Ethanol production from mahula flow

Ethanol production from mahula flowers using free and immo-bilized cells S. cerevisiae (CTCRI strain) started in the log phase of
the growth and maximum ethanol production was achieved during
the stationary phase (96 h) (Fig. 2). In the present study, there was
a marginal fall of 21% and 11.5% in total sugar concentration over
initial content with simultaneous production of 31 and 23.6 g eth-anol/kg flowers up to 24 h of fermentation for the free and immo-bilized yeast cells, respectively. The decrease in sugar reserve
might be also due to its utilization in part, for initial growth and metabolism of S. cerevisiae in addition to its conversion into
ethanol. For 48, 72 and 96 h of fermentation, the sugar concentra-tions were 282, 159 and 120 g/kg flowers with simultaneous in-crease in ethanol concentration to 130.5, 216 and 223.2 g
ethanol/kg flowers, respectively in case of immobilized yeast cells
(Fig. 2B). During the same period, sugar concentrations were 279,
173.3 and 131 g/kg flowers with concomitant increase in concen-tration of ethanol to 113.9, 193.08 and 203.2 g ethanol/kg flowers,
respectively when free (whole) cell were used for fermentation
(Fig. 2A). At 96 h of fermentation, there was 84.8% and 91.1% sugar
conversion resulting in 203.2 and 223.2 g ethanol/kg flowers using
free and immobilized yeast cells, respectively [45 kg of ferment-able sugar (as glucose) yield 20–30 kg of ethanol] [17] . Thus etha-nol yield was 8.96% higher in luffa-based immobilized system than
the free cell system. Further there was statistically significant dif-ference (Fischer’s LSD test, p < 0.05, LSD between treatments is
3.12) on ethanol yield after 96 h using either free or immobilized
cells.
The immobilized cells were further recycled for three more
times limiting the duration of each fermentation cycle up to 96 h
as most of the sugars in mahula flowers were consumed during
this period. The cells not only survived but also active physiologi-cally in these three cycles of fermentation. The ethanol yields in the
2nd, 3rd and 4th cycle were 221, 218 and 216 g ethanol/kg flowers,
showing 0.99%, 2.3% and 3.2% decrease over the 1st cycle (223.2 g ethanol/kg flowers), respectively. The decrease might be due to
marginal leakage of cells from luffa matrix during each batch of
fermentation. Similar results were obtained on ethanol production
from cane molasses using alginate-luffa as the carrier matrix for
the immobilization of yeast cells [12] . In their study, the ethanol
production was same during the 1st and 2nd cycle of operation
(91.7 g/l cane molasses), with a marginal decrease (0.5%) in the
3rd cycle (90.6 g/l cane molasses).
The growth and fermentation kinetics of free and immobilized
cells were also studied (Table 1). The ethanol concentration ( P) ob-tained with luffa immobilized cells (37.2 g/l) was 9.2% more than
that of free cells (33.8 g/l). The volumetric substrate uptake (Qs)
was also found to be more in case of immobilized cells (0.850 g/
l/h) than that of free cells (0.831 g/l/h). Likewise, the ethanol yield
(0.455 g/g) and volumetric productivity (0.387 g/l/h) by immobi-lized cells were more than that of free cells (0.424 g/g and
0.352 g/l/h).
Ethanol production from mahula flowers with immobilized
cells in luffa sponge in our present investigation was found supe-rior over other immobilized matrices reported in our previous
studies. Swain et al. [2] reported that the average yield of ethanol
using immobilized (in Ca-alginate matrix) yeast cells were 206 and
152 g ethanol/kg flowers, from fresh and 12-month-stored mahula
flowers, respectively which was 6.3 and 2.63% more than free cells
[193 (fresh) and 148 (12-months stored) g ethanol/kg flowers].
Behera et al. [4] reported that ethanol production by yeast cells
immobilized in agar agar (151.2 g ethanol/kg flowers) and Ca-algi-nate (154.5 g ethanol/kg flowers) was found to be 1.39% and 3.5%
higher than the free cells (149.1 g ethanol/kg flowers) after 96 h
of fermentation. Furthermore, some limitations such as gel degra-dation, low physical strength and severe mass transfer limitation
were often observed in the use of Ca-alginate or agar agar-based
carriers [4,18,19].
