1. IntroductionThe achievement of s

1. Introduction
The achievement of successful semen cryopreservation would represent a dramatic leap in swine production systems. This would allow to the widespread use of germplasm banks for storing semen doses from selected males, for preserving genetic diversity, and for conserving rare breeds. Moreover, the long-term availability of frozen semen doses would allow for more flexible and efficient breeding programs, and it would help to control the transmission of pathogens [1]. Despite the utilization of refrigerated long-term semen storage, the use of cryopreserved boar semen has not achieved widespread acceptability for commercial breeding by artificial insemination, mainly for economical and political reasons, although there is need for technical improvement too [2]. It is possible to achieve fertility results comparable to fresh semen by combining cryopreservation with deep intrauterine insemination and accurate estimation of ovulation [3]. However, the use of thawed semen results in decreased farrowing rates and litter size if the insemination occurs outside this ovulation time window. Environmental and management factors affect fertility of thawed semen more than when using refrigerated semen [4] and [5].

The damage to boar sperm caused by cryopreservation includes motility impairment, chromatin damage, membrane alterations, and decreased mitochondrial membrane potential, caused by cold shock, osmotic shock, and oxidative damage by reactive oxygen species (ROS) to which boar spermatozoa seem to be especially sensitive [6] and [7]. Several factors have been presented as the cause of the low or irregular fertility results of frozen-thawed boar spermatozoa, including premature capacitation-like changes during the process of cooling and cryopreservation [6] and [8]. These changes have been termed as “cryocapacitation,” and could shorten the life span of spermatozoa, modify regulation pathways, cause early acrosome reaction, and modify the plasma membrane, resulting in part of the sperm population being unable to interact with the oviduct or to fertilize the ovum [9].

Using seminal plasma could help to improve semen quality after thawing. It is known that seminal plasma affects the physiology of spermatozoa, although its effects on different species are very variable, depending also on the condition of the sample [10], [11], [12] and [13]. In the case of boar spermatozoa, incubation of fresh or cryopreserved sperm in media supplemented with 10% seminal plasma seems to prevent, and possibly reverse, capacitation-related changes [7], [8] and [14]. In several studies, the post-thawing addition of seminal plasma improved membrane and acrosomal integrity, and enhanced the in vivo fertilization [15]. Use of 10% seminal plasma after thawing rendered good fertility results when combined with a modified freezing/thawing protocol [16].

However Abad et al. [17] found that 10% seminal plasma supplementation did not affect the creation of the oviductal sperm reservoir. The same authors reported no improvement on sow fertility when thawed boar semen was supplemented with 10% seminal plasma and inseminated by 2 or 12 hours of the predicted time of ovulation [18]. Therefore, they concluded that seminal plasma could not completely reverse cryocapacitation, or else other factors were having a role, decreasing cryopreserved semen fertility.

The objective of the present study was to enhance our understanding on the effects of post-thawing addition of seminal plasma to boar semen by analyzing several physiological variables using flow cytometry. This study follows a previous trial in which adding 50% seminal plasma to thawed boar semen made both pregnancy rate and mean litter size comparable to those achieved with liquid-stored semen [19]. Taking this study as a starting point, we posed the hypothesis that the seminal plasma would modify the physiology of thawed spermatozoa, explaining the fertility improvement found by [19]. Thus, we assessed the spermatozoa during a 4-hour incubation in the presence of 50% seminal plasma. A concentration of 10% seminal plasma was included in the study because it has been used in most studies, although it has yielded mixed results.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

