mitochondrial-specific acceleration

mitochondrial-specific accelerations in synonymous substitution
rates (Fig. 2a). Although heterogeneity in mitochondrial substitution
rates is by no means unique to plants (Nabholz et al., 2009),
the magnitude of the variation in angiosperms, especially at local
phylogenetic scales, is unprecedented. Groups such as Silene offer
unparalleled opportunities to compare closely related species in
which the relative rates of mitochondrial vs nuclear sequence
evolution have been completely inverted (Fig. 2a). The patterns of
substitution rate variation in plant organelle DNA are made even
more complex (and interesting) by a number of still unexplained
cases in which accelerations have been observed in just a small
number of genes, while the rest of the genome remains seemingly
unaffected (Sloan et al., 2009; Magee et al., 2010; Zhu et al., 2014).
Variation in mitochondrial gene content
Mitochondrial gene content in plants is also highly variable. In
contrast to animals, in which there is an almost universally
conserved set of 13 protein-coding genes, angiosperms contain
anywhere from 24 to 41 protein coding genes (Fig. 3). The
functional transfer of organelle genes to the nucleus remains an
active process in many angiosperm lineages, resulting in an evershifting
landscape of cytonuclear protein–protein interactions
(Adams et al., 2002). Mitochondrial gene loss has even been
‘caught in the act’ in some species, creating unique opportunities to
study the process of intracellular transfer. For example, in some
legumes, copies of the cox2 gene are present and transcribed in both
the nuclear and mitochondrial genomes (Adams et al., 1999). In
addition, analysis of mitochondrial genomes from multiple
populations of Silene vulgaris has revealed intraspecific polymorphism
for mitochondrial gene content. Mitochondrial copies of the
ribosomal protein genes rpl5 and rps13 are still present and intact in
some individuals in this species but absent or pseudogenized in
others (Sloan et al., 2012b). In the case of rps13, this polymorphism
appears to be associated with recent gene transfer to the nucleus.
The process of gene transfer creates the potential for an extreme
form of cytonuclear incompatibility in which mismatches between
nuclear and mitochondrial backgrounds in F2 hybrids could result
in the complete absence of a functional gene.
Mitochondrial tRNA gene content is also highly dynamic in
angiosperms. The tRNA population in plant mitochondria is
derived from a mix of nativemitochondrial genes, plastid genes that
have been acquired by the mitochondrial genome via IGT, and
nuclear genes whose products must be imported from the cytosol.
The mix of tRNA genes has been subject to frequent modification
during the evolution of angiosperms. Once again, the most
dramatic changes have been documented within the genus Silene.
As a group, Silene species have experienced extensive loss of tRNA
genes from the mitochondrial genome, and the losses are most
striking in species with highly elevated mitochondrial substitution
rates, with some species retaining as few as just two or three intact
tRNA genes in their mitochondrial genomes (Sloan et al., 2012a).
It is likely but not yet confirmed that lost mitochondrial tRNA
genes have been replaced by importing cytosolic tRNAs. It is also
yet to be determined whether the loss of mitochondrial tRNA genes
has been associated with correlated changes in or losses of nuclearencoded
tRNA synthetase genes.
Variation in mitochondrial genome size and structure
Plant mitochondrial genomes also vary tremendously in size and
structure. Sequenced angiosperm mitochondrial genomes span a
50-fold range in size from 220 kb to 11.3 Mb. Remarkably, almost
this entire range is captured within the genus Silene (Sloan et al.,
2012a), which includes the largest organelle genome yet identified
in any eukaryote (S. conica). The massive variation in mitochondrial
genome size among angiosperms appears to reflect changes in
the amount of noncoding content, as genome size is not correlated
with the number of annotated genes (Fig. 3). It has long been
known that plant mitochondrial genomes are structurally fluid and
capable of interconverting between alternative forms via intra- and
inter-molecular recombination, involving repeated sequences
throughout the genome. Structural rearrangements within plant
mtDNA can generate chimeric ORFs, which are often associated
with cytoplasmic male sterility and cytonuclear interactions with
nuclear-encoded restorers of male fertility (Schnable & Wise,
1998). In recent years, it has become clear that some angiosperm
mitochondria also contain multiple autonomous chromosomes

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

เร่ง mitochondrial เฉพาะในพ้องแทนราคาพิเศษ (Fig. 2a) แม้ว่า heterogeneity ใน mitochondrial แทนราคาถูกโดยไม่เฉพาะพืช (Nabholz et al., 2009),ขนาดของความผันแปรใน angiosperms โดยเฉพาะอย่างยิ่งในท้องถิ่นphylogenetic ปรับขนาด ไม่เคยเกิดขึ้น กลุ่มเช่น Sileneการเปรียบเทียบพันธุ์ที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดในโอกาสซึ่งราคาสัมพัทธ์ของ mitochondrial vs นิวเคลียร์ลำดับวิวัฒนาการได้กลับทั้งหมด (Fig. 2a) รูปแบบของเปลี่ยนแปลงอัตราทดแทนในโรงงานดีเอ็นเอของออร์แกเนลล์จะได้ซับซ้อน (และน่าสนใจ) โดยยังไม่คาดหมายกรณีที่เร่งได้ถูกตรวจสอบในห้องขนาดเล็กจำนวนยีน ในขณะที่ส่วนเหลือของกลุ่มยังคงดูเหมือนว่าผลกระทบ (สโลน et al., 2009 Magee et al., 2010 ซู et al., 2014)เปลี่ยนแปลงในยีน mitochondrial เนื้อหายังผันแปรสูงยีน mitochondrial เนื้อหาในพืชได้ ในความแตกต่างกับสัตว์ ซึ่งมีการแพร่หลายเกือบนำชุด 13 รหัสโปรตีนยีน angiosperms ประกอบด้วยใดก็ได้ตั้งแต่ 24 ถึงโปรตีน 41 รหัสยีน (Fig. 3) ที่โอนย้ายงานของออร์แกเนลล์จะยังคงนิวเคลียสมีกระบวนการทำงานอยู่ในเชื้อชาติ angiosperm มาก ในการ evershiftingภูมิทัศน์ของการโต้ตอบ cytonuclear โปรตีน – โปรตีน(Adams และ al., 2002) แม้ได้รับยีน mitochondrial ขาดทุน'ติดในบัญญัติ' บางชนิด สร้างโอกาสเฉพาะศึกษากระบวนการถ่ายโอน intracellular ในบางตัวอย่างกิน สำเนาของยีน cox2 เป็นปัจจุบัน และทับทั้งการนิวเคลียร์ และ mitochondrial genomes (Adams et al., 1999) ในนอกจากนี้ วิเคราะห์ genomes mitochondrial จากหลายประชากรของ Silene vulgaris ได้เปิดเผย intraspecific โพลีมอร์ฟิซึมสำหรับยีน mitochondrial เนื้อหา Mitochondrial สำเนาrpl5 ยีนโปรตีน ribosomal และ rps13 จะยังคงอยู่ และเหมือนเดิมในบางบุคคลในสปีชีส์แต่ขาดหรือ pseudogenized ในอื่น ๆ (สโลน et al., 2012b) ในกรณีของ rps13 โพลิมอร์ฟิซึมนี้แล้วจะเกี่ยวข้องกับล่าสุดส่งยีนในนิวเคลียสกระบวนการถ่ายโอนยีนสร้างโอกาสที่มีมากรูปแบบของความไม่เข้ากันของ cytonuclear ใน mismatches ใดระหว่างอาจทำให้พื้นหลังของ mitochondrial และนิวเคลียร์ในลูกผสม F2ในการขาดงานที่สมบูรณ์ของยีนที่ทำงานMitochondrial tRNA ยีนเนื้อหาเป็นแบบไดนามิกสูงในangiosperms ประชากร tRNA ใน mitochondria พืชเป็นมาผสม nativemitochondrial ยีน ยีนพลาสติดที่มาตามจีโนม mitochondrial ผ่าน IGT และยีนนิวเคลียร์ผลิตภัณฑ์ต้องนำเข้าจากไซโตซอลผสมของ tRNA แล้วอาจ มีการปรับเปลี่ยนบ่อยในระหว่างการวิวัฒนาการของ angiosperms อีกครั้ง สุดเปลี่ยนแปลงอย่างมีการจัดทำเอกสารภายในพืชสกุล Sileneเป็นกลุ่ม Silene พันธุ์มีประสบการณ์ขาดทุนอย่างละเอียดของ tRNAยีนจีโนม mitochondrial และการสูญเสียเป็นส่วนใหญ่โดดเด่นในสปีชีส์กับแทน mitochondrial ยกสูงราคาพิเศษ มีบางชนิดรักษาน้อยเป็นเพียงสองหรือสามเหมือนเดิมยีน tRNA ใน genomes ของ mitochondrial (สโลน et al., 2012a)มันจะมีแนวโน้ม แต่ไม่ ยังยืนยันที่แพ้ mitochondrial tRNAยีนได้ถูกแทนที่ ด้วยการนำเข้า cytosolic tRNAs ก็ยังยังสามารถกำหนดว่าการสูญเสียของ mitochondrial tRNAมีการเชื่อมโยงกับการเปลี่ยนแปลงใน correlated หรือขาดทุนของ nuclearencodedtRNA synthetase ยีนความผันแปรในจีโนม mitochondrial ขนาดและโครงสร้างGenomes mitochondrial พืชแตกต่างกันอย่างในขนาด และโครงสร้างการ ระยะ mitochondrial genomes angiosperm ตามลำดับ50-fold ช่วงขนาด 220 kb ไป 11.3 Mb. ทแบบ เกือบช่วงนี้ทั้งหมดถูกจับภายในพืชสกุล Silene (สโลน et al.,2012a), ซึ่งมีจีโนมออร์แกเนลล์ที่ใหญ่ที่สุด ยังระบุในใด ๆ ยูแคริโอต (S. conica) เปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ใน mitochondrialขนาดกลุ่ม angiosperms ระหว่างปรากฏการเปลี่ยน แปลงในจำนวน noncoding เนื้อหา ขนาดจีโนมจะไม่ correlatedมีจำนวนยีนประกอบ (Fig. 3) มันมีมานานรู้จักที่ mitochondrial genomes ของพืชเป็นของเหลว structurally และความสามารถในการ interconverting ระหว่างฟอร์มอื่นผ่านอินทรา - และrecombination ระหว่างโมเลกุล เกี่ยวข้องกับลำดับซ้ำตลอดทั้งกลุ่ม Rearrangements โครงสร้างภายในโรงงานmtDNA สามารถสร้าง ORFs chimeric ซึ่งมักเกี่ยวข้องมี cytoplasmic ชาย sterility และ cytonuclear โต้ตอบกับนิวเคลียร์เข้า restorers ของความอุดมสมบูรณ์เพศ (Schnable & Wise1998) ในปีที่ผ่านมา มันได้กลายเป็นชัดว่า angiosperm บางmitochondria ประกอบด้วย chromosomes หลายเขตปกครองตนเอง

