electroporation. Other available me

electroporation. Other available methodologies for introducing key
nutrients into fish eggs may include microinjection and ultrasound
cavitation (sonophoresis). The later, similarly to electroporation, is a
high throughput approach although lower survival (around 60%) was
reported implementing this approach on sea bream fertilized eggs
(Engrola et al., 2014).
The selected protocol using the present technique was established
by taking into account both hatchability and the extent of fluorescein
dye incorporation into the egg. The use of fluorescein as an indicator
for electroporation success was also described by Jung et al. (2013),
who showed that the egg inner membrane and not the chorion of the
eggs of medaka fish (Oryzias latipes) presents the main barrier against
the diffusion of small molecules. Our findings also suggest a similar phenomenon
is at play in the gilthead sea bream eggs. This is because the
incorporation of fluorescein occurred only when the inner membrane
phospholipid integrity was successfully disrupted by the electroporation
pulses. Both Heller et al. (1996) and Mir et al. (1999) emphasized
that the electrical pulse intensity and duration have a direct effect on
the level of permeability of the phospholipid membrane and also on
cell mortality during the process. The pulse intensity and duration in
the chosen electroporation protocol were sufficient to induce the
permeability of the fertilized eggs inner membrane to a small molecule
such as fluorescein (332 Da), while retaining high hatching rates.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

electroporation วิธีการอื่น ๆ ที่ใช้ได้สำหรับการแนะนำที่สำคัญ
สารอาหารเข้าไปในไข่ปลาอาจรวมถึง microinjection และอัลตราซาวนด์
cavitation (sonophoresis) ต่อมาในทำนองเดียวกันกับ electroporation เป็น
วิธีการส่งผ่านสูงแม้จะมีชีวิตอยู่รอดต่ำ (ประมาณ 60%) ได้รับ
รายงานการใช้วิธีการนี้ในทะเลทรายแดงไข่
(Engrola et al., 2014).
โปรโตคอลเลือกใช้เทคนิคปัจจุบันก่อตั้งขึ้น
โดยการ เข้าบัญชีทั้งฟักและขอบเขตของ fluorescein
การรวมสีย้อมเข้าไปในไข่ การใช้ fluorescein เป็นตัวบ่งชี้
สำหรับความสำเร็จ electroporation ยังถูกอธิบายโดย Jung et al, (2013)
ที่แสดงให้เห็นว่าเยื่อหุ้มชั้นไข่และไม่ Chorion ของ
ไข่ของปลา Medaka (latipes Oryzias) ของขวัญอุปสรรคหลักกับ
การแพร่กระจายของโมเลกุลขนาดเล็ก ค้นพบของเรายังแนะนำให้เป็นปรากฏการณ์ที่คล้ายกัน
ที่เล่นในไข่ทรายแดง gilthead ทะเล เพราะนี่คือ
การรวมตัวกันของ fluorescein เกิดขึ้นเฉพาะเมื่อเยื่อหุ้มชั้น
สมบูรณ์เรียมถูกรบกวนประสบความสำเร็จโดย electroporation
พัลส์ ทั้งเฮลเลอร์, et al (1996) และเมียร์, et al (1999) เน้น
ที่ความเข้มของการเต้นของชีพจรไฟฟ้าและระยะเวลามีผลกระทบโดยตรงต่อ
ระดับของการซึมผ่านของเยื่อเรียมและยังเกี่ยวกับ
การตายของเซลล์ในระหว่างกระบวนการ ความเข้มของการเต้นของชีพจรและระยะเวลาใน
โปรโตคอล electroporation ได้รับการแต่งตั้งเป็นเพียงพอที่จะทำให้เกิด
การซึมผ่านของเยื่อหุ้มชั้นไข่ให้เป็นโมเลกุลขนาดเล็ก
เช่น fluorescein (332 ดา) ขณะที่การรักษาอัตราการฟักสูง

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

electroporation . วิธีการอื่น ๆสำหรับการใช้คีย์สารอาหารในไข่ปลาอาจรวมถึงไมโครอินเจคชันและอัลตราซาวด์โพรง ( sonophoresis ) ต่อมา ในทํานองเดียวกันกับ electroporation คือวิธีแม้ว่าการอยู่รอดสูง throughput ลดลง ( ประมาณ 60% )รายงานการใช้วิธีการนี้ในปลาไข่ที่ได้รับการผสม( engrola et al . , 2010 )เลือกโปรโตคอลที่ใช้เทคนิคปัจจุบันก่อตั้งขึ้นโดยพิจารณาทั้งจากและขอบเขตของการี่ย้อมเข้าไปในไข่ ี่ใช้เป็น ตัวชี้วัดสำหรับความสำเร็จก็อธิบายโดย electroporation จอง et al . ( 2013 )ที่พบว่า ไข่ชั้นในและไม่ชอเรียนของไข่ของเมดากะปลา ( กรมอุทกศาสตร์ latipes ) นำเสนออุปสรรคหลักต่อการแพร่ของโมเลกุลขนาดเล็ก การค้นพบของเรายังชี้ให้เห็นปรากฏการณ์คล้ายคลึงกันจะเล่นใน gilthead ปลาไข่ นี้เป็นเพราะการเกิดเยื่อหุ้มชั้นในี่เมื่อความสมบูรณ์ของฟอสโฟลิปิดได้หยุดชะงักโดย electroporationพัลส์ . ทั้ง เฮลเลอร์ et al . ( 2539 ) และเมียร์ et al . ( 1999 ) ที่เน้นที่ไฟฟ้าพัลส์ความเข้มและระยะเวลาที่มีผลโดยตรงต่อระดับความซึมได้ของเยื่อฟอสโฟลิปิด และยัง บนการตายของเซลล์ในกระบวนการ ชีพจรความรุนแรงและระยะเวลาในเลือกเป็นเพียงพอที่จะทำให้ electroporation พิธีสารการซึมผ่านของไข่ที่เยื่อหุ้มชั้นในจะเป็นโมเลกุลขนาดเล็กเช่นี่ ( 332 ดา ) , ขณะที่การรักษาสูง อัตราการฟัก .