2.3. Chemical eficacy testsTbe chem

2.3. Chemical eficacy tests
Tbe chemical efficacy study included three treatment regimes. In the first, the
effectiveness of formalin was evaluated at treatment concentrations of 500, 1000, and
1500 I.Ll 1-l. In the second, the efficacy of hydrogen peroxide was evaluated at
treatment concentrations of 100, 250, and 500 ~1 1-l. The third trial compared the
effectiveness of formalin at 1500 ~1 l- ‘, hydrogen peroxide at 1000 ~1 l- ‘, and salt at
3OOOtJ mg 1-l.
Green fertilized rainbow trout eggs of the same lot were obtained within 36 h after
spawning from Trout Lodge, Sumner, WA. Aliquots of 500 eggs were randomly placed
in Heath incubator trays using a modified egg-counting board (Bailey and Jeffrey,
1989). The eggs were confined within a 195 mm diameter acrylic ring 25 mm in height
that was secured to the screen of each incubator tray with silicone. Each treatment
consisted of three replicates of 500 eggs each placed in separate incubator trays. Well
water used for egg incubation had a pH of 8.0, hardness of 138 ppm as CaCO,,
326 TM. Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-331
alkalinity of 105 ppm as CaCO,, dissolved oxygen content of 9.0 ppm or greater, and a
temperature of 12 f 2°C. Water flow was approximately 3.8 1 min-’ during incubation
and was increased to 7.6 1 min-’ during treatments and hatch.
To produce infections, egg groups were inoculated with Saprolegnia parasitica by
suspending a teaball containing 12 infected hempseeds in each treatment tray for about 7
d or until the infection rate was 10%. The teaball is a small spherical (diameter of 4 cm)
stainless steel container perforated with holes (1 mm diameter) to allow the movement
of water in and out. The infection rates were determined by counting the number of eggs
with visible fungal growth. During this infection period, water flow was discontinued for
2 h periods twice a day to promote infection of eggs. The uninfected egg groups (0%
infection) were not inoculated with fungus and were allowed to incubate until the
infected egg groups reached a 10% infection level. Prior to chemical treatments,
infection rates per tray were equalized by exchanging eggs among trays with high and
low percent infection to achieve a uniform 10% infection rate. A positive control group
was inoculated with fungus, but not treated with fungicides; a negative control group
was neither inoculated nor treated with fungicide.
Treatment chemicals were delivered with a peristaltic pump (100 ml min-‘) to the
incoming water of a mixing tray positioned directly above a treatment tray. Treatment
concentrations were achieved by delivering calculated amounts of test chemical solutions
to a specific incoming water flow. Treatments were administered for a duration of
15 min every other day until eggs began to hatch (approximately 2 weeks). Mortality
and fungal infection rates were assessed before the first treatment (initial) and after the
last treatment (final>. Percent mortality was determined by counting the number of dead
eggs; those that appear white. Fry hatch was assessed after all viable eggs had hatched.
The percent hatch was corrected by subtracting the initial mortality from 500 eggs
according to the following formula.