On the other hand, luffa sponge was demonstrated as an excel-lent cell carrier for ethanol fermentation by flocculating cells ( S.
cerevisiae) and non-flocculating cells ( Candida brassicae ) [20] . Og-bonna et al. [20,21] further confirmed that luffa sponge alone can
be used to achieve 99% immobilization of flocculating yeasts ( S.
cerevisiae) cells for ethanol production in a column bioreactor. Fur-ther, its strength, abundance, low cost, biodegradability and natu-ral origin of luffa have become the main source of interest for cell
immobilization. In our present study, luffa immobilized yeast cells
resulted in 8.96% more ethanol production over free cells due to
high values of biomass aggregated to it, which signified that luffa
sponge was an excellent support for S. cerevisiae immobilization
for ethanol production from mahula flowers. Also the utility of luf-fa sponge as an immobilizing matrix has been studied for other fer-mentative products. Luffa sponge was used as the carrier for yeast cell immobilization for the production of ethanol from sugar beet
juice [20] and cane molasses [12] . Slokoska and Angelova [22]
reported that luffa sponge could be used as an ideal immobilization
material for pectinase production. Likewise, luffa sponge was used
as an efficient material for removal of heavy metal ions [23] .
The findings of this study have shown that luffa sponge, which
can easily be produced in most tropical and sub-tropical countries
can be used for cell immobilization. Since no pre-treatment is re-quired and cell immobilization is achieved by simply adding the
cell suspension to the reactor containing the sponge bed, the meth-od can be easily scaled up. Scaling up of this process is very simple,
since fixed beds in large-scale reactors can easily be constructed
with the luffa sponges. Mahula flowers are abundantly available
in the Asian Continent, particularly in the tribal belts of India and
Pakistan [3–5] . The tribal people of this Sub-Continent earn part
of their livelihood by collecting mahula flowers from the forests
and selling them in the local markets. Mahula flowers, as a renew-able plant source for production of bio-ethanol, are likely to fetch
more prices for the tribal people and can improve their overall eco-nomic status [24,25].

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เอทานอลผลิตจาก mahula ดอกไม้ใช้ฟรีและ immo bilized เซลล์ S. cerevisiae (ต้องใช้ CTCRI) เริ่มต้นในขั้นตอนการบันทึกของ
สำเร็จในระหว่างการผลิตเอทานอลเจริญเติบโตและสูงสุด
ระยะเครื่องเขียน (96 h) (Fig. 2) ในการศึกษาปัจจุบัน มี
ยังร่อแร่อยู่ 21% และ 11.5% ในความเข้มข้นของน้ำตาลรวมกว่า
เริ่มต้นเนื้อหาที่ มีการผลิตพร้อมกัน 31 และ 236 g eth-anol กิโลกรัมดอกไม้ 24 ชมหมักสำหรับฟรีและเซลล์ยีสต์ immo bilized ตามลำดับ ลดลงในน้ำตาล
อาจยังเนื่องจากการใช้ประโยชน์บางส่วน เริ่มต้นเจริญเติบโตและเมแทบอลิซึมของ S. cerevisiae นอกนั้นแปลงเป็น
เอทานอลได้ สำหรับ 48, 72 และ 96 h ของหมักดอง น้ำตาล concentra-tions ได้ 282 159 และดอกไม้ 120 g/kg มีพร้อมในรอยในความเข้มข้นของเอทานอลเพื่อ 130.5, 216 และ 223.2 g
เอทานอล/กิโลกรัมดอกไม้ ตามลำดับในกรณี
(Fig. 2B) เซลล์เอนไซม์ยีสต์ ในช่วงเวลาเดียวกัน น้ำตาลความเข้มข้น 279,
173.3 และดอกไม้ 131 g/kg กับมั่นใจเพิ่มขึ้นใน concen-tration ของเอทานอลเพื่อ 113.9, 193.08 และ 203.2 g เอทานอ ล/kg ดอกไม้,
ตามลำดับเมื่อเซลล์ฟรี (ทั้งหมด) ใช้สำหรับการหมัก
(Fig. 2A) ที่ h 96 ของหมักดอง มีน้ำตาล 84.8% และ 91.1%
แปลงในดอกไม้เอทานอล/กก.สูงสุด 203.2 และ 223.2 g ที่ใช้
ฟรี และเอนไซม์ยีสต์เซลล์ ตามลำดับ [45 กก.น้ำตาลความสับสนอลหม่านต่อได้ (เป็นน้ำตาลกลูโคส) ผลผลิต 20-30 กิโลกรัมของเอทานอล] [17] ดัง ผลผลิต etha nol ถูก 8.96% สูงผิวตามระบบเอนไซม์กว่า
ระบบเซลล์ว่าง เพิ่มเติม มี ference dif อย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (ทดสอบ LSD ของฟิสเชอร์ p < 0.05, LSD ระหว่างรักษาเป็น
3.12) ในเอทานอลอัตราผลตอบแทนหลังจาก 96 h ใช้ฟรี หรือเอนไซม์
เซลล์
เซลล์เอนไซม์มีการรีไซเคิลสำหรับอีกสาม
เวลาจำกัดระยะเวลาการหมักแต่ละรอบถึง 96 h
ส่วนใหญ่น้ำตาลในดอกไม้ mahula ถูกใช้ในระหว่าง
รอบระยะเวลานี้ เซลล์ไม่เพียงรอดชีวิตแต่ยังใช้งานอยู่ physiologi cally ในวงจรเหล่านี้ 3 การหมัก เอทานอลทำให้ในการ
รอบ 2, 3 และ 4 ได้ 221, 216 และ 218 g เอทานอ ล/kg ดอกไม้,
แสดง 0.99%, 2.3% และ 3.2% ลดผ่านรอบ 1 (223.2 g ดอกไม้เอทานอล/กิโลกรัม), ตามลำดับ ลดลงอาจเนื่อง
รั่วไหลกำไรของเซลล์จากผิวเมตริกซ์ระหว่างแต่ละชุดของ
หมัก ผลคล้ายได้รับในการผลิตเอทานอล
จากกากน้ำตาลเท้าใช้ผิวแอลจิเนตเป็นเมตริกซ์ของผู้ขนส่งสำหรับ
ตรึงโปยีสต์เซลล์ [12] ในการเรียน เอทานอล
ผลิตเดียวกันในระหว่างรอบ 1 และ 2 การ
(91.7 แยกเท้ากากน้ำตาล), มีกำไรลดลง (0.5%) การ
รอบ 3 (กากน้ำตาลเท้า 90.6 g/l) .
จลนพลศาสตร์เจริญเติบโตและการหมักเอนไซม์ และฟรี
เซลล์ก็ยังศึกษา (ตารางที่ 1) เอทานอลความเข้มข้น (P) ob tained ผิวตรึงเซลล์ (37.2 g/l) เป็น 9.2% มากกว่า
ที่เซลล์ว่าง (33.8 g/l) ดูดซับพื้นผิว volumetric (Qs)
ยังพบหาให้เพิ่มเติมในกรณีของเซลล์ (0.850 g /
l/h) กว่าที่เซลล์ว่าง (0831 g/l/h) ทำนองเดียวกัน ผลผลิตเอทานอล
(0.455 g/g) และผลผลิต volumetric (0.387 g/l/h) โดย immobi lized เซลล์ได้มากขึ้นกว่าที่เซลล์ว่าง (0.424 g/g และ
0.352 g/l/h).
Ethanol ผลิตจาก mahula ดอกไม้กับหา
เซลล์ในใยบวบในการตรวจสอบของเราปัจจุบันพบ supe rior ผ่านเมทริกซ์อื่น ๆ เอนไซม์ที่รายงานก่อนหน้านี้ของเรา
ศึกษา Swain et al [2] รายงานว่า ผลผลิตเฉลี่ยของเอทานอล
ใช้ตรึง (ในเมตริกซ์แอลจิเนต Ca) เซลล์ยีสต์ได้ 206 และ
152 g กิโลกรัมเอทานอลดอกไม้ จาก mahula สด และ 12 เดือนถูกจัดเก็บไว้
ดอกไม้ ตามลำดับซึ่งเป็น 6.3 และ 2.63% มากกว่าเซลล์ฟรี
[193 (สด) และดอกไม้เอทานอล/กิโลกรัมกรัม (12-เดือนเก็บ 148] .
Behera et al. [4] รายงานการผลิตเอทานอล โดยเซลล์ยีสต์
ตรึงใน agar agar (151.2 g เอทานอ ล/kg ดอกไม้) และ Ca-algi-เนตร (154.5 g กิโลกรัมเอทานอลดอกไม้) พบเป็น 1.39% และ 3.5%
higher กว่าเซลล์อิสระ (149.1 g เอทานอ ล/kg ดอกไม้) หลังจาก 96 h
ของหมักดอง นอกจากนี้ ข้อจำกัดบางประการเช่นเจ degra dation ความแข็งแรงทางกายภาพต่ำ และข้อจำกัดการโอนย้ายโดยรวมอย่างรุนแรง
มักสุภัคใช้แอลจิเนต Ca หรือ agar agar ใช้
สายการบิน [4,18,19] .
บนมืออื่น ๆ บวบถูกแสดงเป็นการยืม excel เซลล์ผู้ขนส่งสำหรับการหมักเอทานอล โดย flocculating เซลล์ (S.
cerevisiae) และเซลล์ที่ไม่ใช่ flocculating (Candida brassicae) [20] ออก bonna et al. [20,21] ได้ยืนยันว่า บวบคนเดียวสามารถเพิ่มเติม
ใช้เพื่อตรึงโป 99% flocculating yeasts (S.
เซลล์ cerevisiae) สำหรับการผลิตเอทานอลใน bioreactor คอลัมน์ ขนเธอ ของแรง อุดมสมบูรณ์ ต้นทุนต่ำ biodegradability กำเนิด ral สถานที่สวยงามของผิวได้กลายเป็น แหล่งหลักที่น่าสนใจสำหรับเซลล์
ตรึงโป ในการศึกษาปัจจุบันของเรา ผิวตรึงเซลล์ยีสต์
ผลผลิตเอทานอล 8.96% ผ่านเซลล์ฟรีเนื่อง
ค่าสูงของชีวมวลรวมถึง ซึ่ง signified ที่ผิว
ฟองน้ำมีการสนับสนุนที่ดีเยี่ยมสำหรับตรึงโป S. cerevisiae
สำหรับผลิตเอทานอลจากดอกไม้ mahula ยัง อรรถประโยชน์ของฟองน้ำ luf-ฟ้าเป็นเมทริกซ์การ immobilizing มีการศึกษาสำหรับผลิตภัณฑ์อื่น ๆ fer mentative บวบใช้เป็นบริษัทขนส่งสำหรับตรึงโปเซลล์ยีสต์ในการผลิตเอทานอลจากนทาน
น้ำ [20] และไม้กากน้ำตาล [12] Slokoska และ Angelova [22]
รายงานว่า สามารถใช้ใยบวบเป็นการตรึงโปเหมาะ
วัสดุสำหรับผลิต pectinase ทำนองเดียวกัน ใช้ใยบวบ
เป็นวัสดุมีประสิทธิภาพในการกำจัดโลหะหนักกัน [23] .
