processed routinely for histology,

processed routinely for histology, sectioned at 5 lm and stained
with haemotoxylin and eosin (H&E), Giemsa, and Chromotrope
2R modified trichrome (Weber et al., 1992). For TEM, small pieces
(2 mm3) of hepatopancreatic tissue from the same shrimp specimens
were fixed in 2.5% glutaraldehyde and 4% paraformaldehyde,
or 6% glutaraldehyde, in Millonig buffer followed by washing in
three changes of 0.1 M sodium cacodylate buffer and stained en
bloc in 0.5% aqueous uranyl acetate for 1 h. The fixed tissues were
embedded in epoxy resin 812 (Agar Scientific-pre-mix kit 812) following
dehydration through a graded acetone series. Thick sections
were stained with Toluidine Blue for viewing with a light microscope
to identify sections with suitable target areas. Ultra thin sections
(70–90 nm) of these samples were mounted on uncoated
copper grids and stained with uranyl acetate and Reynolds’ lead
citrate. Sections were examined using a JEOL 1210 transmission
electron microscope.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ดำเนินการเป็นประจำสำหรับมิญชวิทยา แบ่งช่องที่ 5 lm และย้อมhaemotoxylin eosin (H & E), Giemsa และ Chromotrope2R แก้ไข trichrome (เว et al. 1992) สำหรับ TEM ชิ้นเล็ก ๆ(2 mm3) ของเนื้อเยื่อ hepatopancreatic จากตัวกุ้งอย่างเดียวได้รับการแก้ไขใน glutaraldehyde 2.5% และ 4% paraformaldehydeหรือ 6% glutaraldehyde ในบัฟเฟอร์ Millonig ตาม ด้วยล้างในสามการเปลี่ยนแปลงของบัฟเฟอร์ 0.1 M โซเดียม cacodylate และ en ย้อมค่ายในอะซิเต uranyl สารละลาย 0.5% สำหรับ 1 ชั่วโมง เนื้อเยื่อถาวรได้ในอีพ็อกซี่เรซิ่น 812 (Agar วิทยาศาสตร์ก่อนผสมชุด 812) ต่อไปนี้การคายน้ำผ่านชุดโตนจัดระดับ ส่วนหนาย้อม ด้วยสี Toluidine ดู ด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสงการระบุส่วนพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม ส่วนที่บางเป็นพิเศษ(70-90 นาโนเมตร) ตัวอย่างเหล่านี้ติดตั้งบนเคลือบผิวทองแดงกริด และเลอะ uranyl อะซิเตทและนำของเรย์โนลด์สซิเตรท ส่วนที่ถูกตรวจสอบโดยใช้การส่ง JEOL 1210กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การประมวลผลเป็นประจำสำหรับจุลแบ่งที่ 5 LM และย้อมสี
ด้วย haemotoxylin และ Eosin (H & E) Giemsa และ Chromotrope
2R การแก้ไข trichrome (Weber et al., 1992) สำหรับ TEM, ชิ้นเล็ก ๆ
(2 mm3) ของเนื้อเยื่อ Hepatopancreatic จากตัวอย่างกุ้งเดียวกัน
ได้รับการแก้ไขใน glutaraldehyde 2.5% และ paraformaldehyde 4%
หรือ glutaraldehyde 6% ใน Millonig บัฟเฟอร์ตามด้วยการซักผ้าใน
สามการเปลี่ยนแปลงที่ 0.1 M โซเดียมบัฟเฟอร์ cacodylate และย้อมสี en
Bloc 0.5% อะซิเตท uranyl น้ำเป็นเวลา 1 ชั่วโมง เนื้อเยื่อคงถูก
ฝังอยู่ในอีพ็อกซี่เรซิ่น 812 (วุ้นวิทยาศาสตร์ผสมล่วงหน้า Kit 812) ดังต่อไปนี้
การคายน้ำผ่านชุดอะซีโตนอย่างช้า ๆ ส่วนหนา
ถูกย้อมด้วยสีฟ้า toluidine สำหรับการดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง
ในการระบุส่วนที่มีพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม อัลตร้าบางส่วน
(70-90 นาโนเมตร) ของกลุ่มตัวอย่างเหล่านี้ถูกติดตั้งอยู่บนเคลือบผิว
กริดทองแดงและย้อมด้วยสีอะซิเตท uranyl และนาดส์ 'นำ
ซิเตรต ส่วนที่มีการตรวจสอบการใช้ JEOL 1210 ส่ง
กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

สำหรับการประมวลผลตรวจเนื้อเยื่อแบ่ง 5 คราบโดยกับ haemotoxylin และ eosin ( H & E ) , จิมซา และ chromotrope2R ดัดแปลงเทคนิค ( Weber et al . , 1992 ) สำหรับ TEM , ชิ้นเล็ก ๆ( 2 มม. ) ของ hepatopancreatic เนื้อเยื่อจากตัวอย่างกุ้งเหมือนกันได้รับการแก้ไขใน 2.5 % และ 4 % พาราฟอร์มาลดิไฮด์ดี ,หรือ 6 % glutaraldehyde ใน millonig บัฟเฟอร์ตามด้วยการล้างใน3 การเปลี่ยนแปลงของ 0.1 โมลาร์โซเดียมจากนั้นนำคราบในบัฟเฟอร์พรรคการเมืองใน 0.5% สารละลายยูเรนิลอะซิเตต เป็นเวลา 1 ชั่วโมง เนื้อเยื่อถาวรคือฝังตัวอยู่ในอีพอกซีเรซิน 812 ( วุ้นทางวิทยาศาสตร์ก่อนผสมชุด 812 ) ดังต่อไปนี้ผ่านระดับ dehydration ) ชุด ส่วนหนาถูกย้อมด้วยโทลูอิดีนสีฟ้าสำหรับการดูด้วยกล้องจุลทรรศน์แสงเพื่อระบุส่วนที่มีพื้นที่เป้าหมายที่เหมาะสม ส่วนที่บางเป็นพิเศษ( 70 – 90 nm ) ของตัวอย่างเหล่านี้ถูกติดตั้งบนเคลือบผิวกริดทองแดงและย้อมด้วยเตตและยูเรนิล Reynolds ' นำซิเตรต . ส่วนมีการใช้จอลอย่างส่งกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน