ od600 โดยใช้วัสดุ ทดลองใน
ทั้งหมดทำสำเนาสามฉบับ .
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- emergency
- ฉันทำงาน ป้องกันปราบปรามอาชญากรรมข้ามชาต
- prosím, upozorně te je.Vlastně jsme chtě
- เจสสิก้าสอนว่า : ฉันอยากให้แฟนคลับของฉัน
- ร่มรื่น
- สวัสดีครับ sirida เวลาที่กรุงเทพ เกือบจะ
- 뭐ㅎㅏ니?
- because there must be a feellings some t
- 我们擅长于更好地教他们
- I'm going to take him to find her
- 虽然我们的谈话或多只。
- When his owner names a toy,Rico fetches
- prosím, upozorně te je.Vlastně jsme chtě
- Have to wake up early in the morning
- มีอาการเจ็บคอ รอคุณมาดูแลอยู่นะ
- ความทรงจำ
- คุณเข้าใจผิด ฉันหมายความว่า คุณอยากให้แฟ
- ฉันจะมั่นใจได้อย่างไร ว่าคุณจริงใจกับฉัน
- why are you doinHey who needs an
- แต่คุณอย่าฆ่าใจฉันนะ
- 27 ปี
- Ohh picture full of me
- Easy to find in a row
- คุณไปไหน
