Phthalic acid esters (PAEs), known as phthalates, are a group of
plasticizers used in plastic manufacture (Fujii et al., 2003) to
increase flexibility. They are also used as solubilizing or stabilizing
agents in other applications such as building products (flooring,
furniture, and electric cables) (Butte & Heizow, 2002), personal
care and cosmetic products (deodorants, hair products and perfumes)
(Cao, 2010; Shen et al., 2007), textile industry and pesticide
formulation (Koch, Rossbach, Drexler, & Angerer, 2003). However,
they are not chemically bonded to polymers, and can easily
migrate into foods (Moskovkin, 2002). The toxicity of PAEs to
human being has been reported for a long time (Martino-andrade
& Chahoud, 2009; Okamoto, Ueda, & Kojima, 2011), and contamination
of foods has occurred in recent years (Li & Ko, 2012). Thus
research on PAE analysis in different kinds of foods and packing
materials is very important.
Gas chromatography (GC) is the most widely used method to
determine PAEs, and is always combined with mass spectrometry
(MS) (Ezˇerskis, Morkunas, Suman, & Simoneau, 2007; Nanni
et al., 2011). High performance liquid chromatography (HPLC) is
also a suitable method to determine PAEs (Li et al., 2011; Ma,
Hashi, Ji, & Lin, 2010). However, GC–MS and HPLC are veryexpensive to run, and HPLC consumes a lot of organic solvents.
Some reports showed that analysis of PAEs with HPLC would need
a long analysis time, even up to 90 min (Shi et al., 2011).
Furthermore, it is necessary to add a clean-up purification step in
pretreatment procedure when PAEs are determined by GC and
HPLC, since the matrixes in samples are easily adsorbed on the
packing, and pollute the columns. Capillary electrokinetic chromatography
(EKC) is an important separation technology for its
speed, efficiency, reproducibility, and minimal consumption of solvent.
Furthermore, there is no packing in the capillary, and the
pseudostationary phase (PSP) is fresh in each run. Thus, the sample
pretreatment is simpler in EKC than in GC or HPLC. However, EKC
is limited by lower sensitivity due to narrow path with ultraviolet
(UV) detector. In recent reports, EKC had been used to separate
PAEs (Guo, Wen, Shan, Zhang, & Lin, 2005; Ong, Lee, & Li, 1991).
However, the PAEs measured in these reports were few in number,
especially for the highly hydrophobic PAEs. The best work for PAEs
separation with EKC was reported by Pérez-fernández, González,
García, and Marina (2013). They used a running buffer containing
25 mM b-cyclodextrin and 100 mM sodium deoxycholate modified
with 10% (v/v) acetonitrile to separate 10 kinds of PAEs, dimethyl
phthalate (DMP), diethyl phthalate (DEP), diallyl phthalate (DAP),
dipropyl phthalate (DPP), dibutyl phthalate (DBP), dipentyl phthalate
(DNPP), dicyclohexyl phthalate (DCHP), benzyl butyl phthalate
(BBP), bis(2-ethylhexyl) phthalate (DEHP), di-n-octyl phthalate
(DNOP). However, the more lipophilic dinonyl phthalate (DNP)
was not involved, the baseline separation between DEHP and
DNOP could not be obtained, and the quantitative analysis of
DNOP could not be done. Because of the similar hydrophobicity,
DEHP and DNOP were retained strongly on the pseudostationary
phase (PSP). Just like in reversed phase liquid chromatography,
the weak or nonpolar analytes could not be separated by a polar
solvent eluent such as water. Highly lipophilic DEHP and DNOP
would not be separated with EKC in aqueous running buffer.
Thus, addition of weak polar organic solvent in the running buffer
would be beneficial for the elution of highly hydrophobic PAEs
from PSP. Unfortunately, the organic solvents are not allowed
above 20%, otherwise, the micelle would be destroyed. Thus, the
normal micelles as pseudostationary phase in EKC were limited
to the separation of the highly hydrophobic analytes.