ที่พบของการศึกษานี้ได้แสดงให้เห็นว่าผิวฟองน้ำ ซึ่ง
ก็สามารถผลิตในประเทศเขตร้อน และเขตร้อนย่อยส่วนใหญ่
สามารถใช้เซลล์ตรึงโป ตั้งแต่รักษาล่วงหน้าไม่ได้เรื่อง quired และเซลล์ตรึงโปสามารถทำได้ โดยเพียงแต่เพิ่มการ
ระงับเซลล์กับเครื่องปฏิกรณ์ที่ประกอบด้วยนอนฟองน้ำ od นอกจากสามารถได้อย่างง่ายดายปรับค่าได้ ปรับค่าของกระบวนการนี้จะง่ายมาก,
ตั้งแต่เตียงถาวรในเตาปฏิกรณ์ขนาดใหญ่สามารถได้อย่างง่ายดายสร้าง
กับฟองน้ำใยบวบ ดอกไม้ Mahula มีอุดมสมบูรณ์
ในทวีปเอเชีย โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสายพายสำหรับชาวอินเดีย และ
ปากีสถาน [3-5] ชาวของทวีปนี้ย่อยได้รับส่วน
มาหาเลี้ยงชีพของพวกเขาโดยการรวบรวม mahula ดอกไม้จากป่า
และขายพวกเขาในตลาดท้องถิ่น Mahula ดอกไม้ เป็นแหล่งพืชสามารถ renew สำหรับผลิตไบโอเอทานอล มีแนวโน้มที่จะนำมาใช้
ราคาเพิ่มเติมสำหรับชาวและสามารถปรับปรุงสถานะโดยรวมโค nomic [24,25]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การผลิตเอทานอลจาก mahula ดอกไม้ใช้ฟรี และ bilized IMMO เซลล์ของ S . cerevisiae ( ctcri ความเครียดเริ่มบันทึกในขั้นตอนของการเจริญเติบโตและการผลิตเอทานอลสูงสุด

ทำในช่วง stationary phase ( 96 ชั่วโมง ) ( รูปที่ 2 ) ในการศึกษาครั้งนี้มี
ตกขอบ 21 % และ 11.5% ในน้ำตาลรวมเริ่มต้นการผลิตเนื้อหาที่มีความเข้มข้นมากกว่า
31 และ 23 พร้อมกัน6 g / kg ETH anol ดอกไม้ถึง 24 ชั่วโมงของการหมักสำหรับฟรีและ IMMO bilized ยีสต์เซลล์ ตามลำดับ ปริมาณสำรองน้ำตาลอาจจะยัง
เนื่องจากการใช้ของในส่วน เพื่อเริ่มต้นการเจริญเติบโตและการเผาผลาญของ S . cerevisiae นอกเหนือไปจากการแปลงเป็น
เอทานอล 48 , 72 และ 96 ชั่วโมงการหมักน้ำตาลครุ่นคิด tions จำนวน 282 ,และ 120 กรัม / กิโลกรัม ดอกไม้กับพร้อมกันในรอยพับในเอทานอลความเข้มข้นเหลือ 130.5 216 223.2 g
เอทานอลและดอกไม้ / kg ตามลำดับในกรณีของยีสต์ตรึงเซลล์
( รูปที่ 2B ) ในช่วงเวลาเดียวกัน น้ำตาลความเข้มข้น 279 ,
173.3 131 กรัม / กิโลกรัม และดอกไม้ที่มีผู้ป่วยเพิ่มขึ้นใน concen มลภาวะของเอทานอลและโต 193.08 , 203.2 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้
ฟรี ( ทั้งหมด ) ตามลำดับ เมื่อเซลล์ถูกใช้เพื่อหมัก
( รูปที่ 2A ) 96 ชั่วโมงของการหมัก มีเพียง 1% และ ชายน้ำตาลร้อยละ
แปลงเป็นผลใน 203.2 223.2 กรัม / กิโลกรัม และเอทานอลโดยใช้
ดอกไม้ฟรีและการตรึงเซลล์ยีสต์ ตามลำดับ [ 45 กิโลกรัม สามารถหมักน้ำตาล ( กลูโคส ) ผลผลิต 20 – 30 กก. ของเอทานอล ] [ 17 ] ดังนั้น etha นอลผลผลิตคือ 8.96 % สูงในใยบวบจากระบบกว่า
ตรึงระบบมือถือฟรี เพิ่มเติมอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติดิฟฟีเรนซี ( ทดสอบ LSD ฟิชเชอร์ p < 0.05 , LSD ระหว่างการรักษาคือ
3.12 ) ต่อผลผลิตเอทานอลหลัง 96 H ใช้ฟรีหรือเซลล์ตรึง
.
