A study was undertaken to investiga

A study was undertaken to investigate Salmonella in pigs at each step from birth to carcass. Environmental
and/or pig samples were taken at birth, farrowing, 1st weaning, 2nd weaning, finishing, transport, lairage,
bleeding and chilling of carcasses and tested for Salmonella. All isolates were characterised in terms of serotype,
phage type (where relevant) and subtyping with pulsed field gel electrophosesis (PFGE). Isolates were
tested for antibiotic resistance, resistance (intI1, blaCIT, blaTem, blaPSE-1, blaOXA-1, floR, catA1, aadA1, aadA2, tetA,
tetB, tetG, sul1and aphA1) and virulence (invA, rck, spvC and pefA) genes. PCR was also performed to test for
the presence of the left junction, thdF-S001 and the right junction, S004-int2 or S004-yidY of Salmonella
genomic island 1 (SGI1). Overall 4.3%, 27.5% and 5% of environmental, throat/rectal and carcass samples
were Salmonella positive, respectively. S. Typhimurium DT193 was detected during production, while
S. Typhimurium DT17 and U311 were present in lairage at the abattoir, where strain characterisation
suggested cross contamination of the live animals occurred. The carcasses were also cross contaminated
with S. Brandenburg during processing. PFGE grouped the isolates by serotype and/or phage type. The
DT193 isolates displayed the ACSSuTTmMn/Gm resistance phenotype and carried the invA, spvC, rck,
bla-tem, aadA2, tetA, strA virulence/antibiotic resistance markers; U311 showed an ASSuTMn resistance pattern
and carried invA and tetB; DT17 was sensitive to all antibiotics tested but invA, spv and rck positive while
S. Brandenburg displayed neither resistance nor virulence gene carriage. None of the isolates possessed class
1 integrons and all isolates were negative for the left and right junctions of SGI1.
It was concluded that control activities should target improved biosecurity at farm level and better sanitation
in lairage. This study also provides further evidence that multiple drug resistance may be associated with
non-SGI1 Salmonella strains. The continued emergence of non-DT104 S. Typhimurium isolates exhibiting
multidrug resistance is a cause for concern as is the persistence of highly virulent Salmonella strains in the
abattoir environment.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

การศึกษาดำเนินการตรวจสอบระดับในสุกรในแต่ละขั้นตอนจากเกิดกับซาก สิ่งแวดล้อมหรือตัวอย่างหมูที่ถ่ายที่เกิด farrowing, weaning 1, weaning 2 เสร็จสิ้น ขนส่ง lairageมีเลือดออก และหนาวของซาก และผ่านการทดสอบในระดับ ทั้งหมดที่แยกได้มีประสบการ์ใน serotypephage พิมพ์ (เกี่ยวข้อง) และลูกผสมสามกับสูงฟิลด์เจ electrophosesis (PFGE) แยกได้ทดสอบความต้านทานยาปฏิชีวนะ ความต้านทาน (intI1, blaCIT, blaTem, blaPSE 1, blaOXA 1, floR, catA1, aadA1, aadA2, tetAtetB, tetG, sul1and aphA1) และยีน virulence (invA, rck, spvC และ pefA) PCR นอกจากนี้ยังทำการทดสอบของชุมทางซ้าย thdF S001 และ แยกขวา S004 int2 หรือ S004 yidY ของสายgenomic เกาะ 1 (SGI1) 4.3% โดยรวม 27.5% และ 5% ของตัวอย่างคอ/ไส้และซากสิ่งแวดล้อมมีซัลบวก ตามลำดับ S. ในขณะที่ Typhimurium DT193 ตรวจพบในระหว่างการผลิตS. Typhimurium DT17 และ U311 อยู่ใน lairage ที่โรงฆ่าสัตว์ สายพันธุ์ที่ตรวจลักษณะเฉพาะของแนะนำการปนเปื้อนข้ามที่ชีวิตเกิดขึ้น ซากยังข้ามปนเปื้อนกับบรันเดนบูร์ก s ได้ในระหว่างการประมวลผล PFGE จัดกลุ่มแยกตามชนิด serotype หรือ phage ที่DT193 แยกแสดง phenotype ต้านทาน ACSSuTTmMn/กรัม และดำเนิน invA, spvC, rckยการก้าว aadA2, tetA, strA virulence/ยา ปฏิชีวนะต้านทานเครื่อง หมาย U311 แสดงให้เห็นว่ารูปแบบความต้านทาน ASSuTMnและจำหน่าย invA และ tetB DT17 ไวต่อยาปฏิชีวนะที่ทดสอบ แต่ invA, spv และบวกขณะ rckบรันเดนบูร์ก s ได้แสดงไม่ต้านทานหรือการขนส่งยีน virulence ไม่มีการแยกชั้นมอบ1 integrons และแยกทั้งหมดถูกลบสำหรับ junctions ซ้าย และขวาของ SGI1ได้สรุปได้ว่า กิจกรรมการควบคุมควรเป้าหมาย biosecurity ปรับปรุงในระดับฟาร์มและการสุขาภิบาลดีใน lairage การศึกษานี้ยังมีอีกหลักฐานที่ต้านทานยาเสพติดหลายอาจเกี่ยวข้องกับสายพันธุ์ซัล SGI1 เกิดขึ้นอย่างต่อเนื่องของไม่ใช่ - DT104 S. Typhimurium แยกอย่างมีระดับต้านทาน multidrug เป็นสาเหตุสำหรับกังวลเป็นการคงอยู่ของสายพันธุ์ระดับสูง virulent ในการสภาพแวดล้อมของโรงฆ่าสัตว์