Polymer surfactants were firstly used as PSP by Palmer in 1992
(Palmer, Khaled, & Mcnair, 1992; Palmer & Mcnair, 1992). Poly
(sodium undecylenate) was used as PSP in EKC to separate
hydrophobic analytes, such as, polycyclic aromatic hydrocarbons
(PAHs), with methanol and acetonitrile as organic additives. The
content of organic solvent could be added up to 45%. A typical comparison
between polymeric micelles and normal micelle was
reported by Otsuka, Wada, Ishisaka, and Terabe (2002). Poly
(sodium 10-undecylenyl sulfate) micelles could tolerate 60% acetonitrile
but SDS micelles could not when separating 11 kinds of
PAHs. Micelles formed by polymer surfactant is referred to as
molecule micelle since the micelle is formed by single molecule,
the critical micelle concentration (CMC) is essentially zero.
Additionally, the molecule micelle is steady due to the covalent
linkage among hydrophobic moieties. Thus, polymer surfactants
as PSPs have potential advantages including a much lower polymer
concentration required, ignorable variance of ionic strength and
viscosity introduced by the polymers, micelle stability in the presence
of high concentration of organic additives.
Our group have developed novel PSPs using polymeric aggregates
formed by self-assembly of random amphiphilic copolymers.
The random amphiphilic copolymer poly (methyl methacrylateco-
methacrylic acid) (P(MMA-co-MAA)) with the monomer ratio
of MMA to MAA of 7:3 was used as PSP in EKC to separate 8 kinds
of corticosteroids in cosmetics (Xu et al., 2014). Poly (stearyl
methacrylate-co-methacrylic acid) (P(SMA-co-MAA)) with the
monomer ratio of SMA to MAA of 0.5:9.5 was used as PSP to separate
11 kinds of water- and fat-soluble vitamins simultaneously
(Ni, Xing, Cao, & Cao, 2014). The advantage of polymeric aggregate
PSP is that the selectivity could be adjusted by changing the type of
hydrophobic and hydrophilic monomer, or varying the molar ratio
of the hydrophobic monomer to the hydrophilic monomer. Though
the PSP for simultaneous analysis of water- and fat-soluble vitamins
in our previous work was not suitable to separate more
hydrophobic PAEs, more lipophilic copolymer (P(SMA-co-MAA))
with the monomer ratio of SMA to MAA of 1:9 was synthesized.
The polymeric aggregate was self-assembled with selective solvent
approach, and the polymeric PSP was used in EKC to separate 15
kinds of PAEs in the present work.
