results on growth performance, immu

results on growth performance, immune status and intestinal
morphology of red drum (Sciaenops ocellatus) [13].
To our knowledge, despite these advances, there is no available
information on the efficacy of dietary GOS as a prebiotics for Caspian
roach. Therefore, the aim of the current study was to assess the
effects of dietary GOS on the growth performance, body composition,
stress resistance and intestinal autochthonous microbiota of
Caspian roach fry.
2. Material and methods
2.1. Fish and experimental conditions
This study was conducted at Gharesoo research station (Golestan
province, Iran). Caspian roach (Rutilus rutilus caspicus)
(n ¼ 270) with average weight of 1.36 0.03 g were supplied from
the Sijowal Caspian Sea Teleost Fish Propagation & Cultivation
Centre (Golestan Province, Iran) and specimens were randomly
stocked into nine plastic tanks (60 L) at a density of 30 fish per tank.
Water temperature, dissolved oxygen and pH were monitored daily
and maintained at 24.51 1.82 C, 7.63 0.43 mg L1
, 7.33 0.10,
respectively. Treatments were investigated under static aerated
water conditions with a 50% water change every day. Continuous
aeration was provided to each tank through an air stone connected
to a central air compressor. During the experimental trial (7 weeks)
fish were hand-fed to apparent satiation twice daily (09:00 and
15:00). Uneaten feed was collected 1 h after feeding and dried at
60 C [3].
2.2. Prebiotic
The source of galactooligosaccharide (GOS) was Vivinal-GOS,
kindly provided by Friesland Foods Domo Company (Zwolle, The
Netherlands). This product is rich in galacto-oligosaccarides was
obtained through the enzymatic conversion of lactose, a disaccharide
that mainly consists of galactose and glucose molecules.
2.3. Preparation of diets
Different levels of prebiotic GOS (0, control or nonsupplemented
diet, 1% and 2%) were incorporated in a basal diet
formulated for Caspian roach fry (Table 1). All the ingredients were
blended thoroughly in a mixer, made pellets, air-dried, ground and
sieved to produce a suitable crumble (ca. 500 mm) and stored in
plastic bags at 2 C for further use.
2.4. Growth performance
All fish were weighed at the end of 7-week feeding trial for
estimation of growth. Growth performance and survival rate of
Caspian roachs was calculated using following formula:
Weight gain ¼ W2 W1; specific growth rate (SGR) ¼ 100
[ln W2 ln W1]/T, condition factor (CF) ¼ 100 (body weight; g)/
(body length; cm)3
; feed conversion ratio (FCR) ¼ FO/WG. W1 is
initial weight (g), W2 is final weight (g), T is time (days), FO is feed
offered (g) and WG is weight gain (g). In addition, survival rate was
calculated at the end of the experiment: survival ¼ (Nf/N0) 100;
where N0 is initial number of fish and Nf is final number of fish.
2.5. Chemical analysis of diets and fish carcasses
Chemical analyses of diets and fish were determined according
to standard AOAC [14] methodology. Gross energy was calculated
using the conversion factors of 23.6, 39.5, and 17.0 kJ g1 for protein,
lipid, and nitrogen-free extract (NFE), respectively [15].
2.6. Intestinal microbiota analysis
Total viable heterotrophic aerobic bacteria and lactic acid bacteria
(LAB) levels were determined at the start of trial by random
sampling of 15 fish before stocking. At the end of the experiment 3
fish per tank (9 per treatment) were randomly sampled for
microbiological studies. Intestines were processed on an individual
basis (i.e. they were not pooled). Sample preparation for intestinal
microbiota analysis was performed as described previously [16].
Hundred microliters of the homogenate intestines were spreader in
triplicate onto plate count agar (PCA) (Merck, Germany) and
deMan, Rogosa and Sharpe (MRS) agar media (Merck, Germany) for
the determination of total viable heterotrophic aerobic bacteria and
lactic acid bacteria, respectively. Plates were incubated at room
temperature (25 C) for 5 days [17] and colony forming units (CFU)
g1 were calculated from statistically viable plates (i.e. plates containing
30e300 colonies) [18].