1. บทนำความสำเร็จของน้ำเชื้อสำเร็จ cryopreservation จะแสดงกระโดดอย่างมากในระบบการผลิตสุกร นี้จะช่วยให้การแพร่หลายใช้ germplasm ธนาคารเก็บปริมาณน้ำเชื้อจากชายเลือก การรักษาความหลากหลายทางพันธุกรรม และอนุรักษ์สายพันธุ์หายาก นอกจากนี้ พร้อมใช้งานระยะยาวของปริมาณน้ำเชื้อแช่แข็งจะช่วยให้โปรแกรมพันธุ์ยืดหยุ่น และมีประสิทธิภาพมากขึ้น และมันจะช่วยในการควบคุมการส่งผ่านของโรค [1] แม้ มีการใช้ประโยชน์ของตู้เย็นและเก็บน้ำเชื้อระยะยาว การใช้น้ำเชื้อสุกร cryopreserved ไม่ฯ acceptability แพร่หลายสำหรับการเพาะพันธุ์ในเชิงพาณิชย์ โดยกองผสมเทียม ส่วนใหญ่เป็นเหตุผลทางการเมือง และเศรษฐกิจ แม้ว่ามีความจำเป็นสำหรับการปรับปรุงเทคนิคเกินไป [2] เป็นเพื่อให้บรรลุผลอุดมสมบูรณ์เทียบเท่ากับน้ำเชื้อสด โดย cryopreservation intrauterine ลึกผสมเทียมและการประเมินความถูกต้องของการตกไข่ [3] อย่างไรก็ตาม การใช้น้ำเชื้อ thawed ผล farrowing ราคาลดลงและขนาดของแคร่ผสมเทียมที่เกิดขึ้นนอกหน้าต่างเวลาตกไข่นี้ ปัจจัยสิ่งแวดล้อมและการจัดการมีผลต่อความอุดมสมบูรณ์ของน้ำเชื้อ thawed มากกว่าเมื่อใช้รเออร์น้ำเชื้อ [4] และ [5]ความเสียหายเกิดจาก cryopreservation อสุจิสุกรรวมผล motility โครมาตินความเสียหาย เปลี่ยนแปลงเยื่อ และเยื่อ mitochondrial ลดลงศักยภาพ สาเหตุ ทางเย็นช็อค ช็อคออสโมติก oxidative เสียชนิดปฏิกิริยาออกซิเจน (ROS) ที่สุกร spermatozoa ที่ดูเหมือนจะ เป็นโดยเฉพาะอย่างยิ่งสำคัญ [6] [7] ปัจจัยหลายอย่างได้ถูกนำเสนอสาเหตุของความอุดมสมบูรณ์ต่ำ หรือผิดปกติผลสุกรแช่แข็ง-thawed spermatozoa รวมทั้งเปลี่ยนแปลง capacitation เหมือนก่อนวัยอันควรในการระบายความร้อน และ cryopreservation [6] และ [8] เปลี่ยนแปลงเหล่านี้ได้เรียกว่าเป็น "cryocapacitation และสามารถย่นระยะชีวิตของ spermatozoa แก้ไขระเบียบหลัก ทำปฏิกิริยาอะโครโซมต้น และปรับเปลี่ยนพลาสมาเมมเบรน ในส่วนของประชากรอสุจิที่ไม่สามารถโต้ตอบกับ oviduct หรือ fertilize ovum [9]ใช้พลาสม่าบรรลุถึงสามารถช่วยในการปรับปรุงคุณภาพน้ำเชื้อหลัง thawing เป็นที่รู้จักกันว่า พลาสม่าบรรลุถึงมีผลต่อสรีรวิทยาของ spermatozoa ถึงแม้ว่าผลของสายพันธุ์ต่าง ๆ จะผันแปรมาก ขึ้นอยู่กับเงื่อนไขของตัวอย่าง [10], [11], [12] นอกจากนี้ [13] และ ในกรณีของสุกร spermatozoa คณะทันตแพทยศาสตร์ของอสุจิสด หรือ cryopreserved สื่อเสริม ด้วยพลาสม่าบรรลุถึง 10% น่าจะ ป้องกัน และอาจย้อน กลับ capacitation เปลี่ยนแปลง [7], [8] และ [14] ในหลายการศึกษา การเพิ่มหลัง thawing พลาสม่าบรรลุถึงเมมเบรนและความสมบูรณ์ของ acrosomal และปรับปรุง [15] การปฏิสนธิในสัตว์ทดลอง ใช้พลาสม่าบรรลุถึง 10% หลัง thawing แสดงผลอุดมสมบูรณ์ดีเมื่อรวมกับการปรับเปลี่ยนจุดเยือก แข็ง/thawing โพรโทคอล [16]ร้อยเอ็ดอาบัด al. [17] อย่างไรก็ตามพบแห้งเสริมพลาสม่าบรรลุถึง 10% ที่ไม่ได้มีผลต่อการสร้างอ่างเก็บน้ำอสุจิ oviductal ผู้เขียนเดียวกันรายงานไม่ปรับปรุงบนเสาความอุดมสมบูรณ์เมื่อน้ำเชื้อสุกร thawed เสริม ด้วยพลาสม่าบรรลุถึง 10% และ inseminated 2 หรือ 12 ชั่วโมงเวลาการคาดการณ์ของการตกไข่ [18] ดังนั้น พวกเขาสรุปว่า พลาสม่าบรรลุถึงอาจไม่สมบูรณ์กลับ cryocapacitation หรือ อื่น ๆ ปัจจัยอื่น ๆ มีบทบาท ความอุดมสมบูรณ์ของน้ำเชื้อ cryopreserved ลดลงวัตถุประสงค์ของการศึกษาปัจจุบันเพื่อ เพิ่มความเข้าใจของเราในลักษณะของหลัง thawing แห่งพลาสม่าบรรลุถึงการน้ำเชื้อสุกรโดยการวิเคราะห์ตัวแปรต่าง ๆ ที่ใช้กระแสเซลล์สรีรวิทยาได้ การศึกษานี้ไปทดลองก่อนหน้าที่เพิ่ม 50% บรรลุถึงพลาสม่าจะน้ำเชื้อสุกร thawed ทำให้อัตราการตั้งครรภ์และค่าเฉลี่ยเปรียบเทียบได้กับขนาดแคร่ทำ ด้วยของเหลวที่เก็บน้ำเชื้อ [19] การศึกษานี้เป็นจุดเริ่มต้น เราทำให้เกิดสมมติฐานว่า พลาสม่าบรรลุถึงจะปรับเปลี่ยนสาขาสรีรวิทยาของ thawed spermatozoa อธิบายการปรับปรุงความอุดมสมบูรณ์ที่พบ [19] ดังนั้น เราประเมิน spermatozoa ในระหว่างบ่ม 4 ชั่วโมงในต่อหน้าของพลาสม่าบรรลุถึง 50% ความเข้มข้นของพลาสมาบรรลุถึง 10% รวมอยู่ในการศึกษาเนื่องจากมันถูกใช้ในการศึกษามากที่สุด แต่มันมีผลผลผสม

