Materials and methods Experimental

Materials and methods Experimental animals Experiments were performed on seven adult pearl gourami Trichogaster leeri Bleeker 1852 (wet mass 5.15±0.97·g; length 59.1±1.2·mm; means ± s.d.) that were obtained from a local aquarium supplier. Fish were maintained in aquaria filled with
dechlorinated Adelaide tap water at 25°C. All fish were maintained under these conditions for at least one year prior to experimentation.
Aerial respirometry Prior to experimentation, food was withheld for 24·h and fish were individually placed in 1·litre bottles (Schott Duran, Germany) that were covered in black plastic to minimise stress. Bottles containing fish were held in a constant-temperature water bath maintained at 25±1°C by a heater (Thermomix 1419; B. Braun, Melsungen, Germany). Fish were allowed 12·h to acclimate to the chambers and to recover from handling prior to each experiment. An air stone gently aerated the water during the acclimation period. Respiratory studies were conducted with an open-flow respirometer system. O2 and N2 were supplied from compressed cylinders (BOC Gases, Adelaide, Australia) and delivered to the respirometry chamber at a desired O2 content (FIO2) and flow rate (VI; 100, 150 or 200·ml·min–1). The flow rate for each trial was selected to minimise the washout time while providing reliably detectable changes in the excurrent O2 content (FEO2). O2 content and flow rate were controlled by mass flow controllers (model GFC171; Aalborg Instruments and Controls, New York, NY, USA; 0–1·l·min–1, rated accuracy ±15·ml·min–1) using a PC running digital–analogue control software and hardware (PowerDAQ™PD2-AO and ProfessorDAQ™; United Electronic Industries, Canton, MA, USA). Flow controllers were calibrated to each gas with a 3.5·litre calibrator (model 1057A Vol-U-Meter Calibrator; Brooks Instruments, Hatfield, PA, USA; accuracy of calibrated controllers was better than 5% of reading, usually 1–2% of reading). To ensure uniform mixing of O2 and N2, these gases were passed through a 1·litre, rigid mixing chamber before entering the respirometer. Nevertheless, the O2 level was not as constant as expected in normal open-flow respirometry with atmospheric air, so the variability had to be accounted for in the analysis (see below). Upon exiting the respirometry chamber, gases passed through a U-tube containing Drierite™ (Hammond Drierite Co. Ltd, Xenia, OH, USA) to remove water vapour and into a differential O2 analyser (FC-2 Oxzilla I; Sable Systems International, Las Vegas, NV, USA). The analyser was calibrated using dried (Drierite™), CO2-free (Ascarite™; Arthur H. Thomas Company, Swedesboro, NJ, USA) atmospheric air (0.2095 O2). The analyser measured FEO2 approximately every 1.25·s and used a running five-sample average for each data point. The data output from the O2 analyser was received simultaneously in an analogue and digital format. The analogue output was recorded at 2·s intervals with a digital multimeter (model TX3 True RMS and WaveStar™ Version 2.2; Tektronix, Beaverton, OR, USA) interfaced with a PC via the RS232 port. Depending on the analogue output scaling chosen, these voltage values were converted to FEO2 using relationships provided by Sable Systems International. The Oxzilla digital output was received by a DOS terminal program (SERIN; Sable Systems International) and recorded at intervals of approximately 1.1·s
L. A. Alton, C. R. White and R. S. Seymour
THE JOURNAL OF EXPERIMENTAL BIOLOGY
2313Bimodal gas exchange in Trichogaster leeri
on a second PC. For analyses, WaveStar data were preferred due to SERIN’s unstable timing interval, but SERIN data were used in two cases where high-frequency noise in the analogue data signal prevented reliable detection of breaths.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

วัสดุและวิธีการทดลองในสัตว์ทดลองได้ดำเนินการในปลากระดี่มุกผู้ใหญ่เจ็ด Trichogaster leeri 1852 Bleeker (5.15±0.97·g เปียกมวล ความยาว 59.1±1.2·mm หมายถึง± s.d.) ที่ได้รับจากซัพพลายเออร์ภายในพิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำ มีรักษาปลาในอควาเรียด้วยdechlorinated ดประปาที่ 25 องศาเซลเซียส ปลาทั้งหมดถูกเก็บรักษาภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้อย่างน้อยหนึ่งปีก่อนการทดลองAerial respirometry Prior to experimentation, food was withheld for 24·h and fish were individually placed in 1·litre bottles (Schott Duran, Germany) that were covered in black plastic to minimise stress. Bottles containing fish were held in a constant-temperature water bath maintained at 25±1°C by a heater (Thermomix 1419; B. Braun, Melsungen, Germany). Fish were allowed 12·h to acclimate to the chambers and to recover from handling prior to each experiment. An air stone gently aerated the water during the acclimation period. Respiratory studies were conducted with an open-flow respirometer system. O2 and N2 were supplied from compressed cylinders (BOC Gases, Adelaide, Australia) and delivered to the respirometry chamber at a desired O2 content (FIO2) and flow rate (VI; 100, 150 or 200·ml·min–1). The flow rate for each trial was selected to minimise the washout time while providing reliably detectable changes in the excurrent O2 content (FEO2). O2 content and flow rate were controlled by mass flow controllers (model GFC171; Aalborg Instruments and Controls, New York, NY, USA; 0–1·l·min–1, rated accuracy ±15·ml·min–1) using a PC running digital–analogue control software and hardware (PowerDAQ™PD2-AO and ProfessorDAQ™; United Electronic Industries, Canton, MA, USA). Flow controllers were calibrated to each gas with a 3.5·litre calibrator (model 1057A Vol-U-Meter Calibrator; Brooks Instruments, Hatfield, PA, USA; accuracy of calibrated controllers was better than 5% of reading, usually 