Table 1.Culture media and procedure

Table 1.
Culture media and procedures used for the microbiological testing of raw milk samples.
Bacteria Reference method Type of assay Procedure
S. aureus count ISO 6888-1 (1999) Plate count identification Baird–Parker agar plus egg yolk tellurite (0.5% w/v) or rabbit plasma fibrinogen agar.
Presumptive colonies confirmed using a coagulase test.
E. coli count ISO 16649-2 (2001) Plate count ß-Glucuronidase-positive E. coli colonies counted on tryptone bile X-glucuronide agar at 37 and 44 °C.
E. coli O157 detection AOAC 996.09 (1999)
MIRINZ (2000c) Detection and MPN estimate TECRA O157 visual immunoassay (VIA™).
Identification Isolation using immuno magnetic separation as per manufacturer's instructions (Dynabeads, Invitrogen USA) and plating on to MacConkey agar with sorbitol, cefixime and tellurite (CT-SMAC).
Sorbitol-negative colonies with typical reactions on triple sugar iron agar and lysine iron agar were screened using an E. coli O157 latex test kit (Oxoid, UK).
Paton and Paton (1998) For latex-positive colonies, multiplex PCR was carried out to confirm the presence of the toxin gene(s) stx1 and/or stx2, and eae and Hly A genes.
Fields et al. (1997)
Wang et al. (2002) PCR was carried out to test for the presence of H7 as described previously.
Speirs et al. (1977)
Konowalchuk et al. (1977)
Karmali (1989) Toxin production was confirmed using a Vero Cell Assay as previously described.
L. monocytogenes detection AOAC 2002.09 (2003) Detection and MPN estimate TECRA Listeria Visual Immunoassay (VIA™).
FDA (2000) Identification Presumptive isolates were identified using phenotypical and biochemical characteristics as described in the FDA bacteriological analytical manual, chapter 10.
Salmonella spp. detection AOAC 998.09 (2001) Detection and MPN estimate TECRA Salmonella Visual Immunoassay (VIA™).
Identification Presumptive isolates were identified using slide agglutination with Salmonella polyvalent O (A-S) and polyvalent H (phases 1 and 2) antisera (Remel Europe Limited).
Campylobacter spp. detection MIRINZ (2000a)
MIRINZ (2000b)
Baylis et al. (2000) Detection and MPN estimate Based on primary enrichment in Bolton broth followed by isolation on modified Campylobacter blood-free selective agar.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตารางที่ 1สื่อวัฒนธรรมและกระบวนงานที่ใช้สำหรับการทดสอบทางจุลชีววิทยาของน้ำนมดิบตัวอย่างวิธีการอ้างอิงแบคทีเรียชนิดวิเคราะห์กระบวนการS. หมอเทศข้างลายนับ ISO 6888-1 (1999) จานนับรหัส Baird – ปาร์คเกอร์ agar บวกไข่แดง tellurite (0.5% w/v) หรือ agar ไฟบริโนเจนพลาสม่ากระต่ายอาณานิคม presumptive ยืนยันโดยใช้การทดสอบ coagulaseE. coli จำนวน ISO 16649-2 (2001) จานนับบวกบาท Glucuronidase E. coli อาณานิคมนับในน้ำดี tryptone agar X glucuronide ที่ 37 และ 44 องศาเซลเซียสE. coli O157 ตรวจ AOAC 996.09 (1999)บริษัทเอ็มพีเอ็นและ MIRINZ (2000c) ตรวจประเมิน TECRA O157 ภาพ immunoassay (VIA ™)แยกรหัสใช้ immuno แยกแม่เหล็กตามคำแนะนำของผู้ผลิต (Dynabeads, Invitrogen สหรัฐอเมริกา) และการชุบระบบ MacConkey agar มีซอร์บิทอล เซฟิกซิม และ tellurite (CT-SMAC)ซอร์บิทอลลบอาณานิคมกับปฏิกิริยาทั่วไปน้ำตาลสามเหล็ก agar และแอล-ไลซีนเหล็ก agar ได้ฉายโดยใช้ชุดการทดสอบยาง E. coli O157 (Oxoid สหราชอาณาจักร)Paton และ Paton (1998) ในอาณานิคมบวกยาง