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

1.
บทนำความสำเร็จของการเก็บรักษาน้ำเชื้อที่ประสบความสำเร็จจะเป็นตัวแทนของการก้าวกระโดดอย่างมากในระบบการผลิตหมู นี้จะช่วยให้การใช้งานอย่างแพร่หลายของธนาคารเชื้อพันธุกรรมสำหรับการจัดเก็บปริมาณน้ำอสุจิจากเพศเลือกในการรักษาความหลากหลายทางพันธุกรรมและการอนุรักษ์สายพันธุ์ที่หายาก นอกจากนี้ยังมีความพร้อมใช้งานในระยะยาวของปริมาณน้ำอสุจิแช่แข็งจะช่วยให้โปรแกรมการปรับปรุงพันธุ์ที่มีความยืดหยุ่นและมีประสิทธิภาพมากขึ้นและมันจะช่วยในการควบคุมการแพร่กระจายของเชื้อโรค [1] แม้จะมีการใช้ประโยชน์จากการจัดเก็บในตู้เย็นน้ำอสุจิในระยะยาวการใช้น้ำเชื้อแช่แข็งหมูป่ายังไม่ประสบความสำเร็จในการยอมรับอย่างแพร่หลายในเชิงพาณิชย์สำหรับการเพาะพันธุ์โดยการผสมเทียมส่วนใหญ่ด้วยเหตุผลทางการเมืองเศรษฐกิจและถึงแม้จะมีความจำเป็นสำหรับการปรับปรุงเทคนิคเกินไป [2] มันเป็นไปได้เพื่อให้บรรลุผลความอุดมสมบูรณ์เปรียบได้กับน้ำเชื้อสดโดยการรวมการเก็บรักษาที่มีการเพาะเชื้อมดลูกลึกและการประมาณค่าที่ถูกต้องของการตกไข่ [3] อย่างไรก็ตามการใช้ผลการละลายน้ำอสุจิในอัตราที่ลดลงคลอดและขนาดครอกถ้าผสมเทียมเกิดขึ้นนอกหน้าต่างเวลาการตกไข่นี้ ปัจจัยด้านสิ่งแวดล้อมและการจัดการส่งผลกระทบต่อความอุดมสมบูรณ์ของน้ำอสุจิละลายมากขึ้นกว่าเมื่อใช้น้ำเชื้อแช่ตู้เย็น [4] และ [5]. ความเสียหายให้กับหมูป่าสเปิร์มที่เกิดจากการเก็บรักษารวมถึงการด้อยค่าการเคลื่อนไหวของความเสียหายโครมาปรับเปลี่ยนเมมเบรนและลดลงที่มีศักยภาพเยื่อยลที่เกิดจากความหนาวเย็น ช็อตช็อตออสโมติกและความเสียหายออกซิเดชันโดยออกซิเจน (ROS) ที่หมูป่าตัวอสุจิดูเหมือนจะมีความสำคัญโดยเฉพาะอย่างยิ่งเป็น [6] [7] มีหลายปัจจัยที่ได้รับการเสนอเป็นสาเหตุของการเกิดผลอุดมสมบูรณ์ต่ำหรือผิดปกติของตัวอสุจิหมูแช่แข็งละลายรวมทั้งการเปลี่ยนแปลง capacitation เหมือนก่อนวัยอันควรในระหว่างขั้นตอนของการทำความเย็นและการเก็บรักษาส่วน [6] [8] การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ได้รับการเรียกว่าเป็น "cryocapacitation" และอาจทำให้อายุขัยสั้นลงของสเปิร์มที่ปรับเปลี่ยนวิถีการควบคุมทำให้เกิดปฏิกิริยา acrosome ต้นและปรับเปลี่ยนเมมเบรนพลาสม่าที่มีผลในส่วนของประชากรสเปิร์มที่ไม่สามารถโต้ตอบกับท่อนำไข่หรือ ขุนไข่ [9]. การใช้พลาสม่าน้ำเชื้อจะช่วยในการปรับปรุงคุณภาพน้ำอสุจิหลังการละลาย เป็นที่ทราบกันว่าพลาสม่าน้ำเชื้อมีผลต่อสรีรวิทยาของตัวอสุจิแม้ว่าผลกระทบต่อสายพันธุ์ที่แตกต่างกันเป็นตัวแปรมากขึ้นอยู่ยังอยู่ในสภาพของตัวอย่าง [10] [11] [12] และ [13] ในกรณีที่มีตัวอสุจิหมูป่า, ฟักตัวของตัวอสุจิสดหรือแช่แข็งในสื่อเสริมด้วยน้ำเชื้อพลาสม่า 10% ดูเหมือนว่าเพื่อป้องกันและอาจจะย้อนกลับการเปลี่ยนแปลง capacitation ที่เกี่ยวข้องกับ [7] [8] และ [14] ในการศึกษาหลายแห่งนอกจากนี้หลังการละลายของพลาสม่าน้ำเชื้อเมมเบรนที่ดีขึ้นและความสมบูรณ์ acrosomal และเพิ่มขึ้นในร่างกายการปฏิสนธิ [15] การใช้พลาสม่า 10% ละลายน้ำเชื้อหลังจากการแสดงผลความอุดมสมบูรณ์ดีเมื่อรวมกับการปรับเปลี่ยนการแช่แข็ง / ละลายโพรโทคอ [16]. อย่างไรก็ตาม Abad et al, [17] พบว่า 10% พลาสม่าเสริมน้ำเชื้อไม่ได้ส่งผลกระทบต่อการสร้างอ่างเก็บน้ำอสุจิท่อนำไข่ ผู้เขียนเดียวกันรายงานการปรับปรุงความอุดมสมบูรณ์หว่านเมื่อละลายน้ำอสุจิหมูป่าถูกเสริมด้วยน้ำเชื้อพลาสม่า 10% และผสมเทียม 2 หรือ 12 ชั่วโมงของเวลาที่คาดการณ์การตกไข่ [18] ดังนั้นพวกเขาได้ข้อสรุปว่าพลาสม่าเชื้ออาจไม่สมบูรณ์กลับ cryocapacitation หรืออื่น ๆ ที่ปัจจัยอื่น ๆ ที่กำลังมีบทบาทลดลงความอุดมสมบูรณ์ของน้ำอสุจิแช่แข็ง. วัตถุประสงค์ของการศึกษาครั้งนี้มีวัตถุประสงค์เพื่อเสริมสร้างความเข้าใจของเราเกี่ยวกับผลกระทบของการเติมหลังการละลายของพลาสม่าน้ำเชื้อไป น้ำอสุจิหมูป่าโดยการวิเคราะห์ตัวแปรทางสรีรวิทยาหลายใช้โฟ การศึกษาครั้งนี้เป็นไปตามการพิจารณาคดีซึ่งก่อนหน้านี้ในการเพิ่มเชื้อพลาสม่า 50% ถึงน้ำอสุจิหมูป่าทำละลายทั้งอัตราการตั้งครรภ์และหมายถึงขนาดครอกเปรียบได้กับผู้ที่ประสบความสำเร็จกับน้ำอสุจิของเหลวที่เก็บไว้ [19] การศึกษาครั้งนี้เป็นจุดเริ่มต้นที่เราวางสมมติฐานที่ว่าพลาสม่าน้ำเชื้อจะปรับเปลี่ยนสรีรวิทยาของสเปิร์มละลายที่อธิบายการปรับปรุงความอุดมสมบูรณ์พบโดย [19] ดังนั้นเราประเมินตัวอสุจิระหว่างการบ่ม 4 ชั่วโมงในการปรากฏตัวของพลาสม่า 50% น้ำเชื้อ ความเข้มข้นของเชื้อพลาสม่า 10% ถูกรวมอยู่ในการศึกษาเพราะมันถูกนำมาใช้ในการศึกษามากที่สุดแม้ว่ามันจะมีผลให้ผลการผสม