Esters phthalic กรด (PAEs), เรียกว่า phthalates คือ กลุ่มของplasticizers ที่ใช้ในการผลิตพลาสติก (ฟูจิอิ et al., 2003)เพิ่มความยืดหยุ่น พวกเขายังใช้เป็น solubilizing หรือ stabilizingตัวแทนในโปรแกรมประยุกต์อื่นเช่นสร้าง (พื้น ผลิตภัณฑ์เฟอร์นิเจอร์ และสายไฟฟ้า) (Butte & Heizow, 2002), ส่วนบุคคลผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางและการดูแล (deodorants ผลิตภัณฑ์ผม และน้ำหอม)(Cao, 2010 เชิน et al., 2007), ยาฆ่าแมลงและอุตสาหกรรมสิ่งทอกำหนด (คอ Rossbach, Drexler, & Angerer, 2003) อย่างไรก็ตามพวกเขาจะไม่สารเคมีพันธะกับโพลิเมอร์ และสามารถย้ายลงในอาหาร (Moskovkin, 2002) ความเป็นพิษของ PAEs เพื่อมนุษย์มีการรายงานเป็นเวลานาน (andrade มาร์ติโน& Chahoud, 2009 Okamoto ดะ และ มะ 2011), และการปนเปื้อนของอาหารที่เกิดในปีที่ผ่านมา (Li และเกาะ 2012) ดังนั้นงานวิจัยวิเคราะห์แพในชนิดของอาหารและบรรจุภัณฑ์วัสดุเป็นสิ่งสำคัญมากก๊าซ chromatography (GC) เป็นวิธีการที่ใช้กันอย่างแพร่หลายกำหนด PAEs และพร้อมเสมอกับโตรเมทรี(MS) (Ezˇerskis หมอก unas สุมาน & Simoneau, 2007 Nanniร้อยเอ็ด al., 2011) มีประสิทธิภาพสูงของเหลว chromatography (HPLC)นอกจากนี้ยังวิธีเหมาะสมเพื่อกำหนด PAEs (Li et al., 2011 MaHashi จิ และ หลิน 2010) อย่างไรก็ตาม GC – MS และ HPLC จะ veryexpensive ทำ และ HPLC ใช้มากอินทรีย์บางรายงานพบว่า จะต้องวิเคราะห์ด้วย HPLC PAEsเวลาวิเคราะห์นาน ได้ถึง 90 นาที (Shi et al., 2011)นอกจากนี้ จำเป็นต้องเพิ่มขั้นตอนฟอกล้างในกระบวนการ pretreatment เมื่อ PAEs ถูกกำหนด โดย GC และHPLC เนื่องจาก matrixes ในตัวอย่างจะได้ adsorbed บนบรรจุ และก่อให้เกิดมลพิษคอลัมน์ เส้นเลือดฝอย electrokinetic chromatography(EKC) คือ เทคโนโลยีการคัดแยกที่สำคัญสำหรับการความเร็ว ประสิทธิภาพ reproducibility และปริมาณการใช้น้อยที่สุดของตัวทำละลายนอกจากนี้ มีไม่บรรจุในหลอดเลือดฝอย และระยะ pseudostationary (PSP) ในแต่ละรันได้ ดังนั้น ตัวอย่างpretreatment เป็นวิธีที่ง่ายกว่าใน EKC กว่าใน GC HPLC อย่างไรก็ตาม EKCถูกจำกัด โดยความไวต่ำเนื่องจากเส้นทางที่แคบด้วยรังสีอัลตราไวโอเลต(UV) จับ ในรายงานล่าสุด EKC ที่ได้ถูกใช้เพื่อแยกPAEs (กัว Wen ซาน จาง และ หลิน 2005 อ๋อง Lee, & Li, 1991)อย่างไรก็ตาม PAEs วัดในรายงานเหล่านี้ได้ไม่กี่หมายเลขโดยเฉพาะอย่างยิ่งสำหรับ PAEs hydrophobic สูง งานดีที่สุดสำหรับ PAEsรายงาน โดย Pérez fernández, González แยกกับ EKCGarcía และมารีน่า (2013) พวกเขาใช้การใช้บัฟเฟอร์ที่ประกอบด้วย25 มม. 100 มม.และบี-cyclodextrin โซเดียม deoxycholate ปรับเปลี่ยนกับ 10% (v/v) acetonitrile เพื่อแยกชนิด 10 ของ PAEs, dimethylพทาเลท (DMP), diethyl พทาเลท (DEP), diallyl พทาเลท (DAP),dipropyl พทาเลท (DPP), dibutyl พทาเลท (DBP), พทาเลท dipentyl(DNPP), dicyclohexyl พทาเลท (DCHP), benzyl พทาเลทด...