1–2% of reading). To ensure uniform mixing of O2 and N2, these gases were passed through a 1·litre, rigid mixing chamber before entering the respirometer. Nevertheless, the O2 level was not as constant as expected in normal open-flow respirometry with atmospheric air, so the variability had to be accounted for in the analysis (see below). Upon exiting the respirometry chamber, gases passed through a U-tube containing Drierite™ (Hammond Drierite Co. Ltd, Xenia, OH, USA) to remove water vapour and into a differential O2 analyser (FC-2 Oxzilla I; Sable Systems International, Las Vegas, NV, USA). The analyser was calibrated using dried (Drierite™), CO2-free (Ascarite™; Arthur H. Thomas Company, Swedesboro, NJ, USA) atmospheric air (0.2095 O2). The analyser measured FEO2 approximately every 1.25·s and used a running five-sample average for each data point. The data output from the O2 analyser was received simultaneously in an analogue and digital format. The analogue output was recorded at 2·s intervals with a digital multimeter (model TX3 True RMS and WaveStar™ Version 2.2; Tektronix, Beaverton, OR, USA) interfaced with a PC via the RS232 port. Depending on the analogue output scaling chosen, these voltage values were converted to FEO2 using relationships provided by Sable Systems International. The Oxzilla digital output was received by a DOS terminal program (SERIN; Sable Systems International) and recorded at intervals of approximately 1.1·sL. A. Alton, C. R. ขาว และซี มัวร์ S. R.สมุดรายวันทดลองชีววิทยา2313Bimodal แลกเปลี่ยนก๊าซใน Trichogaster leeriบนพีซีที่สอง สำหรับวิเคราะห์ WaveStar ข้อมูลถูกต้องเนื่องจากช่วงเวลาที่ไม่เสถียรของ SERIN แต่ SERIN ข้อมูลถูกใช้ในสองกรณีซึ่งเสียงความถี่สูงในสัญญาณอนาล็อกข้อมูลทำให้ไม่สามารถตรวจสอบความน่าเชื่อถือของการหายใจ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

วัสดุและวิธีการทดลองสัตว์ทดลองได้ดำเนินการในเจ็ดผู้ใหญ่มุกปลาสลิด Trichogaster leeri Bleeker 1852 (มวลเปียก 5.15 ± 0.97 กรัม·ความยาว 59.1 ± 1.2 ·มมหมายถึง± SD) ที่ได้รับจากผู้จัดจำหน่ายที่พิพิธภัณฑ์สัตว์น้ำในท้องถิ่น ปลาจะถูกเก็บรักษาไว้ในตู้เต็มไปด้วย
dechlorinated น้ำประปา Adelaide ที่ 25 ° C ปลาทั้งหมดถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้เป็นเวลาอย่างน้อยหนึ่งปีก่อนที่จะมีการทดลอง
ทางอากาศ respirometry ก่อนที่จะมีการทดลองอาหารที่ได้รับการอนุมัติสำหรับ 24 ·ชั่วโมงและปลาถูกวางไว้ในแต่ละ 1 ·ขวดลิตร (ชอตต์ Duran, เยอรมนี) ที่ถูกปกคลุมไปด้วยสีดำ พลาสติกเพื่อลดความเครียด ขวดที่มีปลาถูกจัดขึ้นในอ่างน้ำคงอุณหภูมิไว้ที่ 25 ± 1 ° C โดยเครื่องทำความร้อน (Thermomix 1419; B. Braun, Melsungen, เยอรมนี) ปลาที่ได้รับอนุญาต 12 ·ชั่วโมงเพื่อ acclimate กับห้องและการกู้คืนจากการใช้งานก่อนที่จะมีการทดลองแต่ละ หินอากาศเบา ๆ น้ำมวลเบาในช่วงระยะเวลาการปรับสภาพ การศึกษาระบบทางเดินหายใจได้รับการดำเนินการกับระบบ respirometer เปิดไหล O2 และ N2 ได้มาจากถังบีบอัด (BOC ก๊าซเมืองแอดิเลด, ออสเตรเลีย) และส่งมอบไปยังห้อง respirometry ที่เนื้อหา