การตรึงเซลล์ได้กลับมาอีก 3
ครั้งจำกัดระยะเวลาของแต่ละรอบหมักถึง 96 H
เป็นที่สุด ของน้ำตาลใน mahula ดอกไม้บริโภคในระหว่าง
ช่วงเวลานี้ เซลล์ที่ไม่เพียง แต่รอดมาได้ แต่ยังใช้งาน physiologi คอลลี่ในรอบสามของการหมัก ผลผลิตเอทานอลใน
2 , 3 และ 4 มีวงจร 221 , 218 และ 216 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้
แสดง 0.99 % , 2.3 % และ 3.2% ลดลงมากกว่า 1 รอบ ( 223.2 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้ ) ตามลำดับ ลดลง อาจเนื่องจาก
รั่วขอบของเซลล์จากใยเมทริกซ์ระหว่างแต่ละชุดของ
หมัก ผลที่คล้ายกันได้รับบน
การผลิตเอทานอลจากกากน้ำตาลอ้อยโดยอัลใยบวบเป็นเมทริกซ์ผู้ให้บริการสำหรับการตรึงเซลล์ยีสต์
[ 12 ] ในการศึกษาของพวกเขา การผลิตเอทานอล
เดียวกันในระหว่างวันที่ 1 และ 2 รอบการทำงานของ
( 91.7 กรัม / ลิตร กากน้ำตาล ) , กับการลดลงเล็กน้อย ( 0.5% ) ใน
3 รอบ ( 90.6 กรัม / ลิตร กากน้ำตาล ) .
การเจริญเติบโตและจลนพลศาสตร์ของการหมักฟรีเซลล์ตรึงและ
ปรีดี ( ตารางที่ 1 ) เอทานอลความเข้มข้น ( P ) tained OB ด้วยใยบวบการตรึงเซลล์ ( 37.2 กรัม / ลิตรเป็น 9.2% มากกว่า
ที่เซลล์ฟรี ( 33.8 กรัม / ลิตร ) การดูดซึมสารอาหารโดยปริมาตร ( QS )
ยังพบว่าเป็นมากขึ้นในกรณีของการตรึงเซลล์ ( 0.850 g /
L / H ) กว่าที่เซลล์ฟรี ( 0กับ G / L / H ) อนึ่ง ผลผลิตเอทานอล
( ติด g / g ) และประสิทธิภาพเชิงปริมาตร ( 0.387 g / L / H ) โดย immobi lized เซลล์มีมากกว่าเซลล์ฟรี ( 0.424 g / g และ
0.352 g / L / H )
การผลิตเอทานอลจาก mahula ดอกไม้กับตรึงเซลล์ในใยบวบฟองน้ำ
ของเรา การศึกษาปัจจุบันพบ Supe rior มากกว่าอื่น ๆรายงานในการศึกษาก่อนหน้าตรึงเมทริกซ์

สเวน et al .[ 2 ] รายงานว่า ผลผลิตเฉลี่ยของเอทานอล
ใช้ตรึง ( CA แอลเมทริกซ์ ) เซลล์ยีสต์อยู่แล้ว
152 กรัมเอทานอล / กก ดอกไม้ จาก สด และ 12 เดือน เก็บไว้ mahula
ดอกไม้ตามลำดับซึ่งเป็น 6.3 2.63 % และมากกว่าเซลล์ฟรี
[ 193 ( สด ) และ 148 ( 12 เดือน เก็บไว้ ) กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้ ] .
behera et al . [ 4 ] รายงานว่า การผลิตเอทานอลโดยยีสต์เซลล์
ตรึงในวุ้น ( 151.2 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้ ) และ Ca algi เนท ( 154.5 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้ ) พบว่าเป็น 1.39% และ 3.5 %
สูงกว่าเซลล์ฟรี ( 149.1 กรัมเอทานอล / กก. ดอกไม้ ) หลังจาก 96 H
ของการหมัก นอกจากนี้ บางข้อ เช่น degra SIRS เจลต่ำทางกายภาพ ความแข็งแรงและรุนแรง การถ่ายโอนมวลขีดจำกัด
มักจะพบในการใช้อัลจิเนต หรือวุ้นวุ้น
จากประเทศสหรัฐอเมริกาพาหะ [ 4,18,19 ] .