(BBP), bis(2-ethylhexyl) พทาเลท (DEHP), ดีเอ็น-octyl พทาเลท(DNOP) อย่างไรก็ตาม การเพิ่มเติม lipophilic dinonyl พทาเลท (DNP)ไม่เกี่ยวข้อง แบ่งพื้นฐาน DEHP และไม่สามารถรับ DNOP และการวิเคราะห์เชิงปริมาณไม่ทำ DNOP เพราะ hydrophobicity คล้ายDEHP และ DNOP ถูกสะสมอย่างยิ่งใน pseudostationary ที่ระยะ (PSP) เหมือนในระยะกลับเหลว chromatographyไม่สามารถแยก analytes อ่อนแอ หรือ nonpolar โดยขั้วโลกeluent ตัวทำละลายเช่นน้ำ สูง lipophilic DEHP และ DNOPจะไม่สามารถแยกกับ EKC ในบัฟเฟอร์อควีทำดังนั้น เพิ่มอ่อนแอโพลาร์อินทรีย์ตัวทำละลายเป็นบัฟเฟอร์ที่ใช้จะเป็นประโยชน์ต่อการ elution ของ PAEs hydrophobic สูงจาก PSP อับ หรือสารทำละลายอินทรีย์ได้ด้านบน 20% มิฉะนั้น micelle จะถูกทำลาย ดังนั้น การmicelles ปกติเป็นระยะ pseudostationary ใน EKC ถูกจำกัดการแบ่งแยก analytes hydrophobic สูงพอลิเมอร์ surfactants ประการแรกใช้เป็น PSP โดยพาล์มเมอร์ใน 1992(พาล์มเมอร์ Khaled และ Mcnair, 1992 พาล์มเมอร์และ Mcnair, 1992) โพลี(โซเดียม undecylenate) ใช้เป็น PSP ใน EKC แยกanalytes hydrophobic เช่น polycyclic หอมสารไฮโดรคาร์บอน(PAHs), เมทานอลและ acetonitrile เป็นสารอินทรีย์ ที่เนื้อหาของตัวทำละลายอินทรีย์สามารถเพิ่มลดสูงสุดถึง 45% การเปรียบเทียบทั่วไประหว่าง micelles ชนิด micelle ที่ปกติได้รายงาน โดยโอสึกะ Wada, Ishisaka และ Terabe (2002) โพลีmicelles (โซเดียมซัลเฟต 10-undecylenyl) สามารถทน acetonitrile 60%แต่ SDS micelles อาจไม่เมื่อแยก 11 ชนิดของPAHs เกิดขึ้นจากพอลิเมอร์ surfactant micelles เรียกว่าmicelle โมเลกุลตั้งแต่ micelle จะเกิดขึ้นจากโมเลกุลเดี่ยวสมาธิสำคัญ micelle (CMC) ไม่เป็นศูนย์นอกจากนี้ micelle โมเลกุลจะมั่นคงเนื่องจาก covalentความเชื่อมโยงระหว่าง hydrophobic moieties ดังนั้น พอลิเมอร์ surfactantsPSPs มีประโยชน์อาจรวมถึงโพลิเมอร์ต่ำมากความเข้มข้นที่ต้องการ ignorable ผลต่างของความแรงของ ionic และนำ โดยโพลิเมอร์ ความหนืด micelle ความมั่นคงในการของความเข้มข้นสูงของสารอินทรีย์กลุ่มของเราได้พัฒนา PSPs นวนิยายที่ใช้วัตถุดิบเกรดชนิดรูปแบบโดยตนเอง assembly ของ copolymers amphiphilic สุ่มโพลีโคพอลิเมอร์ (methyl methacrylateco-amphiphilic สุ่มกรด methacrylic) ด้วยอัตราส่วนน้ำยา (P(MMA-co-MAA))ของ MMA การมาของ 7:3 ใช้เป็น PSP ใน EKC แยก 8 ชนิดของ corticosteroids ในเครื่องสำอาง (Xu et al., 2014) โพลี (stearylกลุ่มบริษัท methacrylic กรด) (P(SMA-co-MAA)) กับการอัตราส่วนน้ำยาของ SMA จะมา 0.5:9.5 ใช้เป็น PSP เพื่อแยกsoluble น้ำ และ fat วิตามิน 11 ชนิดพร้อมกัน(Ni ซิง โจ และ Cao, 2014) ข้อดีของการรวมพอลิเมอPSP เป็นที่สามารถปรับวิธีการ โดยการเปลี่ยนชนิดของน้ำยา hydrophobic และ hydrophilic หรือแตกต่างกันที่อัตราส่วนสบของน้ำยา hydrophobic ให้น้ำยา hydrophilic แม้ว่าPSP พร้อมวิเคราะห์ของ soluble น้ำ และ fat วิตามินในการทำงานของเราก่อนหน้านี้ไม่เหมาะกับแยกเพิ่มเติมhydrophobic PAEs เพิ่มเติม lipophilic copolymer (P(SMA-co-MAA))ด้วยน้ำยามีสังเคราะห์ของ SMA ไปมา 1:9รวมชนิดที่ตนเองประกอบ ด้วยตัวทำละลายที่ใช้วิธีการ และ PSP ชนิดถูกใช้ใน EKC แยก 15ชนิดของ PAEs ในงานนำเสนอ
การแปล กรุณารอสักครู่..
