2.4.2. Biofilm characterizationAfte

2.4.2. Biofilm characterization
After completion of the biofouling experiments, the bacteria adhered to themembrane surfacewere characterized by confocal laser scanning microscopy (CLSM; FLUOVIEW FV1000, Olympus Corporation, Tokyo, Japan) and image analysis [11]. The membranes were detached from the cell and rinsed thoroughly with aqueous 0.85 wt.% NaCl solution. The adhered bacteria on the membrane surface were then stained using the LIVE/DEAD BacLight Bacterial Viability kit in 0.85 wt.% NaCl solution. The membranes were rinsed again with 0.85 wt.% NaCl solution and immersed in aqueous 2.5 vol.% glutaraldehyde solution for 1 h at 4 °C to fix the adhered bacteria. The membrane surface was observed using CLSM, and the CLSM images were analyzed using the COMSTAT software [23] to calculate the volumeper unit area (μm3/μm2) of the adhered bacteria on the membrane surface.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.4.2. Biofilm คุณลักษณะหลังจากเสร็จสิ้นการทดลอง biofouling แบคทีเรียปฏิบัติโดยโฟคอเลเซอร์สแกนไมโครสโค (CLSM; surfacewere themembrane FLUOVIEW FV1000, Olympus Corporation โตเกียว ญี่ปุ่น) และภาพวิเคราะห์ [11] เยื่อแยกออกมาจากเซลล์ และล้าง ด้วยสารละลาย wt.% 0.85 NaCl โซลูชันอย่างละเอียด เครดิตและแบคทีเรียบนผิวเมมเบรนแล้วภาพใช้ชุดชีวิตแบคทีเรีย BacLight สด/ตายใน wt.% 0.85 NaCl โซลูชัน ล้างอีกครั้ง ด้วย wt.% 0.85 NaCl โซลูชัน และแช่ในสารละลาย 2.5 vol.% glutaraldehyde โซลูชันสำหรับ 1 ชั่วโมงที่ 4 ° C การแก้ไขเครดิตแบคทีเรียเยื่อ พื้นผิวเมมเบรนถูกตรวจสอบโดยใช้ CLSM และ CLSM ภาพถูกวิเคราะห์โดยใช้ซอฟต์แวร์ COMSTAT [23] คำนวณพื้นที่หน่วย volumeper (μm3 μm2) ของแบคทีเรียบนพื้นผิวเมมเบรนเครดิต

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.4.2 ไบโอฟิล์มลักษณะ
หลังจากเสร็จสิ้นการทดลอง biofouling แบคทีเรียปฏิบัติตาม themembrane surfacewere โดดเด่นด้วยคอนโฟคอลเลเซอร์สแกนกล้องจุลทรรศน์ (CLSM; FLUOVIEW FV1000 โอลิมปัคอร์ปอเรชั่นกรุงโตเกียวประเทศญี่ปุ่น) และการวิเคราะห์ภาพ [11] เยื่อถูกถอดออกจากเซลล์และล้างให้สะอาดด้วยน้ำ 0.85 WT.% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์ แบคทีเรียที่ยึดติดบนพื้นผิวเมมเบรนมีการย้อมแล้วใช้ที่ถ่ายทอดสด / DEAD ชุด BacLight แบคทีเรียมีชีวิตใน WT 0.85.% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์ เยื่อถูกล้างอีกครั้งกับ 0.85 WT.% วิธีการแก้ปัญหาโซเดียมคลอไรด์และแช่ในสารละลาย glutaraldehyde 2.5 Vol.% เป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่ 4 ° C ในการแก้ไขปัญหาการปฏิบัติตามแบคทีเรีย พื้นผิวเมมเบรนได้รับการสังเกตโดยใช้ CLSM และภาพ CLSM ถูกนำมาวิเคราะห์โดยใช้ซอฟต์แวร์ Comstat [23] ในการคำนวณหน่วยพื้นที่ volumeper (μm3 / μm2) ของเชื้อแบคทีเรียที่ยึดติดบนพื้นผิวเมมเบรน

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.4.2 . ฟิล์มคุณลักษณะหลังจากเสร็จสิ้นการทดลองของ biofouling แบคทีเรียตาม themembrane surfacewere ลักษณะด้วยเลเซอร์สแกนกล้องจุลทรรศน์ ( clsm ; fluoview fv1000 , Olympus Corporation , โตเกียว , ญี่ปุ่น ) และการวิเคราะห์ภาพ [ 11 ] เยื่อถูกแยกออกจากเซลล์และล้างให้สะอาดด้วยน้ำเกลือโซเดียมคลอไรด์ร้อยละ 0.85 โดยโซลูชั่น การยึดติดของแบคทีเรียบนพื้นผิวเมมเบรนแล้วเปื้อนใช้อยู่ / ตาย baclight แบคทีเรีย 3 ชุดใน 0.85% โซเดียมคลอไรด์โดยโซลูชั่น เยื่อถูกล้างอีกครั้งด้วย 0.85 % โดยน้ำหนัก และแช่ในสารละลาย NaCl สารละลาย 2.5 % glutaraldehyde โซลูชั่น Vol . 1 H 4 ° C ซ่อมยึดติดแบคทีเรีย พื้นผิวเมมเบรนพบว่าใช้ clsm และ clsm ภาพโดยใช้ซอฟต์แวร์ comstat [ 23 ] เพื่อคำนวณพื้นที่หน่วย volumeper ( μ m3 / μ M2 ) ของแบคทีเรียบนพื้นผิวยึดติดเยื่อแผ่น