O2 ที่ต้องการ (FIO2) และอัตราการไหล (VI; 100, 150 หรือ 200 มล··นาที 1) อัตราการไหลของแต่ละการทดลองได้รับการคัดเลือกเพื่อลดเวลาการล้มละลายในขณะที่ให้การเปลี่ยนแปลงที่ตรวจพบได้อย่างน่าเชื่อถือใน excurrent เนื้อหา O2 (FEO2) เนื้อหา O2 และอัตราการไหลถูกควบคุมโดยการควบคุมการไหลของมวล (รูปแบบ GFC171; Aalborg เครื่องมือและการควบคุม, New York, NY, ประเทศสหรัฐอเมริกา 0-1 ลิตร·นาที-1, ความถูกต้องอันดับ± 15 มล··นาที-1) โดยใช้ เครื่องคอมพิวเตอร์ที่ใช้ซอฟต์แวร์ควบคุมดิจิตอลอะนาล็อกและฮาร์ดแวร์ (PowerDAQ ™ PD2-AO และ ProfessorDAQ ™; สหอุตสาหกรรมอิเล็กทรอ Canton, MA, USA) ควบคุมการไหลถูกปรับในแต่ละก๊าซกับ 3.5 ลิตร·สอบเทียบ (โมเดล 1057A ฉบับ-U-Meter สอบเทียบ; บรูคส์เครื่องมือฮัท, PA, USA; ความถูกต้องของตัวควบคุมการสอบเทียบก็ยังดีกว่า 5% ของการอ่านมักจะ 1-2% ของ การอ่าน) เพื่อให้แน่ใจว่าชุดผสมของ O2 และ N2 ก๊าซเหล่านี้ถูกส่งผ่านไป 1 ·ลิตรห้องผสมแข็งก่อนที่จะเข้า respirometer อย่างไรก็ตามระดับ O2 ไม่ได้เป็นค่าคงที่คาดว่าจะได้ตามปกติ respirometry เปิดไหลกับบรรยากาศดังนั้นความแปรปรวนจะต้องคิดในการวิเคราะห์ (ดูด้านล่าง) เมื่อออกจากห้อง respirometry ก๊าซผ่าน U-หลอดที่มี Drierite ™ (แฮมมอนด์ Drierite จำกัด เซเนีย, OH, USA) เพื่อเอาไอน้ำและเป็นความแตกต่างวิเคราะห์ O2 (เอฟซี-2 Oxzilla ฉัน; สีดำระบบนานาชาติ ลาสเวกัส, เนวาดา, สหรัฐอเมริกา) การวิเคราะห์ที่ได้รับการสอบเทียบโดยใช้แห้ง (Drierite ™), CO2 ฟรี (Ascarite ™; อาร์เธอร์เอชโทมัส บริษัท เว, นิวเจอร์ซีย์สหรัฐอเมริกา) บรรยากาศ (0.2095 O2) วิเคราะห์วัด FEO2 ประมาณทุก 1.25 ·และใช้ค่าเฉลี่ยห้าตัวอย่างสำหรับแต่ละจุดข้อมูล ส่งออกข้อมูลที่ได้จากการวิเคราะห์ O2 ได้รับพร้อมกันในแบบอะนาล็อกและรูปแบบดิจิตอล เอาท์พุทแบบอะนาล็อกเป็นบันทึกที่ 2 · S ช่วงเวลาที่มีมัลติมิเตอร์แบบดิจิตอล (โมเดล TX3 RMS ที่แท้จริงและ WaveStar ™เวอร์ชั่น 2.2 ของ Tektronix บีเวอร์ตัน, OR, USA) เชื่อมต่อกับคอมพิวเตอร์ผ่านทางพอร์ต RS232 ทั้งนี้ขึ้นอยู่กับการปรับเอาท์พุทแบบอนาล็อกเลือกค่าแรงดันไฟฟ้าเหล่านี้ถูกแปลงเป็น FEO2 โดยใช้ความสัมพันธ์ที่มีให้โดยสีดำระบบนานาชาติ ซึ่งสัญญาณดิจิตอลที่ Oxzilla ได้รับจากโปรแกรม Terminal DOS (Serin; สีดำระบบนานาชาติ) และบันทึกไว้ในช่วงเวลาประมาณ 1.1 · S
ลิตร A. ตัน CR สีขาวและอาร์เอสซีมัวร์
วารสาร Journal of Experimental ชีววิทยา
แลกเปลี่ยนแก๊ส 2313Bimodal ใน Trichogaster leeri
ในเครื่องคอมพิวเตอร์ที่สอง สำหรับการวิเคราะห์ข้อมูล WaveStar ถูกต้องการเนื่องจากช่วงเวลาที่ไม่แน่นอน SERIN แต่ข้อมูล SERIN ถูกนำมาใช้ในสองกรณีที่เสียงความถี่สูงในสัญญาณข้อมูลอะนาล็อกป้องกันไม่ให้เกิดการตรวจสอบที่เชื่อถือได้ของลมหายใจ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วัสดุและวิธีการทดลองสัตว์ทดลองจำนวนเจ็ดผู้ใหญ่สายรัดข้อมือ 1 leeri น้ำดอกไม้ 1852 ( เปียกมวล 5.15 ± 0.97 ด้วย G ; ความยาว 59.1 ± 1.2 mm ด้วย หมายความว่า ± S.D . ) ที่ได้จากซัพพลายเออร์ พิพิธภัณฑ์ท้องถิ่น ปลาที่ถูกเก็บรักษาไว้ในสัตว์น้ำที่เต็มไป ด้วย
dechlorinated Adelaide น้ำประปาที่ 25 ° Cปลาทั้งหมดถูกเก็บรักษาไว้ภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ เป็นเวลาอย่างน้อยหนึ่งปี ก่อนทดลอง .