บนมืออื่น ๆ , ใยบวบฟองน้ำได้แสดงเป็น Excel ยืมเซลล์พาหะสำหรับการหมักเอทานอลโดย flocculating เซลล์ ( S .
S . cerevisiae ) และไม่ flocculating เซลล์ ( รักษาคน ) [ 20 ] โอกบุนนา et al . [ 20,21 ] เพิ่มเติมยืนยันว่า ใยบวบ ฟองน้ำคนเดียว
จะใช้เพื่อให้บรรลุ 99% การตรึง flocculating ยีสต์ S .
S . cerevisiae ) เซลล์เพื่อการผลิตเอทานอลในคอลัมน์แบบ . ขนมีความอุดมสมบูรณ์ของความแข็งแรง ค่าใช้จ่ายต่ำ และย่อยสลายทางชีวภาพ Natu RAL ที่มาของใยบวบได้กลายเป็นแหล่งหลักของดอกเบี้ยสำหรับการตรึงเซลล์
. ในการศึกษาของเรา ใยบวบ การตรึงเซลล์ยีสต์
( 8.96 % การผลิตเอทานอลมากกว่าเซลล์ฟรีเนื่องจาก
ค่าสูงมวลชีวภาพของรวมกับมันซึ่งมีความหมายว่า ใยบวบ ฟองน้ำมีการสนับสนุนที่ดีเยี่ยมสำหรับ

S . cerevisiae การตรึงสำหรับการผลิตเอทานอลจาก mahula ดอกไม้ นอกจากนี้ประโยชน์ของลุฟฟาฟองน้ำเป็นเมทริกซ์ที่ตรึงได้ศึกษาสำหรับผลิตภัณฑ์อื่น ๆ mentative Fer . ใยบวบ ฟองน้ำที่ใช้เป็นพาหะสำหรับการตรึงเซลล์ยีสต์สำหรับการผลิตเอทานอลจากน้ำตาล
[ 20 ] และน้ำผลไม้อ้อยกากน้ำตาล [ 12 ]และ slokoska angelova [ 22 ]
รายงานว่า ใยบวบ ฟองน้ำ สามารถใช้เป็นวัสดุยึดตรึง
เหมาะสำหรับการผลิตเอนไซม์เพคติเนส . อนึ่ง ใยบวบ ฟองน้ำที่ใช้
เป็นวัสดุที่มีประสิทธิภาพสำหรับการกำจัดอิออนโลหะหนัก [ 23 ] .
จากการศึกษานี้แสดงว่า ใยบวบ ฟองน้ำ ซึ่ง
ได้อย่างง่ายดายสามารถผลิตในประเทศในเขตร้อนและเขตร้อนส่วนใหญ่ย่อย
สามารถใช้เซลล์ตรึงรูป .เนื่องจากไม่มีผลเป็น quired และเซลล์ตรึงรูปได้โดยเพียงแค่การเพิ่ม
เซลล์แขวนลอยไปยังเครื่องปฏิกรณ์ที่มีฟองน้ำ ที่นอน , meth OD สามารถปรับขนาดขึ้นได้ ปรับขึ้นของกระบวนการนี้ง่ายมาก
ตั้งแต่ซ่อมเตียงในเครื่องปฏิกรณ์ขนาดใหญ่ได้อย่างง่ายดายสามารถสร้าง
ด้วยใยบวบฟองน้ำ . ดอกไม้ mahula เป็นพรืดของ
ในทวีปเอเชียโดยเฉพาะอย่างยิ่งในสายพานชนเผ่าในอินเดีย และปากีสถาน – [ 3
5 ] คนเผ่านี้ย่อยทวีปได้รับส่วนหนึ่งของวิถีชีวิตของพวกเขา โดยการรวบรวม mahula

ดอกไม้จากป่าและขายในตลาดท้องถิ่น ดอกไม้ mahula เป็นแหล่งพืชสามารถต่ออายุสำหรับการผลิตไบโอเอทานอลมีแนวโน้มที่จะดึง
เพิ่มเติมราคา สำหรับชาวเขา และสามารถปรับปรุงสถานะของพวกเขาโดยรวม โค nomic [ 24,25 ]