multiplex PCR ถูกดำเนินการเพื่อยืนยันสถานะพิษ gene(s) stx1 / stx2 และ eae และยีน Hly Aเขตร้อยเอ็ด al. (1997)วัง et al. PCR (2002) ได้ดำเนินการทดสอบของ H7 ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้Speirs et al. (1977)Konowalchuk et al. (1977)Karmali (1989) สารพิษผลิตได้รับการยืนยันโดยใช้การวิเคราะห์เซลล์ Vero อธิบายไว้ก่อนหน้านี้L. monocytogenes ตรวจตรวจ (2003) AOAC 2002.09 และบริษัทเอ็มพีเอ็นประเมิน TECRA ออลิภาพ Immunoassay (VIA ™)แยกรหัส Presumptive FDA (2000) ที่ระบุโดยใช้ phenotypical และชีวเคมีใน FDA bacteriological วิเคราะห์ด้วยตนเอง บทที่ 10สายโอตรวจตรวจ (2001) AOAC 998.09 และบริษัทเอ็มพีเอ็นประเมิน TECRA ซัลภาพ Immunoassay (VIA ™)รหัส Presumptive แยกได้ระบุโดยใช้ภาพนิ่ง agglutination ซัล polyvalent O (A-S) และ polyvalent H (เฟส 1 และ 2) antisera (Remel ยุโรปจำกัด(มหาชน))ตรวจ Campylobacter โอ MIRINZ (2000a)MIRINZ (2000b)การตรวจหา Baylis et al. (2000) และบริษัทเอ็มพีเอ็นประเมินตามในบ่อหลักในซุปโบลตันตามแยกในแก้ไข Campylobacter เลือดฟรีใช้ agar

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตารางที่ 1
สื่อวัฒนธรรมและวิธีการที่ใช้สำหรับการทดสอบทางจุลชีววิทยาของตัวอย่างน้ำนมดิบ. แบคทีเรียอ้างอิงประเภทวิธีการขั้นตอนการทดสอบเอส เรียสนับ ISO 6888-1 (1999) บัตรประจำตัวนับจานบาร์ดปาร์กเกอร์-วุ้นบวกไข่แดง tellurite (0.5% w / v) หรือพลาสม่ากระต่ายวุ้น fibrinogen. อาณานิคมสันนิษฐานได้รับการยืนยันโดยใช้การทดสอบ coagulase. อี coli นับ ISO 16649-2 (2001) นับจานบาท-Glucuronidase บวกเชื้อ E. coli อาณานิคมนับ tryptone น้ำดีวุ้น X-glucuronide ที่ 37 และ 44 องศาเซลเซียส. อี coli O157 การตรวจสอบ AOAC 996.09 (1999) MIRINZ (2000c) ตรวจสอบและ MPN ประมาณการ immunoassay ภาพ O157 TECRA (VIA ™). การแยกบัตรประจำตัวที่ใช้แยกแม่เหล็กภูมิคุ้มกันตามคำแนะนำของผู้ผลิต (Dynabeads, Invitrogen สหรัฐอเมริกา) และชุบไปวุ้น MacConkey กับซอร์บิทอ, เซฟิกซิมและ tellurite (CT-SMAC). อาณานิคมซอร์บิทอลบกับปฏิกิริยาทั่วไปในอาหารเลี้ยงเชื้อเหล็กน้ำตาลสามและวุ้นเหล็กไลซีนถูกคัดกรองโดยใช้เชื้อ E. coli O157 ชุดทดสอบน้ำยาง (Oxoid สหราชอาณาจักร). ปาตันและตัน (1998) สำหรับน้ำยาง อาณานิคมบวก, PCR multiplex ได้ดำเนินการเพื่อยืนยันการปรากฏตัวของยีนพิษ (s) stx1 และ / หรือ Stx2 และ EAE และ hly ยีน. ทุ่ง et al, (1997) วัง et al, (2002) PCR ได้ดำเนินการในการทดสอบสำหรับการปรากฏตัวของ H7 ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้. Speirs et al, (1977) Konowalchuk et al, (1977) Karmali (1989) การผลิตสารพิษได้รับการยืนยันโดยใช้การวิเคราะห์เซลล์เวโรตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้. ลิตร monocytogenes การตรวจสอบ 2,002.09 AOAC (2003) ตรวจสอบและ MPN ประมาณการ TECRA Listeria ภาพ Immunoassay (VIA ™). องค์การอาหารและยา (2000) บัตรประจำตัวสันนิษฐานแยกถูกระบุโดยใช้ลักษณะ phenotypical และชีวเคมีตามที่อธิบายไว้ในคู่มือการวิเคราะห์องค์การอาหารและยาแบคทีเรียบทที่ 10 Salmonella spp การตรวจสอบ AOAC 998.09 (2001) ตรวจสอบและ MPN ประมาณการ TECRA Salmonella ภาพ Immunoassay (VIA ™). บัตรประจำตัวสันนิษฐานแยกถูกระบุโดยใช้การเกาะติดกันภาพนิ่งที่มีเชื้อ Salmonella polyvalent O (AS) และ polyvalent H (ขั้นตอนที่ 1 และ 2) antisera (Remel ยุโรป จำกัด ) Campylobacter spp การตรวจสอบ MIRINZ (2000a) MIRINZ (2000b) Baylis et al, (2000) ตรวจสอบและ MPN ประมาณการจากการเพิ่มคุณค่าหลักในน้ำซุปโบลตันตามมาด้วยการแยก Campylobacter ในเลือดฟรีวุ้นเลือกปรับเปลี่ยน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตารางที่ 1 .