2.7. Salinity stress challenge
Salinity stress challenge was carried out at the end of the trial as
described previously by Soleimani et al. [3]. Fifteen fish were
sampled from each tank and subjected to salinity stress challenge.
For this aim sampled fry were exposed to brackish water (15 g L1
salinity) in triplicate (i.e. 15 fish per tank). The survival rate of
Caspian roach was calculated at 72 h post challenge [3].
2.8. Statistical analysis
All the data are presented as mean values SE in figures. Oneway
analysis of variance (ANOVA) followed by Duncan’s multiple
range tests was used for data analysis [19]. Mean values were
considered significantly different at P < 0.05. Statistical analyses
Table 1
Dietary formulations (%) and proximate composition.
Ingredient Experimental diets
Control 1% GOS 2% GOS
Fish meal 40.0 39.8 39.7
Wheat flour 21.0 20.8 20.5
Soybean meal 13.5 13.4

results on growth performance, immune status and intestinal
morphology of red drum (Sciaenops ocellatus) [13].
To our knowledge, despite these advances, there is no available
information on the efficacy of dietary GOS as a prebiotics for Caspian
roach. Therefore, the aim of the current study was to assess the
effects of dietary GOS on the growth performance, body composition,
stress resistance and intestinal autochthonous microbiota of
Caspian roach fry.
2. Material and methods
2.1. Fish and experimental conditions
This study was conducted at Gharesoo research station (Golestan
province, Iran). Caspian roach (Rutilus rutilus caspicus)
(n ¼ 270) with average weight of 1.36  0.03 g were supplied from
the Sijowal Caspian Sea Teleost Fish Propagation & Cultivation
Centre (Golestan Province, Iran) and specimens were randomly
stocked into nine plastic tanks (60 L) at a density of 30 fish per tank.
Water temperature, dissolved oxygen and pH were monitored daily
and maintained at 24.51  1.82 C, 7.63  0.43 mg L1
, 7.33  0.10,
respectively. Treatments were investigated under static aerated
water conditions with a 50% water change every day. Continuous
aeration was provided to each tank through an air stone connected
to a central air compressor. During the experimental trial (7 weeks)
fish were hand-fed to apparent satiation twice daily (09:00 and
15:00). Uneaten feed was collected 1 h after feeding and dried at
60 C [3].
2.2. Prebiotic
The source of galactooligosaccharide (GOS) was Vivinal-GOS,
kindly provided by Friesland Foods Domo Company (Zwolle, The
Netherlands). This product is rich in galacto-oligosaccarides was
obtained through the enzymatic conversion of lactose, a disaccharide
that mainly consists of galactose and glucose molecules.
2.3. Preparation of diets
Different levels of prebiotic GOS (0, control or nonsupplemented
diet, 1% and 2%) were incorporated in a basal diet
formulated for Caspian roach fry (Table 1). All the ingredients were
blended thoroughly in a mixer, made pellets, air-dried, ground and
sieved to produce a suitable crumble (ca. 500 mm) and stored in
plastic bags at 2 C for further use.
2.4. Growth performance
All fish were weighed at the end of 7-week feeding trial for
estimation of growth. Growth performance and survival rate of
Caspian roachs was calculated using following formula:
Weight gain ¼ W2  W1; specific growth rate (SGR) ¼ 100
[ln W2  ln W1]/T, condition factor (CF) ¼ 100 (body weight; g)/
(body length; cm)3
; feed conversion ratio (FCR) ¼ FO/WG. W1 is
initial weight (g), W2 is final weight (g), T is time (days), FO is feed
offered (g) and WG is weight gain (g). In addition, survival rate was
calculated at the end of the experiment: survival ¼ (Nf/N0) 100;
where N0 is initial number of fish and Nf is final number of fish.
2.5. Chemical analysis of diets and fish carcasses
Chemical analyses of diets and fish were determined according
to standard AOAC [14] methodology. Gross energy was calculated
using the conversion factors of 23.6, 39.5, and 17.0 kJ g1 for protein,
lipid, and nitrogen-free extract (NFE), respectively [15].