number hatched
Percent hatch =
500 eggs - initial morts
x 100
Samples of treatment water were taken to determine concentrations for each test
chemical. Samples were removed from the effluent of each tray 10 min after the
treatment began. Aliquots were collected from one of the replicates for each treatment
group. Concentrations of formalin were determined using the spectrophometric method
mentioned earlier. Concentrations of hydrogen peroxide were determined by a permanganate
titrimetric procedure (Jeffery et al., 1989). Concentrations of sodium chloride
were determined with a Hanna portable conductivity meter.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3. Chemical eficacy testsTbe chemical efficacy study included three treatment regimes. In the first, theeffectiveness of formalin was evaluated at treatment concentrations of 500, 1000, and1500 I.Ll 1-l. In the second, the efficacy of hydrogen peroxide was evaluated attreatment concentrations of 100, 250, and 500 ~1 1-l. The third trial compared theeffectiveness of formalin at 1500 ~1 l- ‘, hydrogen peroxide at 1000 ~1 l- ‘, and salt at3OOOtJ mg 1-l.Green fertilized rainbow trout eggs of the same lot were obtained within 36 h afterspawning from Trout Lodge, Sumner, WA. Aliquots of 500 eggs were randomly placedin Heath incubator trays using a modified egg-counting board (Bailey and Jeffrey,1989). The eggs were confined within a 195 mm diameter acrylic ring 25 mm in heightthat was secured to the screen of each incubator tray with silicone. Each treatmentconsisted of three replicates of 500 eggs each placed in separate incubator trays. Wellwater used for egg incubation had a pH of 8.0, hardness of 138 ppm as CaCO,,326 TM. Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-331alkalinity of 105 ppm as CaCO,, dissolved oxygen content of 9.0 ppm or greater, and atemperature of 12 f 2°C. Water flow was approximately 3.8 1 min-’ during incubationand was increased to 7.6 1 min-’ during treatments and hatch.To produce infections, egg groups were inoculated with Saprolegnia parasitica byระงับ teaball ประกอบด้วย 12 ติดเชื้อ hempseeds ในแต่ละถาดรักษาสำหรับประมาณ 7d หรือจน กว่าอัตราการติดเชื้อได้ 10% Teaball จะมีขนาดเล็กทรงกลม (เส้นผ่าศูนย์กลาง 4 ซม.)ภาชนะสเตนเลสรู มีรู (เส้นผ่าศูนย์กลาง 1 มิลลิเมตร) เพื่อให้การเคลื่อนไหวน้ำ และใน กำหนดอัตราการติดเชื้อ โดยการนับจำนวนไข่มีการเจริญเติบโตเชื้อราที่มองเห็นได้ ช่วงนี้ติดเชื้อ การไหลของน้ำถูกยกเลิกสำหรับระยะเวลา 2 ชม.