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

1 . บทนำ
ผลสัมฤทธิ์ของการเก็บรักษาน้ำเชื้อแบบแช่แข็งที่ประสบความสำเร็จจะแสดงถึงก้าวกระโดดอย่างมากในสุกร ระบบการผลิต นี้จะอนุญาตให้ใช้งานอย่างแพร่หลายของธนาคารพันธุกรรมเพื่อเก็บน้ำเชื้อโดสเลือกตัวผู้ เพื่อรักษาความหลากหลายทางพันธุกรรม และเพื่ออนุรักษ์พันธุ์หายาก นอกจากนี้ความพร้อมระยะยาวของน้ำเชื้อโดส จะอนุญาตให้มีความยืดหยุ่นมากขึ้นและมีประสิทธิภาพโปรแกรมการเพาะพันธุ์ และมันจะช่วยควบคุมการส่งผ่านเชื้อโรค [ 1 ] แม้จะมีการใช้ตู้เย็นเก็บน้ำเชื้อระยะยาว ใช้ตรวจสอบคุณภาพของน้ำเชื้อสุกรยังไม่บรรลุการยอมรับอย่างกว้างขวางเพื่อการพาณิชย์โดยการผสมเทียมส่วนใหญ่เหตุผลทางเศรษฐกิจและการเมือง แม้ว่าจะต้องปรับปรุงด้านเทคนิคด้วย [ 2 ] มันเป็นไปได้เพื่อให้บรรลุความอุดมสมบูรณ์ของผลเทียบเท่ากับน้ำเชื้อสด โดยรวมกับการผสมเทียม intrauterine และลึกก่อนการประเมินความถูกต้องของการตกไข่ [ 3 ] อย่างไรก็ตามใช้ละลายน้ำเชื้อผลลัพธ์ในโรงเรือนลดลงราคาและขนาดครอกถ้าการตกไข่เกิดขึ้นข้างนอกหน้าต่าง ในครั้งนี้ ปัจจัยด้านสิ่งแวดล้อมและการจัดการมีผลต่อภาวะเจริญพันธุ์ของละลายน้ำเชื้อแช่เย็นมากกว่าเมื่อใช้น้ำเชื้อ [ 4 ] และ [ 5 ] .