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การศึกษาได้ดำเนินการเพื่อตรวจสอบเชื้อ Salmonella ในสุกรในแต่ละขั้นตอนตั้งแต่แรกเกิดถึงซาก สิ่งแวดล้อม
และ / หรือกลุ่มตัวอย่างถูกนำหมูที่เกิดคลอด, หย่านม 1, 2 หย่านม, ตกแต่ง, การขนส่ง, lairage,
เลือดออกและหนาวเหน็บของซากและทดสอบสำหรับเชื้อ Salmonella ทุกสายพันธุ์มีลักษณะในแง่ของ serotype,
ประเภทฟาจ (ที่เกี่ยวข้องกัน) และ subtyping กับสนามพัลเจล electrophosesis (PFGE) สายพันธุ์ที่ได้รับ
การทดสอบการต้านทานยาปฏิชีวนะต้านทาน (intI1, blaCIT, ยีน blaTEM, blaPSE-1, blaOXA-1, Flor, catA1, aadA1, aadA2, Teta,
TETB, tetG, sul1and aphA1) และความรุนแรง (Inva, RCK, SPVC และ PEFA ) ยีน PCR ก็ยังดำเนินการในการทดสอบสำหรับ
การปรากฏตัวของทางแยกซ้ายมือ, thdF-S001 และทางแยกขวา S004-S004 Int2 หรือ-yidY ของเชื้อ Salmonella
เกาะจีโนมที่ 1 (SGI1) โดยรวม 4.3%, 27.5% และ 5% ของสิ่งแวดล้อมคอ / ทวารหนักและตัวอย่างซาก
Salmonella เป็นบวกตามลำดับ S. Typhimurium DT193 ที่ตรวจพบในระหว่างการผลิตในขณะที่
เอส Typhimurium DT17 และ U311 มีอยู่ใน lairage ที่โรงฆ่าสัตว์ที่ตัวละครสายพันธุ์
แนะนำการปนเปื้อนของสัตว์ที่มีชีวิตที่เกิดขึ้น ซากยังมีการปนเปื้อนข้าม
กับเอสบรันเดนบูระหว่างการประมวลผล PFGE กลุ่มไอโซเลทโดย serotype และ / หรือทำลายจุลินทรีย์ชนิด
DT193 แยกแสดง ACSSuTTmMn / Gm ต้นความต้านทานและดำเนิน Inva, SPVC, RCK,
BLA-Tem, aadA2, Teta ร้ายแรง Stra / เครื่องหมายต้านทานยาปฏิชีวนะ; U311 แสดงให้เห็นว่ารูปแบบการต้านทาน ASSuTMn
และดำเนิน Inva และ TETB; DT17 เป็นความไวต่อยาปฏิชีวนะทดสอบทั้งหมด แต่ Inva, SPV และ RCK บวกในขณะที่
เอส บรันเดนบูแสดงความต้านทานมิได้สายการบินยีนรุนแรง ไม่มีเชื้อครอบครองชั้น
1 integrons และไอโซเลทเป็นลบสำหรับทางแยกด้านซ้ายและขวาของ SGI1.
ก็สรุปได้ว่ากิจกรรมการควบคุมควรกำหนดเป้าหมายความปลอดภัยทางชีวภาพที่ดีขึ้นในระดับฟาร์มและสุขาภิบาลที่ดีขึ้น
ใน lairage การศึกษาครั้งนี้นอกจากนี้ยังมีหลักฐานอื่น ๆ เพิ่มเติมที่ดื้อยาหลายอาจจะเกี่ยวข้องกับการ
ที่ไม่ SGI1 สายพันธุ์เชื้อ Salmonella เกิดขึ้นอย่างต่อเนื่องของการไม่ DT104 S. Typhimurium แยกการแสดง
ความต้านทาน multidrug เป็นสาเหตุสำหรับกังวลเป็นความคงทนของความรุนแรงสูงสายพันธุ์เชื้อ Salmonella ใน
สภาพแวดล้อมที่โรงฆ่าสัตว์