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ความเร่งยลเฉพาะแทนความหมายเหมือนกัน
อัตรา (รูป. 2a) แม้ว่าความแตกต่างในการทดแทนยล
อัตราโดยไม่มีหมายถึงไม่ซ้ำกันกับพืช (Nabholz et al., 2009)
ความสำคัญของการเปลี่ยนแปลงในพืชดอกโดยเฉพาะอย่างยิ่งในระดับท้องถิ่น
เกล็ดสายวิวัฒนาการเป็นประวัติการณ์ กลุ่มเช่น Silene มี
โอกาสที่เหนือชั้นเพื่อเปรียบเทียบสายพันธุ์ที่เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดใน
อัตราซึ่งญาติของยล vs ลำดับนิวเคลียร์
วิวัฒนาการได้รับการคว่ำสมบูรณ์ (รูป. 2a) รูปแบบของการ
เปลี่ยนแปลงอัตราการทดแทนใน DNA organelle พืชจะทำแม้กระทั่งการ
ที่ซับซ้อนมากขึ้น (และที่น่าสนใจ) เป็นจำนวนมากโดยยังคงไม่ได้อธิบาย
ในกรณีที่เร่งความเร็วได้รับการปฏิบัติในเวลาเพียงขนาดเล็ก
จำนวนของยีนในขณะที่ส่วนที่เหลือของจีโนมที่ยังคงดูเหมือนจะ
ได้รับผลกระทบ ( สโลน et al, 2009;. จีและคณะ, 2010;... จู้และคณะ, 2014)
การเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาของยีนยล
เนื้อหายลยีนในพืชยังเป็นตัวแปร ใน
ทางตรงกันข้ามกับสัตว์ที่มีเกือบทุกแห่ง
ชุดอนุรักษ์ 13 ยีนโปรตีนเข้ารหัส Angiosperms มี
ทุกที่ 24-41 ยีนเข้ารหัสโปรตีน (รูปที่. 3)
การถ่ายโอนการทำงานของยีน organelle นิวเคลียสยังคงเป็น
ขั้นตอนการใช้งานใน lineages พืชชั้นสูงจำนวนมากที่เกิดขึ้นใน evershifting
ภูมิทัศน์ของปฏิกริยาระหว่างโปรตีน cytonuclear
(อดัมส์ et al., 2002) การสูญเสียยีนยลได้รับแม้กระทั่ง
'จับในการกระทำในบางชนิดสร้างโอกาสที่ไม่ซ้ำกันในการ
ศึกษากระบวนการของการถ่ายโอนในเซลล์ ยกตัวอย่างเช่นในบาง
พืชตระกูลถั่วสำเนาของยีน COX2 เป็นปัจจุบันและคัดลอกทั้งใน
จีโนมของนิวเคลียร์และยล (อดัมส์ et al., 1999) ใน
นอกจากนี้การวิเคราะห์จีโนมยลจากหลาย
ประชากรของขิง Silene ได้เปิดเผย polymorphism สำนวน
เนื้อหายีนยล สำเนายลของ
ยีนโปรตีนโซมอล rpl5 และ rps13 ยังคงอยู่เหมือนเดิมและใน
บุคคลบางคนในสายพันธุ์นี้ แต่ขาดหรือ pseudogenized ใน
อื่น ๆ (โลน et al., 2012b) ในกรณีที่ rps13, ความแตกต่างนี้
ดูเหมือนจะเกี่ยวข้องกับการถ่ายโอนยีนที่ผ่านมาเพื่อนิวเคลียส.
กระบวนการของการถ่ายโอนยีนสร้างศักยภาพในการที่รุนแรง
รูปแบบของความไม่ลงรอยกัน cytonuclear ที่ไม่ตรงกันระหว่าง
ภูมิหลังนิวเคลียร์และยลในลูกผสม F2 อาจส่งผล
ใน กรณีที่ไม่มีที่สมบูรณ์ของการทำงานของยีน.