วัฒนธรรมสื่อและวิธีการที่ใช้สำหรับการทดสอบทางจุลชีววิทยาของตัวอย่างน้ำนมดิบ วิธีการอ้างอิง
แบคทีเรียชนิดของกระบวนการ ( s )
นับ ISO 6888-1 ( 1999 ) ตัวนับจาน แบร์ด ( ตัววุ้น พลัส tellurite ไข่แดง ( 0.5% ( w / v ) หรือกระต่ายพลาสมาเกร็ดวุ้น .
ให้ผลยืนยันการล่าอาณานิคมเป็นลูกเมียทดสอบ .
E( นับ 16649-2 ISO ( 2001 ) จานนับßที่มีอวัยวะบวก E . coli อาณานิคมนับเป็นทริพโทนน้ำดี x-glucuronide วุ้นที่ 37 และ 45 องศา การตรวจหาเชื้อ E . coli
เป็นสมาชิกไม่ 996.09 ( 1999 )
mirinz ( 2000c ) การตรวจหาและกำจัดประมาณเทคร่าเป็นสมาชิกภาพ ( ผ่านทาง™ ) .
แยกการใช้แม่เหล็กแยกเป็นมมูโนคําแนะนําของผู้ผลิต ( dynabeads ต่อ ,Invitrogen สหรัฐอเมริกา ) และชุบใน Lynx ด้วยซอร์บิทอลและแรงยกตัว , tellurite ( ct-smac ) .
ซอร์บิทอลอาณานิคมทางปฏิกิริยาทั่วไป สามชุดเหล็กวุ้นวุ้นตาลเหล็กมีการใช้ E . coli เป็นสมาชิกน้ำยางชุดทดสอบ ( oxoid , UK ) .
Paton Paton ( 1998 ) และน้ำยางเป็นอาณานิคมmultiplex PCR มีวัตถุประสงค์เพื่อยืนยันการแสดงตนของสารพิษยีน ( s ) stx1 และ / หรือ stx2 และยัง และ hly เป็นยีน
สาขา et al . ( 1997 )
Wang et al . ( 2002 ) โดยมีวัตถุประสงค์เพื่อทดสอบสำหรับการปรากฏตัวของ ) ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ .
สเปียร์ส et al . ( 1977 )
konowalchuk et al . ( 1977 )
karmali ( 1989 ) การผลิตสารพิษ การใช้เวโรเซลล์ ( ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ .
Lการตรวจหาโปรตีน monocytogenes 2002.09 ( 2003 ) การตรวจหาและกำจัดโรค Listeria ประมาณการเทคร่าภาพ ( ผ่าน™ ) .
FDA ( 2000 ) การระบุการใช้น้ำยาชนิดไอโซเลท phenotypical และชีวเคมีตามที่อธิบายในแบคทีเรียทาง FDA คู่มือ บทที่ 10
ซัลโมเนลลาตรวจหาโปรตีน 998 .09 ( 2001 ) การตรวจหาและกำจัดเชื้อโรคและการประเมินเทคร่า ( ผ่าน™ ) .
การจำแนกให้ผลไอโซเลทระบุใช้เทียนขาวสไลด์กับเชื้อ Salmonella ต่อ O ( a-s ) และต่อ H ( ระยะที่ 1 และ 2 ) เบา ( remel ยุโรปจำกัด ) รวมทั้งการตรวจสอบ mirinz spp .
( ประกอบ ) ( 2000b )

mirinz เบย์ลิส et al .( 2000 ) การตรวจสอบและการประเมินตามหลักวิธี MPN ในโบลตัน ตามด้วยการแยกน้ำซุปโดยรวมทั้งเลือดฟรีเลือกวุ้น