สองครั้งต่อวันเพื่อส่งเสริมการติดเชื้อของไข่ กลุ่มไข่การติดเชื้อ (0%ติดเชื้อ) ไม่ inoculated กับเชื้อรา และได้รับอนุญาตให้ฟักจนถึงการกลุ่มไข่ถึงระดับ 10% ติดเชื้อการติดเชื้อ ก่อนเคมีอัตราการติดเชื้อต่อถาดถูกแบ่งงาน โดยแลกไข่ในถาดสูง และต่ำการติดเชื้อร้อยละอัตราการติดเชื้อ 10% เหมือนกัน กลุ่มควบคุมบวกinoculated กับเชื้อรา แต่ไม่รับเชื้อรา กลุ่มควบคุมที่เป็นค่าลบไม่ใช่ inoculated หรือทาฆ่าเชื้อราเคมีบำบัดจัดส่งปั๊ม peristaltic (100 มิลลิลิตรนาที-') ไปน้ำเข้าของถาดผสมวางไว้ข้างถาดรักษาโดยตรง รักษาความเข้มข้น โดยให้คำนวณยอดเงินของการทดสอบน้ำยาทำการไหลเฉพาะน้ำเข้า คือระยะเวลาของการรักษา15 นาทีทุกวันจนไข่เริ่มฟัก (ประมาณ 2 สัปดาห์) อัตราการตายและติดเชื้อราราคาถูกประเมิน ก่อนการรักษาครั้งแรก (เริ่มต้น) และหลังการสุดท้ายการรักษา (สุดท้าย > เปอร์เซ็นต์ตายถูกกำหนด โดยการนับจำนวนคนตายไข่ ผู้ที่ปรากฏสีขาว ผัดฟักถูกประเมินหลังจากที่มีฟักไข่ได้ทั้งหมดแก้ไข โดยลบอัตราเริ่มต้นจาก 500 ฟองฟักเปอร์เซ็นต์ตามสูตรต่อไปนี้เลขที่ฟักเปอร์เซ็นต์ฟัก =ไข่ 500 - morts ต้นx 100ตัวอย่างของน้ำที่ถ่ายเพื่อตรวจสอบความเข้มข้นสำหรับแต่ละการทดสอบสารเคมี ตัวอย่างถูกเอาออกจากทิ้งของถาดละ 10 นาทีหลังจากการเริ่มรักษา Aliquots ถูกเก็บรวบรวมจากหนึ่งเหมือนกับการรักษาแต่ละกลุ่ม ความเข้มข้นของ formalin กำหนดโดยใช้วิธี spectrophometricกล่าวถึงก่อนหน้านี้ ความเข้มข้นของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ถูกกำหนด โดยการเติมขั้นตอน titrimetric (เจฟ et al. 1989) ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์ถูกกำหนด ด้วยเครื่องวัดค่าการนำไฟฟ้าแบบพกพา Hanna

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 การทดสอบสารเคมี eficacy
TBE การศึกษาประสิทธิภาพของสารเคมีรวมถึงการรักษาระบอบการปกครองที่สาม ในครั้งแรกที่
มีประสิทธิผลของฟอร์มาลินถูกประเมินที่ระดับความเข้มข้นของการรักษา 500, 1000 และ
1500 I.Ll 1-L ในครั้งที่สองการรับรู้ความสามารถของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ได้รับการประเมินใน
ระดับความเข้มข้นของการรักษา 100, 250, และ 500 ~ 1 1-L การพิจารณาคดีที่สามเมื่อเทียบ
ประสิทธิภาพของฟอร์มาลิน 1500 ~ 1 L- 'ไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ 1000 ~ 1 L-' และเกลือที่
3OOOtJ mg 1 ล.
สีเขียวไข่เรนโบว์เทราท์มากเหมือนกันที่ได้รับภายใน 36 ชั่วโมงหลังจาก
วิ่งพล่านจากปลาเทราท์ Lodge, Sumner, วอชิงตัน aliquots 500 ไข่วางสุ่ม
ในเฮลท์ถาดศูนย์บ่มเพาะโดยใช้คณะกรรมการการแก้ไขไข่นับ (เบลีย์และเจฟฟรีย์,
1989) ไข่ถูกกักขังอยู่ภายในแหวนคริลิคขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 195 มิลลิเมตร 25 มิลลิเมตรความสูง
ที่ได้รับการรักษาความปลอดภัยไปยังหน้าจอของแต่ละถาดศูนย์บ่มเพาะด้วยซิลิโคน การรักษาแต่ละ
ประกอบด้วยสามซ้ำ 500 ไข่แต่ละคนอยู่ในถาดศูนย์บ่มเพาะแยกต่างหาก ดี
น้ำที่ใช้ในการบ่มเพาะไข่มีค่า pH 8.0 ความแข็ง 138 ppm as CaCO ,,
326 TM Schreier et al./Aquaculture 140 (1996) 323-331
ด่างของ 105 ppm as CaCO ,, ปริมาณออกซิเจนที่ละลายในน้ำ 9.0 ppm หรือมากกว่าและ
อุณหภูมิ 12 F 2 องศาเซลเซียส การไหลของน้ำอยู่ที่ประมาณ 3.8 1 min- ในช่วงฟักตัว
และเพิ่มขึ้นเป็น 7.6 1 min- ในระหว่างการรักษาและการฟัก.
เพื่อผลิตการติดเชื้อกลุ่มไข่ถูกเชื้อด้วย Saprolegnia parasitica โดย
ระงับ teaball ที่มี 12 hempseeds ติดเชื้อในถาดรักษาแต่ละประมาณ 7
D หรือจนกว่าจะมีอัตราการติดเชื้อเป็น 10% teaball มีขนาดเล็กทรงกลม (เส้นผ่าศูนย์กลาง 4 ซม.)