ยล tRNA เนื้อหายีนยังเป็นอย่างมากแบบไดนามิกใน
พืชดอก ประชากร tRNA ใน mitochondria โรงงาน
ที่ได้มาจากการผสมผสานของยีน nativemitochondrial ยีนพลาสที่
ได้รับมาจากจีโนมยลผ่าน IGT และ
ยีนนิวเคลียร์มีผลิตภัณฑ์ที่จะต้องนำเข้ามาจากเซลล์.
ส่วนผสมของยีน tRNA ได้รับเรื่องบ่อย การปรับเปลี่ยน
ในช่วงวิวัฒนาการของพืชดอก อีกครั้งหนึ่งที่ส่วนใหญ่
การเปลี่ยนแปลงอย่างมากได้รับการรับรองภายในสกุล Silene.
ในฐานะที่เป็นกลุ่มพันธุ์ Silene มีประสบการณ์การสูญเสียที่กว้างขวางของ tRNA
ยีนจากจีโนมยลและการสูญเสียเป็นส่วนใหญ่
ที่โดดเด่นในสายพันธุ์ที่มีการทดแทนยลสูงสูง
อัตรามีบาง สายพันธุ์การรักษาเป็นเพียงแค่สองหรือสามเหมือนเดิม
ยีน tRNA ในจีโนมของพวกเขายล (สโลน et al., 2012a).
มันอาจเป็นไปได้ แต่ไม่ได้รับการยืนยันว่ายังไม่หายไป tRNA ยล
ยีนได้ถูกแทนที่โดยการนำเข้า cytosolic tRNAs นอกจากนี้ยัง
ยังไม่ได้กำหนดว่าการสูญเสียของยีน tRNA ยล
ได้รับการที่เกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงที่มีความสัมพันธ์หรือความสูญเสียของ nuclearencoded
ยีน tRNA synthetase.
การเปลี่ยนแปลงในขนาดจีโนมยลและโครงสร้าง
ของพืชจีโนมยลยังแตกต่างกันอย่างมากในขนาดและ
โครงสร้าง ติดใจจีโนมยลพืชชั้นสูงช่วง
ช่วง 50 เท่าในขนาดตั้งแต่ 220 กิโลเป็น 11.3 Mb อย่างน่าทึ่งเกือบ
ช่วงนี้ทั้งหมดจะถูกจับภายในสกุลไซเลน (สโลน et al.,
2012a) ซึ่งรวมถึงจีโนมเนลล์ที่ใหญ่ที่สุดยังระบุ
ใน eukaryote ใด ๆ (เอส conica) การเปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ในยล
ขนาดจีโนมในหมู่ Angiosperms ดูเหมือนจะสะท้อนให้เห็นถึงการเปลี่ยนแปลงใน
ปริมาณของเนื้อหา noncoding เป็นขนาดจีโนมจะไม่ได้มีความสัมพันธ์
กับจำนวนของยีนข้อเขียน (รูปที่. 3) มันมีมานาน
เป็นที่รู้จักกันว่าจีโนมยลพืชมีโครงสร้างของเหลวและ
ความสามารถในการ interconverting ระหว่างรูปแบบทางเลือกผ่านระหว่างกิจการและ
การรวมตัวกันระหว่างโมเลกุลที่เกี่ยวข้องกับลำดับซ้ำ
ตลอดทั้งจีโนม rearrangements โครงสร้างภายในโรงงาน
mtDNA สามารถสร้าง ORFs ลูกผสมซึ่งมักจะเกี่ยวข้อง
กับหมันชายนิวเคลียสและการมีปฏิสัมพันธ์กับ cytonuclear
restorers นิวเคลียร์เข้ารหัสความอุดมสมบูรณ์ของเพศชาย (Schnable & ฉลาด,
1998) ในปีที่ผ่านมามันได้กลายเป็นที่ชัดเจนว่าพืชชั้นสูงบาง
mitochondria ยังมีโครโมโซมอิสระหลาย