ความเสียหายที่เกิดจากเชื้ออสุจิตัวรวมถึงการพบความเสียหายเมมเบรน , การเคลื่อนที่ , การดัดแปลงและลดการเกิดเยื่อที่เกิดจากการเย็น , ช็อก , ช็อกและเกิดความเสียหายโดยปฏิกิริยาชนิดออกซิเจน ( ROS ) ซึ่งหมูป่า 5 ดูเหมือนจะบอบบางมาก [ 6 ] [ 7 ] หลายปัจจัยมี แสดง เป็น สาเหตุของการต่ำหรือผิดปกติจากอสุจิแช่แข็งและละลายหมูป่า ,รวมทั้งคลอดก่อนกำหนดมีเลศนัยเหมือนการเปลี่ยนแปลงในระหว่างกระบวนการของการทำความเย็นและระบบบำบัด [ 6 ] และ [ 8 ] การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้ได้ถูกเรียกว่าเป็น " cryocapacitation " และสามารถร่นชีวิตของอสุจิ ปรับเปลี่ยนแนวทางระเบียบ เพราะต้นที่มีปฏิกิริยาและปรับเปลี่ยนพลาสมาเมมเบรน ,ซึ่งในส่วนของอสุจิประชากรไม่สามารถโต้ตอบกับท่อนำไข่ หรือให้ปุ๋ยไข่ [ 9 ] .

ใช้น้ำอสุจิอาจช่วยปรับปรุงคุณภาพน้ำเชื้อหลังการละลาย มันเป็นที่รู้จักกันว่า น้ำอสุจิ มีผลต่อสรีรวิทยาของอสุจิ แม้ว่าผลของสายพันธุ์ที่แตกต่างกัน มีตัวแปรมาก ทั้งนี้ ในเงื่อนไขของตัวอย่าง [ 10 ] [ 11 ] [ 12 ] และ [ 13 ]ในกรณีของหมูป่าอสุจิหรือสเปิร์มบ่มสด , ตรวจสอบคุณภาพสื่อเสริม 10% น้ำอสุจิจะป้องกัน และอาจย้อนกลับมีเลศนัยที่เกี่ยวข้องการเปลี่ยนแปลง [ 7 ] , [ 8 ] และ [ 14 ] ในการศึกษาหลายแห่ง , โพสต์การเพิ่มน้ำอสุจิปรับปรุงเยื่อและความสมบูรณ์ acrosomal และเสริมฤทธิ์ในการปฏิสนธิ [ 15 ]ใช้ 10% น้ำอสุจิหลังการละลายให้ความอุดมสมบูรณ์ของผลที่ดีเมื่อรวมกับการแก้ไขการแช่แข็ง / ละลายโปรโตคอล [ 16 ] .

แต่บัด et al . [ 17 ] พบว่า 10% เสริมน้ำอสุจิไม่มีผลต่อการสร้างอ่างเก็บน้ำอสุจิ oviductal .ผู้เขียนเดียวกันรายงานการปรับปรุงไม่มีในความอุดมสมบูรณ์ หว่าน เมื่อละลายน้ำเชื้อสุกรที่เสริมด้วย 10% และน้ำอสุจิผสมเทียม 2 หรือ 12 ชั่วโมงของช่วงเวลาการตกไข่ [ 18 ] ดังนั้น จึงสรุปได้ว่า น้ำอสุจิอาจไม่สมบูรณ์กลับ cryocapacitation , หรืออื่น ๆ ปัจจัยอื่น ๆ มี บทบาท การลดภาวะเจริญพันธุ์

ตรวจสอบคุณภาพน้ำเชื้อโดยมีวัตถุประสงค์เพื่อเสริมสร้างความเข้าใจในผลกระทบของการโพสต์เพิ่มน้ำอสุจิ เพื่อวิเคราะห์ตัวแปรทางสรีรวิทยาหลายน้ำเชื้อสุกรโดยใช้เซลล์ไหลการศึกษาแบบทดลองใช้ก่อน ซึ่งการเพิ่ม 50% น้ำอสุจิจะละลายน้ำเชื้อสุกร ทำให้ทั้งการตั้งครรภ์และอัตราหมายถึงขยะขนาดเปรียบเทียบกับความกับน้ำเชื้อเหลว [ 19 ] การ ศึกษานี้เป็นจุดเริ่มต้น เราจึงพบว่าพลาสมา อสุจิจะปรับเปลี่ยนสรีรวิทยาของอสุจิละลายอธิบายการปรับปรุงความอุดมสมบูรณ์ของพบโดย [ 19 ] ดังนั้นเราประเมินมี 3 ใน 4 บ่มในการแสดงตนของ 50% น้ำอสุจิ ความเข้มข้น 10 % น้ำอสุจิถูกรวมอยู่ในการศึกษา เพราะมีการใช้ในการศึกษามากที่สุด แม้จะมีผล
ผสม