ภาชนะสแตนเลสที่มีรูพรุน (มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลาง 1) เพื่อให้การเคลื่อนไหว
ของน้ำในและนอก อัตราการติดเชื้อได้รับการพิจารณาโดยการนับจำนวนของไข่
กับการเจริญเติบโตของเชื้อราที่มองเห็นได้ ในช่วงระยะเวลาการติดเชื้อนี้การไหลของน้ำก็หยุดสำหรับ
2 งวดชั่วโมงวันละสองครั้งเพื่อส่งเสริมการติดเชื้อของไข่ กลุ่มที่ไม่ติดเชื้อไข่ (0% ของ
การติดเชื้อ) ไม่ได้รับเชื้อด้วยเชื้อราและได้รับอนุญาตในการฟักไข่จน
กลุ่มไข่ติดเชื้อถึงระดับการติดเชื้อ 10% ก่อนที่จะมีการรักษาทางเคมี
อัตราการติดเชื้อต่อถาดถูกเสมอภาคกันโดยการแลกเปลี่ยนไข่หมู่ถาดที่มีสูงและ
การติดเชื้อร้อยละต่ำเพื่อให้เกิดอัตราการติดเชื้อเครื่องแบบ 10% กลุ่มควบคุมบวก
ได้รับเชื้อด้วยเชื้อรา แต่ไม่ได้รับการรักษาด้วยสารฆ่าเชื้อรา; กลุ่มควบคุมเชิงลบ
เป็นค่าเชื้อมิได้รับการรักษาด้วยยาฆ่าเชื้อรา.
สารเคมีบำบัดที่ถูกส่งมากับปั๊ม peristaltic (100 มล. min- ') กับ
น้ำที่เข้ามาของถาดผสมในตำแหน่งที่ตรงเหนือถาดรักษา รักษา
ระดับความเข้มข้นที่กำลังประสบความสำเร็จโดยการส่งมอบจำนวนเงินที่คำนวณได้ของการแก้ปัญหาสารเคมีทดสอบ
กับการไหลของน้ำที่เข้ามาที่เฉพาะเจาะจง การรักษาเป็นยาสำหรับระยะเวลาของ
15 นาทีทุกวัน ๆ จนไข่เริ่มฟัก (ประมาณ 2 สัปดาห์) การตาย
และการติดเชื้อเชื้อราอัตราการได้รับการประเมินก่อนการรักษาครั้งแรก (เริ่มต้น) และหลังการ
รักษาครั้งสุดท้าย (ครั้งสุดท้าย> เปอร์เซ็นต์การตายถูกกำหนดโดยการนับจำนวนของคนตาย.
ไข่. ที่ปรากฏสีขาวทอดฟักได้รับการประเมินหลังจากไข่ที่ทำงานทุกคนจะได้ฟัก .
ฟักร้อยละได้รับการแก้ไขโดยการหักตายเริ่มต้นจาก 500 ไข่
ตามสูตรดังต่อไปนี้.
จำนวนฟัก
เปอร์เซ็นต์ฟัก =
500 ไข่ - Morts เริ่มต้น
x 100
ตัวอย่างน้ำการรักษาถูกนำไปตรวจสอบความเข้มข้นสำหรับการทดสอบแต่ละ
เคมีตัวอย่างถูกลบออกจาก. ท่อน้ำทิ้งของแต่ละถาด 10 นาทีหลังจากที่
การรักษาเริ่ม. aliquots ถูกเก็บรวบรวมจากหนึ่งซ้ำสำหรับการรักษาแต่ละ
กลุ่ม. ความเข้มข้นของฟอร์มาลินได้รับการพิจารณาโดยใช้วิธี spectrophometric
กล่าวก่อนหน้านี้. ความเข้มข้นของไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ที่ถูกกำหนดโดยแมง
ขั้นตอนการไตเตรท (เจฟฟรีย์ et al., 1989). ความเข้มข้นของโซเดียมคลอไรด์
ถูกกำหนดด้วยเครื่องวัดค่าการนำไฟฟ้าแบบพกพาฮันนา