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตัดเฉพาะความเร่งในอัตราทดแทน
พ้อง ( รูปที่ 2A ) แม้ว่าความหลากหลายในการชดเชย
ราคาโดยไม่มีหมายถึงเอกลักษณ์ของพืช ( nabholz et al . , 2009 ) ,
ขนาดของความผันแปรในพืชดอก โดยเฉพาะอย่างยิ่งในระดับท้องถิ่น
ชนิดเกล็ด เป็นประวัติการณ์ กลุ่ม เช่น silene เสนอโอกาสที่จะเปรียบเทียบชนิดหาตัวจับยาก

เกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดในซึ่งอัตราสัมพัทธ์ของไมโตคอนเดรียและนิวเคลียร์ ลำดับ
วิวัฒนาการสนิทคว่ำ ( รูปที่ 2A ) รูปแบบของการเปลี่ยนแปลงในอัตรา
ดีเอ็นเอออร์แกเนลล์พืชที่ทำแม้กระทั่ง
ซับซ้อนมากขึ้น ( และน่าสนใจ ) โดยจำนวนของคดีที่ยังไม่ได้อธิบาย
ที่ความเร่งได้พบเพียงจำนวนน้อย
ของยีนในขณะที่ส่วนที่เหลือของจีโนมที่ยังคงปรากฏอยู่
ผลกระทบ ( สโลน et al . , 2009 ; มากี et al . , 2010 ; จู et al . , 2010 ) .

การเปลี่ยนแปลงยีนยีนไมโตคอนเดรียลเนื้อหาเนื้อหาในพืชมีตัวแปรมาก ใน
ตรงกันข้ามกับสัตว์ ซึ่งมีเกือบทุกแห่งสามารถตั้ง 13 นะครับ

พืชดอกประกอบด้วยโปรตีนยีนใดก็ได้จาก 24 41 รหัสยีนโปรตีน ( รูปที่ 3 )
การถ่ายโอนยีนในนิวเคลียสของออร์แกเนลล์หน้าที่ยังคงมีกระบวนการที่ใช้งานอยู่ในพันธุ์พืชดอกมากมาย

evershifting , ส่งผลให้ภูมิทัศน์ของ cytonuclear โปรตีนและโปรตีนปฏิสัมพันธ์
( Adams et al . , 2002 ) ยีนไมโตคอนเดรียสูญเสียยังถูก
'caught ในการแสดง ' ในบางชนิด การสร้างเอกลักษณ์โอกาส