ทางอากาศ respirometry ก่อนทดลอง อาหารถูกระงับเป็นเวลา 24 ด้วย H และปลาเป็นแบบวางใน 1 ขวดลิตรด้วย ( คือ ดูแรน , เยอรมนี ) ที่ถูกคลุมด้วยพลาสติกสีดำเพื่อลดความเครียดขวดบรรจุปลาที่ถูกจัดขึ้นคงที่อุณหภูมิน้ำที่อาบไว้ที่ 25 ± 1 ° C โดยฮีตเตอร์ ( thermomix ) ; วท. ซ่า , เมลล์ซุนเก่น , เยอรมัน ) ปลาได้รับอนุญาต 12 ด้วย H เพื่อ acclimate ห้องและการกู้คืนจากการจัดการก่อนที่จะมีในแต่ละการทดลอง อากาศอากาศหินเบา ๆน้ำในช่วงระยะเวลา acclimation .มีวัตถุประสงค์เพื่อศึกษาทางเดินหายใจด้วยการไหล respirometer เปิดระบบ และ N2 O2 ได้จัดจากกระบอกอัด ( BOC ก๊าซ แอดิเลด ออสเตรเลีย ) และส่งมอบให้กับ respirometry ห้องที่ต้องการ O2 เนื้อหา ( fio2 ) และอัตราการไหล ( 6 ; 100 , 150 หรือ 200 ml ด้วยด้วยมิน ( 1 )อัตราการไหลของแต่ละการทดลองถูกเลือกเพื่อลดการชะล้างเวลา ในขณะที่ให้การเปลี่ยนแปลงเชื่อถือได้ในเนื้อหา excurrent O2 ( feo2 ) O2 ปริมาณและอัตราการไหล ถูกควบคุมโดยตัวควบคุมการไหลของมวล ( แบบ gfc171 ; Aalborg เครื่องมือและการควบคุม , New York , NY , สหรัฐอเมริกา 0 – 1 ด้วยผมด้วยนาที– 1การจัดอันดับความถูกต้อง± 15 ml ด้วยด้วยมิน– 1 ) โดยใช้เครื่องคอมพิวเตอร์ดิจิตอลและอนาล็อกใช้ควบคุมฮาร์ดแวร์และซอฟต์แวร์ ( powerdaq และ™ pd2-ao professordaq ™ ; สหรัฐอิเล็กทรอนิกส์อุตสาหกรรม , Canton , MA , USA ) ตัวควบคุมการไหลของทำการสอบเทียบแต่ละก๊าซกับ 3.5 ลิตรคาลิเบรเตอร์ด้วย ( แบบ 1057a vol-u-meter คาลิเบรเตอร์ ; Brooks เครื่องมือ , ฮัท , PA , USA , ความถูกต้องของการสอบเทียบควบคุมได้ดีกว่า 5% ของการอ่านโดยปกติ 1 – 2% อ่าน ) เพื่อให้แน่ใจว่าชุดผสมของออกซิเจนและไนโตรเจน แก๊สเหล่านี้ผ่านลิตร 1 ด้วย งวดก่อนเข้าห้องผสม respirometer . อย่างไรก็ตาม ระดับ O2 ไม่ได้เป็นตามที่คาดไว้ในการไหลคงที่ respirometry เปิดปกติ อากาศ บรรยากาศ ดังนั้นการเปลี่ยนแปลงต้องคิดในการวิเคราะห์ ( ดูด้านล่าง ) respirometry เมื่อออกจากห้องก๊าซผ่าน u-tube ที่มี drierite ™ ( แฮมมอนด์ drierite Ltd บริษัท ซีเนีย โอ สหรัฐอเมริกา ) เพื่อเอาไอน้ำและน้ำเป็นอนุพันธ์ analyser ( fc-2 oxzilla O2 i ; ระบบ Sable อินเตอร์เนชั่นแนล ลาสเวกัส เนวาดา สหรัฐอเมริกา ) Analyser เป็นมาตรฐานโดยใช้แห้ง ( drierite ™ ) CO2 ฟรี ( ascarite ™ ; อาร์เธอร์เอช โทมัส บริษัท swedesboro , NJ , USA ) อากาศในบรรยากาศ ( 0.2095 O2 )วัด feo2 Analyser ประมาณทุก 1.25 ด้วยและใช้วิ่งห้าตัวอย่างเฉลี่ยในแต่ละจุดข้อมูล ข้อมูลที่ส่งออกจากเครื่อง O2 ได้รับพร้อมกันในแบบอนาล็อก และแบบดิจิตอล อนาล็อกเอาท์พุทเป็นบันทึกที่ 2 ด้วย s ช่วงเวลากับดิจิตอลมัลติมิเตอร์ ( แบบ tx3 True RMS wavestar ™และรุ่น 2.2 ; Tektronix , สิงคโปร์หรือสหรัฐอเมริกา ) ติดต่อกับเครื่องคอมพิวเตอร์ผ่านทาง RS232 พอร์ต ขึ้นอยู่กับการปรับแรงดันเอาต์พุตอนาล็อกเลือกค่าเหล่านี้ถูกแปลงเป็น feo2 ใช้ความสัมพันธ์โดยระบบ Sable นานาชาติ การ oxzilla ดิจิตอลเอาท์พุทได้รับจากโปรแกรม DOS Terminal ( เซริน ระบบ Sable นานาชาติ ) และบันทึกไว้ในช่วงเวลาประมาณ 1.1 ด้วย S
L . A . C . R . ขาว และ อาร์แอลตัน , ซีมัวร์
Sวารสารการทดลองชีววิทยา
2313bimodal แลกเปลี่ยนก๊าซ 1 leeri
บนเครื่องพีซีที่สองสำหรับการวิเคราะห์ wavestar ข้อมูลที่ต้องการเนื่องจากช่วงเวลาก้อไม่แน่นอน แต่ข้อมูลก้อใช้ใน 2 กรณี ที่เสียงความถี่สูงในข้อมูลอนาล็อกสัญญาณป้องกันการตรวจสอบความน่าเชื่อถือของ
ๆ