Phenolic compoundsPhenolic compound

Phenolic compounds
Phenolic compounds were affected by the type of coverage. Changing rates of phenolic compounds during storage time were shown in table 1. The highest amount of phenolic compounds was observed in the control sample at day 14, and by increasing storage duration phenolic content was reduced in the control sample. Phenolic compounds of kiwi slices were increased by coating, with the highest amount of changes observed in 60% chitosan + 40%aloe vera. That rose 116.66% compares with the first day. After 60% chitosan + 40% aloe vera coverage the highest amount of total phenols was observed in 100% chitosan coverage with a 93.68% change. At the end of storage day 21 significant differences were not found between the 100% chitosan, 80% chitosan + 20% aloe vera, 100% chitosan coverage. Although at these times after 60% chitosan + 40% aloe vera coverage the highest amount of phenolic compounds wasobserved in 80% chitosan + 20% aloe vera coverage (table 1) when chitosan is blended with aloe vera make insoluble hydrocolloid coating that causes increased barriers against oxygen and water that polyphenol oxidase(PPO) and peroxidase (POD) enzymes cannot hydrolyse phenolic compounds. This effect is greater with 100% compared with 100% chitosan. It can be concluded that the greater percentage of mixing with chitosan can maintain a greater percentage of phenolic compounds. According to the research results, there is a close relationship between the levels of phenolic compounds and antioxidants, and this relationship was shown in this research to be between 60% chitosan + 40% aloe vera coverage which could maintain phenolic and antioxidant compounds. Gil et al. (2006) found that the highest correlation is between phenolic and antioxidant compounds. Pen and Jiang (2003), in experiments on chestnuts with concentrations of 0.5, 1 and 2% chitosan found the reduction of phenolic compounds to be under the influence of three enzymes, POD, PPO, L-phenylalanine (PAL). They found that the concentration of chitosan coating prevents changes in phenolic compounds. The accumulation of phenolic compounds on coated and uncoated samples is due to the high activity of the phenylalanine ammonia-lyase (Oms-Oliu et al. 2008).


ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

สารประกอบฟีนอ
สารประกอบฟีนอลได้รับผลกระทบตามประเภทของความคุ้มครอง การเปลี่ยนอัตราของสารประกอบฟีนอลในช่วงเวลาการจัดเก็บข้อมูลที่มีการแสดงในตารางที่ 1 จำนวนเงินสูงสุดของสารประกอบฟีนอลพบว่าในกลุ่มตัวอย่างควบคุมในวันที่ 14 และโดยการเพิ่มปริมาณฟีนอลในช่วงระยะเวลาการจัดเก็บลดลงในกลุ่มตัวอย่างควบคุม สารประกอบฟีนอของชิ้นกีวีเพิ่มขึ้นจากการเคลือบที่มีจำนวนมากที่สุดของการเปลี่ยนแปลงที่สังเกตในไคโตซาน 60% + 40% ว่านหางจระเข้ ที่เพิ่มขึ้น 116.66% เมื่อเปรียบเทียบกับวันแรก หลังจากผ่านไป 60% คุ้มครองไคโตซาน + 40% ว่านหางจระเข้จำนวนเงินสูงสุดของฟีนอลรวมพบว่าในความคุ้มครอง 100% ของไคโตซานที่มีการเปลี่ยนแปลง 93.68% ในตอนท้ายของวันที่จัดเก็บ 21 ความแตกต่างไม่พบระหว่าง 100% ไคโตซานไคโตซาน 80% + 20% ว่านหางจระเข้, ไคโตซานความคุ้มครอง 100% ถึงแม้ว่าในช่วงเวลานี้หลังจาก 60% คุ้มครองไคโตซาน + 40% ว่านหางจระเข้จำนวนเงินสูงสุดของสารประกอบฟีนอล wasobserved ใน 80% ไคโตซาน + 20% รายงานข่าวว่านหางจระเข้ (ตารางที่ 1) เมื่อไคโตซานผสมกับว่านหางจระเข้ทำให้เคลือบ hydrocolloid ที่ไม่ละลายน้ำที่เป็นสาเหตุของปัญหาและอุปสรรคที่เพิ่มขึ้น กับออกซิเจนและน้ำที่ polyphenol oxidase (PPO) และ peroxidase (POD) เอนไซม์ไม่สามารถสลายสารประกอบฟีนอ นี่คือผลที่มากขึ้น 100% เมื่อเทียบกับ 100% ไคโตซาน จึงสามารถสรุปได้ว่าเปอร์เซ็นต์ของผสมกับไคโตซานสามารถรักษาเปอร์เซ็นต์ของสารประกอบฟีนอ ตามผลการวิจัยที่มีความสัมพันธ์ใกล้ชิดระหว่างระดับของสารฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระและความสัมพันธ์นี้ถูกนำมาแสดงในงานวิจัยนี้จะอยู่ระหว่าง 60% ไคโตซาน + 40% รายงานข่าวว่านหางจระเข้ซึ่งสามารถรักษาฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระสาร Gil, et al (2006) พบว่าความสัมพันธ์ที่สูงที่สุดคือระหว่างฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระ ปากกาและเจียง (2003) ในการทดลองเกี่ยวกับเกาลัดที่มีความเข้มข้นของ 0.5, 1 และ 2% ไคโตซานพบการลดลงของสารประกอบฟีนอที่จะอยู่ภายใต้อิทธิพลของสามเอนไซม์ POD, PPO, L-phenylalanine นี้ (PAL) พวกเขาพบว่ามีความเข้มข้นของสารเคลือบผิวไคโตซานจะช่วยป้องกันการเปลี่ยนแปลงในสารประกอบฟีนอ การสะสมของสารฟีนอลในตัวอย่างเคลือบและไม่เคลือบผิวเป็นเพราะกิจกรรมระดับสูงของ phenylalanine แอมโมเนียไอเลส (OMS-Oliu et al. 2008).


ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สารประกอบฟีนอลสารประกอบฟีนอลได้รับผลกระทบตามประเภทของความคุ้มครอง การเปลี่ยนแปลงราคาของสารประกอบฟีนอลในเวลากระเป๋าถูกแสดงในตารางที่ 1 มีปริมาณสารประกอบฟีนอลและพบในตัวอย่างควบคุมที่ 14 วัน และเพิ่มความคงทนฟีนเนื้อหาลงในตัวอย่างควบคุม สารประกอบฟีนอลของชิ้นกีวีเพิ่มขึ้นโดยการเคลือบด้วยปริมาณสูงสุดของการเปลี่ยนแปลงที่พบใน 60% ไคโตซาน + 40% ว่านหางจระเข้ กุหลาบ 116.66 % เมื่อเปรียบเทียบกับวันแรก ไคโตซาน + หลัง 60% 40% ว่านหางจระเข้ครอบคลุมปริมาณสูงสุดของฟีนอลทั้งหมดพบว่า 100% ไคโตซานที่ครอบคลุมกับการเปลี่ยนแปลง 93.68 % ในตอนท้ายของกระเป๋า 21 วัน ไม่พบความแตกต่างระหว่าง 100% ไคโตซาน ไคโตซาน 20 % 80% + ว่านหางจระเข้ 100% ไคโตซานข่าว แม้ว่าในเวลานี้หลัง 60% ไคโตซาน + 40% ว่านหางจระเข้ครอบคลุมปริมาณของสารประกอบฟีนอล - 80 เปอร์เซ็นต์ ไคโตซาน + 20% ว่านหางจระเข้คุ้มครอง ( ตารางที่ 1 ) เมื่อไคโตซานผสมกับว่านหางจระเข้ ให้ละลายน้ำไฮโดรคอลลอยด์เคลือบที่ทำให้เพิ่มอุปสรรคกับออกซิเจนและน้ำว่า polyphenol oxidase ( PPO ) และเปอร์ออกซิเดส ( ฝัก ) เอนไซม์สามารถไฮโดรไลซ์สารประกอบฟีนอล . ผลกระทบนี้จะมากกว่า 100% เมื่อเทียบกับ 100% ไคโตซาน สรุปได้ว่ามากกว่าร้อยละของการผสมกับไคโตซานสามารถรักษาจำนวนที่มากขึ้นของสารประกอบฟีนอล . จากผลการวิจัยดังกล่าว มีความสัมพันธ์ใกล้ชิดระหว่างระดับของสารประกอบฟีนอลิกและสารต้านอนุมูลอิสระ และความสัมพันธ์นี้ถูกแสดงในงานวิจัยนี้ จะอยู่ระหว่างร้อยละ 60 ไคโตซาน + 40% ว่านหางจระเข้ซึ่งสามารถรักษาและคุ้มครองฟีนอลสารต้านอนุมูลอิสระสาร กิล et al . ( 2006 ) พบว่า สหสัมพันธ์สูงสุดระหว่างฟีนอลสารต้านอนุมูลอิสระและสาร ปากกาและเจียง ( 2003 ) ในการทดลองเกี่ยวกับเกาลัดที่มีความเข้มข้น 0.5 , 1 และ 2 และไคโตซาน พบการลดลงของสารประกอบฟีนอลจะอยู่ภายใต้อิทธิพลของ 3 ชนิด , ฝัก , PPO , ฟีนิลอะลา ( PAL ) พวกเขาพบว่า ความเข้มข้นของไคโตซานเคลือบป้องกันการเปลี่ยนแปลงของสารประกอบฟีนอล . การสะสมของสารประกอบฟีนอลิกในเคลือบและไม่เคลือบผิว คือตัวอย่างจากกิจกรรมสูงของฟีนิลอะลานีนแอมโมเนีย lyase ( OMS oliu et al . 2008 )