ิกแอซิดเอสเทอร์ ( Paes ) , ที่รู้จักกันเป็น พทาเลต เป็นกลุ่มของพลาสติกที่ใช้ในการผลิตพลาสติก
( ฟูจิ et al . , 2003 )
เพิ่มความยืดหยุ่น พวกเขายังใช้เป็นการศึกษาหรือคงที่
ตัวแทนในโปรแกรมอื่น ๆเช่น ผลิตภัณฑ์ก่อสร้าง ( พื้น
เฟอร์นิเจอร์ และสายไฟฟ้า ) ( บุต& heizow , 2002 ) , ผลิตภัณฑ์ดูแลส่วนบุคคล
และเครื่องสำอาง ( deodorants ,ผลิตภัณฑ์ผมและน้ำหอม )
( เคา , 2010 ; Shen et al . , 2007 ) , อุตสาหกรรมสิ่งทอและสูตรสารกำจัดศัตรูพืช
( Koch , รอสบาค เดร็กซ์เลอร์ , & งเคเรอร์ , 2003 ) อย่างไรก็ตาม , พวกเขาจะไม่ผูกมัด
เคมีโพลิเมอร์ และสามารถได้อย่างง่ายดาย
อพยพเข้ามาในอาหาร ( moskovkin , 2002 ) ความเป็นพิษของ Paes
มนุษย์ได้รับรายงานมานานแล้ว ( มาร์ติโน อันดราเด้
& chahoud , 2009 ; โอคาโมโต้ อุเอดะ &โคจิ , 2011 )และการปนเปื้อน
อาหารเกิดขึ้นในปีล่าสุด ( หลี่&เกาะ , 2012 ) ดังนั้นการวิจัยการวิเคราะห์แป๊ะ
แตกต่างกันในชนิดของอาหารและบรรจุวัสดุเป็นสิ่งสำคัญมาก
.
แก๊สโครมาโทกราฟี ( GC ) เป็นวิธีที่ใช้กันอย่างกว้างขวางมากที่สุด
ตรวจสอบ Paes และมักจะรวมกับมวลสาร
( MS ) ( ที่ˇ erskis ปฏิบัติงาน unas , ฟ้ารุ่ง ยุติธรรม , & simoneau Nanni , 2007 ;
et al . , 2011 )วิธีโครมาโทกราฟีของเหลวสมรรถนะสูง ( HPLC )
ยังวิธีการที่เหมาะสมเพื่อตรวจสอบ Paes ( Li et al . , 2011 ; แม่
Hashi , จิ , &หลิน , 2010 ) อย่างไรก็ตาม , GC และ HPLC MS และเป็น veryexpensive วิ่ง และสิ้นเปลืองมากตัวทำละลายอินทรีย์ พบว่า
รายงานการวิเคราะห์ด้วย HPLC Paes ต้องการ
การวิเคราะห์เวลานานถึง 90 นาที ( ซือ et al . , 2011 ) .
นอกจากนี้มันเป็นสิ่งที่จำเป็นเพื่อเพิ่มขั้นตอนการทำความสะอาดในขั้นตอนการบำบัด
เมื่อ Paes ถูกกำหนดโดย GC และ HPLC matrixes
เนื่องจากในตัวอย่างสามารถดูดซับบน
บรรจุและก่อให้เกิดมลพิษในคอลัมน์ เส้นเลือดฝอยในโครมาโตกราฟี
( ekc ) เป็นเทคโนโลยีการแยกสำคัญสำหรับ
ความเร็ว , ประสิทธิภาพ , ตรวจสอบ และใช้น้อยที่สุดของตัวทำละลาย
นอกจากนี้ไม่มีการบรรจุในหลอดเลือดฝอยและ
pseudostationary เฟส ( PSP ) สดในแต่ละคนวิ่ง ดังนั้นตัวอย่าง
ง่ายกว่าในการ ekc กว่า GC และ HPLC . อย่างไรก็ตาม ekc
จะถูก จำกัด โดยลดความไวเนื่องจากทางแคบกับรังสีอัลตราไวโอเลต ( ยูวี )
เครื่องตรวจจับ ในรายงานล่าสุด ekc ถูกใช้เพื่อแยก
Paes ( ก๊วย , เหวินซาน จาง &หลิน , 2005 ; อองลี & Li , 1991 ) .
อย่างไรก็ตามโดยในรายงานเหล่านี้ Paes วัดจำนวนน้อย
โดยเฉพาะอย่างยิ่งสำหรับ Paes สูง ) . งานที่ดีที่สุดสำหรับ Paes
แยก ekc ถูกรายงานโดย เฟร์นันเดซ เปเรซ , . kgm gonz lez
กาโอ การ์ซีอา และ มารีน่า ( 2013 ) พวกเขาใช้วิ่งบัฟเฟอร์ที่มี
25 มม. และ 100 มม. ชื้นดี กซีโชเลตโซเดียมดัดแปลง
10% ( v / v ) ไนแยก 10 ชนิด Paes Dimethyl
พทาเลท ( DMP ) , ,
การแปล กรุณารอสักครู่..