ศึกษากระบวนการโอนภายในเซลล์ . ตัวอย่างเช่นในบาง
พืชตระกูลถั่วสำเนาของยีนที่เป็นปัจจุบันและ cox2 และทั้ง
จีโนมนิวเคลียร์และอุตสาหกรรม ( Adams et al . , 1999 ) ใน
นอกจากนี้การวิเคราะห์ยลจีโนมจากหลาย
ประชากรของ silene vulgaris ได้เปิดเผย
) สำหรับการเซ็นต์ของเนื้อหา การสำเนาของยีนไรโบโซมอลโปรตีนและ
rpl5 rps13 ยังคงมีอยู่เหมือนเดิมใน
บุคคลบางคนในชนิดนี้ แต่ขาดหรือ pseudogenized ใน
คนอื่น ( สโลน et al . , 2012b ) ในกรณีของ rps13 นี้ -
ดูเหมือนจะเกี่ยวข้องกับการถ่ายโอนยีนในนิวเคลียสล่าสุด .
กระบวนการของการถ่ายโอนยีนสร้างศักยภาพในรูปแบบสุดโต่ง
ของ cytonuclear รธน. ซึ่งในความไม่ระหว่าง
หลังนิวเคลียร์และไมโตคอนเดรียใน F2 ลูกผสมอาจส่งผล
ในการขาดที่สมบูรณ์ของยีนไมโตคอนเดรียของการทำงาน .
ทีอาร์เอ็นเอเนื้อหายังสูงแบบไดนามิกใน
พืชดอก . ส่วนการเมารถประชากรพืช
) ได้มาจากส่วนผสมของ nativemitochondrial ยีน ยีนพลาสติดที่
ได้มาโดยตัดจีโนมทางไฟฟ้า และยีนที่มีผลิตภัณฑ์
นิวเคลียร์ต้องนำเข้าจากไซโตซอล .
การผสมผสานของการเมารถยีนที่ได้รับภายใต้
ปรับเปลี่ยนบ่อยในระหว่างวิวัฒนาการของพืชดอก . อีกครั้ง , การเปลี่ยนแปลงที่น่าทึ่งที่สุด
ได้รับเอกสารภายในสกุล silene .
เป็นกลุ่ม silene ชนิดที่มีประสบการณ์การสูญเสียที่กว้างขวางของการเมารถ
ยีนจากจีโนมยลและการสูญเสียมากที่สุด
ตื่นตาตื่นใจในชนิดขอยกระดับการทดแทน
อัตราบางชนิดรักษาไม่กี่เท่าแค่ 2 หรือ 3 ยีนในจีโนมของการเมารถเหมือนเดิม
ล ( สโลน et al . , 2012a ) .
มันมากแต่ยังไม่มีการยืนยันว่าหลงยลทีอาร์เอ็นเอ
ยีนได้ถูกแทนที่ด้วยการนำเข้า cytosolic trnas . นอกจากนี้ยังต้องพิจารณาว่า

การสูญเสียยีนไมโตคอนเดรียทีอาร์เอ็นเอมีความเกี่ยวข้องกับการเปลี่ยนแปลงหรือมีการสูญเสียของ nuclearencoded
ทีอาร์เอ็นเอเทสยีนในจีโนมยล
รูปแบบขนาดและโครงสร้างของจีโนมพืช
ลยังแตกต่างกันอย่างมากในขนาดและ
โครงสร้าง ลำดับจีโนมยลวกขยาย
50 เท่าในช่วงขนาดจาก 220 กิโลถึง 11.3 MB อย่างน่าทึ่ง , เกือบ
ช่วงทั้งหมดนี้ถูกจับภายในสกุล silene ( สโลน et al . ,
2012a ) ซึ่งรวมถึงอวัยวะภายในที่ใหญ่ที่สุดโดยยังระบุ
ในกูเกิล โครม ( S . conica ) การเปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ในขนาดจีโนมยล
ของพืชดอกจะปรากฏขึ้นเพื่อสะท้อนให้เห็นถึงการเปลี่ยนแปลงใน
จํานวน noncoding เนื้อหา เป็นขนาดจีโนมไม่มีความสัมพันธ์
ด้วยหมายเลขของบันทึกย่อยีน ( รูปที่ 3 ) มันมีนานแล้ว
ที่รู้จักกันว่าพืชยลจีโนมมีโครงสร้างของเหลวและ
สามารถ interconverting ระหว่างรูปแบบทางภายในและระหว่างโมเลกุลที่เกี่ยวข้องกับการ
,
ตลอดซ้ำลำดับจีโนม . rearrangements แสดงโครงสร้างภายในของพืชที่สามารถสร้าง orfs

ซึ่งมักจะเกี่ยวข้องกับการเป็นหมัน และปฏิสัมพันธ์นี้ด้วย
cytonuclearนิวเคลียร์ที่ปฏิสังขรณ์ของความอุดมสมบูรณ์ของเพศชาย ( schnable &ฉลาด
1998 ) ในปีที่ผ่านมามันได้กลายเป็นที่ชัดเจนว่าบางวก
) ยังประกอบด้วยหลายของโครโมโซม