2.6. Intestinal microbiota analysis
Total viable heterotrophic aerobic bacteria and lactic acid bacteria
(LAB) levels were determined at the start of trial by random
sampling of 15 fish before stocking. At the end of the experiment 3
fish per tank (9 per treatment) were randomly sampled for
microbiological studies. Intestines were processed on an individual
basis (i.e. they were not pooled). Sample preparation for intestinal
microbiota analysis was performed as described previously [16].
Hundred microliters of the homogenate intestines were spreader in
triplicate onto plate count agar (PCA) (Merck, Germany) and
deMan, Rogosa and Sharpe (MRS) agar media (Merck, Germany) for
the determination of total viable heterotrophic aerobic bacteria and
lactic acid bacteria, respectively. Plates were incubated at room
temperature (25 C) for 5 days [17] and colony forming units (CFU)
g1 were calculated from statistically viable plates (i.e. plates containing
30e300 colonies) [18].
2.7. Salinity stress challenge
Salinity stress challenge was carried out at the end of the trial as
described previously by Soleimani et al. [3]. Fifteen fish were
sampled from each tank and subjected to salinity stress challenge.
For this aim sampled fry were exposed to brackish water (15 g L1
salinity) in triplicate (i.e. 15 fish per tank). The survival rate of
Caspian roach was calculated at 72 h post challenge [3].
2.8. Statistical analysis
All the data are presented as mean values  SE in figures. Oneway
analysis of variance (ANOVA) followed by Duncan’s multiple
range tests was used for data analysis [19]. Mean values were
considered significantly different at P < 0.05. Statistical analyses
Table 1
Dietary formulations (%) and proximate composition.
Ingredient Experimental diets
Control 1% GOS 2% GOS
Fish meal 40.0 39.8 39.7
Wheat flour 21.0 20.8 20.5
Soybean meal 13.5 13.4

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

ผลในการเจริญเติบโต สถานภาพภูมิคุ้มกัน และลำไส้สัณฐานวิทยาของกลองสีแดง (Sciaenops ocellatus) [13]ความรู้ของเรา แม้มีความก้าวหน้า มีไม่ข้อมูลประสิทธิภาพของ GOS อาหารเป็น prebiotics เป็นแคสเปียนฝูง ดังนั้น จุดมุ่งหมายของการศึกษาปัจจุบันคือการ ประเมินการผลกระทบของ GOS อาหารในการเจริญเติบโต สัดส่วนความต้านทานความเครียดและ microbiota ลำไส้ autochthonous ของแคสเปียนแมลงทอด2. วัสดุและวิธีการ2.1. ปลา และเงื่อนไขการทดลองดำเนินการวิจัยนี้ที่สถานีวิจัย Gharesoo (Golestanจังหวัด อิหร่าน) ฝูงแคสเปียน (Rutilus rutilus caspicus)(n ¼ 270) มีน้ำหนักเฉลี่ย 1.36 0.03 กรัมได้มาจากTeleost ทะเลแคสเปียน Sijowal ปลาขยายพันธุ์และเพาะปลูกศูนย์ (Golestan จังหวัด อิหร่าน) และตัวอย่างที่ถูกสุ่มพร้อมเครื่องดื่มลงในถังพลาสติกเก้า (60 ลิตร) ที่มีความหนาแน่นของปลา 30 ต่อถังอุณหภูมิของน้ำ ค่าออกซิเจน และค่า pH ถูกตรวจสอบทุกวันและบำรุงรักษาที่ 1.82 24.51 C, 7.63 0.43 มิลลิกรัม L 1, 7.33 0.10ตามลาดับ รักษาถูกสอบสวนภายใต้อากาศไฟฟ้าสถิตน้ำด้วยการเปลี่ยนน้ำ 50% ทุกวัน อย่างต่อเนื่องเติมอากาศคือให้เชื่อมต่อยังถังหินอากาศการคอมเพรสเซอร์กลางอากาศ ในระหว่างการทดลองใช้ทดลอง (7 สัปดาห์)ปลาถูกมือติดตามชัดเจน satiation วันละสองครั้ง (09:00 น. และ15:00) . อาหาร uneaten เก็บ 1 ชั่วโมงหลังจากให้อาหาร และแห้งที่60 C [3]2.2. prebioticแหล่งที่มาของ galactooligosaccharide (GOS) คือ Vivinal-GOSกรุณาให้ โดย บริษัทชูอาหารจังหวัดฟรีสลันด์ (ซโวลเลอ การเนเธอร์แลนด์) นี้เป็นผลิตภัณฑ์ที่มีในวคลิ oligosaccarides ถูกได้ผ่านการแปลงเอนไซม์แลคโตส ไดแซ็กคาไรด์ที่ส่วนใหญ่ประกอบด้วยโมเลกุลของกลูโคสและกาแล็กโทส2.3. การเตรียมอาหารระดับต่าง ๆ ของ prebiotic GOS (0 ควบคุม หรือ nonsupplementedอาหาร 1% และ 2%) ถูกรวมในอาหารพื้นฐานสูตรสำหรับทอดฝูงแคสเปียน (ตาราง 1) ส่วนผสมทั้งหมดผสมในเครื่องผสม อัดเม็ด ทำให้สะอาด air-dried พื้นดิน และแหลกลาญสลายเหมาะผลิต (ca. 500 มม.) และเก็บไว้ในถุงพลาสติกที่ C 2 สำหรับใช้เพิ่มเติม2.4. การเจริญเติบโตได้น้ำหนักปลาทั้งหมดเมื่อสิ้นสุดการทดลองให้อาหารตั้งแต่วันที่ 7การประเมินการเจริญเติบโต ประสิทธิภาพและความอยู่รอดเติบโตRoachs แคสเปียนถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไป:น้ำหนัก W2 W1 ¼ อัตราการเติบโตเฉพาะแสดง (สรุป) ¼ 100[ln ln W2 W1] / T เงื่อนไขปัจจัย (CF) ¼ 100 (น้ำหนัก g) /(ความยาว cm) 3; อาหารอัตรา (FCR) ¼ FO/WG W1 คือน้ำหนักเริ่มต้น (g), W2 คือ น้ำหนักสุดท้าย (g), T คือเวลา (วัน) FO คือฟีดนำเสนอ (g) และ WG เป็นน้ำหนัก (กรัม) นอกจากนี้ มีอัตราการอยู่รอดคำนวณของการทดสอบ: รอด¼ (Nf/N0) 100หมายเลขเริ่มต้นของปลาและ Nf N0 คือ จำนวนปลา2.5. เคมีวิเคราะห์ของซากปลาและอาหารการวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารและปลากำหนดตามกับวิธีมาตรฐาน AOAC [14] คำนวณพลังงานรวมโดยใช้ตัวแปลง 23.6, 39.5 และ 17.0 kJ g 1 โปรตีนไขมัน และสารสกัดที่ใช้ไนโตรเจนฟรี (NFE), ตามลำดับ [15]2.6. ลำไส้จุลินทรีย์วิเคราะห์รวมวางอนาคต heterotrophic แท็งก์และแบคทีเรียกรดแลคติกำหนดระดับ (แล็บ) เมื่อเริ่มต้นทดลอง โดยการสุ่มสุ่มตัวอย่างปลา 15 ก่อนถุง เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 3ปลาต่อถัง (9 ต่อการรักษา) ถูกสุ่มตัวอย่างการศึกษาทางจุลชีววิทยา ลำไส้ถูกประมวลผลในแต่ละพื้นฐาน (เช่นพวกเขาถูกไม่พู) ตัวอย่างการเตรียมการสำหรับลำไส้จุลินทรีย์วิเคราะห์ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [16]Microliters ร้อยของลำไส้ homogenate มีกระจายในตสแควร์ลงบนอาหารเหลว (PCA) (Merck เยอรมัน) และdeMan, Rogosa และ Sharpe (MRS) วุ้นสื่อ (Merck เยอรมัน) สำหรับความมุ่งมั่นของเชื้อแบคทีเรียแอโรบิก heterotrophic ทำงานได้ทั้งหมด และแบคทีเรียกรดแลคติก ตามลำดับ แผ่นได้รับการกกที่ห้องอุณหภูมิ (25 C) 5 วัน [17] และอาณานิคมสร้างหน่วย (CFU)g 1 คำนวณจากแผ่นเป็นไปได้ทางสถิติ (เช่นแผ่นที่ประกอบด้วยอาณานิคม 30e300) [18]2.7. ท้าทายความเครียดความเค็มท้าทายความเครียดความเค็มได้ดำเนินการเมื่อสิ้นสุดการทดลองเป็นอธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดย Soleimani et al. [3] ปลาสิบห้ามีตัวอย่างจากแต่ละถัง และขึ้นอยู่กับความท้าทายความเครียดความเค็มสำหรับจุดมุ่งหมายนี้ ทอดตัวอย่างได้สัมผัสกับน้ำกร่อย (15 g L 1ความเค็ม) ลข้อ (เช่น 15 ปลาต่อถัง) อัตราการอยู่รอดของฝูงแคสเปียนถูกคำนวณที่ 72 h โพสต์ท้าทาย [3]2.8. สถิติวิเคราะห์ข้อมูลทั้งหมดจะแสดงค่าเฉลี่ยเป็น SE ในตัวเลข ตั๋วเที่ยวเดียวการวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) ตาม ด้วยดันแคนของหลายช่วงการทดสอบใช้สำหรับการวิเคราะห์ข้อมูล [19] ค่าเฉลี่ยได้ถือว่าแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญที่ P < 0.05 วิเคราะห์ทางสถิติตารางที่ 1สูตรอาหาร (%) และองค์ประกอบของธนบุรีส่วนผสมอาหารทดลองควบคุม 1% GOS 2% GOSปลาอาหาร 40.0 39.8 39.7ข้าวสาลีแป้ง 21.0 20.8 20.5กากถั่วเหลือง 13.5 13.4

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

ผลต่อการเจริญเติบโตสถานะภูมิคุ้มกันและลำไส้
สัณฐานวิทยาของสีแดงกลอง (Sciaenops ocellatus) [13]
ความรู้ของเราแม้จะมีความก้าวหน้าเหล่านี้มีไม่มี
ข้อมูลเกี่ยวกับประสิทธิภาพของการบริโภคอาหาร GOS เป็น prebiotics สำหรับแคสเปี้ยที่
แมลงสาบ ดังนั้นจุดมุ่งหมายของการศึกษาในปัจจุบันคือการประเมิน
ผลกระทบของการบริโภคอาหาร GOS เกี่ยวกับประสิทธิภาพของการเจริญเติบโตของร่างกาย,
ความต้านทานต่อความเครียดและ microbiota autochthonous ลำไส้ของ
แคสเปี้ยทอดแมลงสาบ
2. วัสดุและวิธีการ
2.1 ปลาและการทดลองเงื่อนไข
การศึกษาครั้งนี้ได้ดำเนินการที่สถานีวิจัย Gharesoo (Golestan
จังหวัดอิหร่าน) แคสเปี้ยแมลงสาบ (Rutilus Rutilus caspicus)
(n ¼ 270) ที่มีน้ำหนักเฉลี่ย 1.36? 0
03 กรัมจากอุปกรณ์ Sijowal ทะเลสาบแคสเปียน teleost ปลาการขยายพันธุ์และการเพาะปลูก
Centre (Golestan จังหวัดอิหร่าน) และตัวอย่างที่สุ่ม
เก็บรักษาในถังพลาสติกเก้า (60 ลิตร) ความหนาแน่นของปลา 30 ต่อถัง
อุณหภูมิของน้ำ, ออกซิเจนละลายและถูกตรวจสอบความเป็นกรดด่างในชีวิตประจำวัน
และการบำรุงรักษาที่ 24.51? 1.82? C, 7.63? 0.43 มิลลิกรัมต่อลิตร 1
, 7.33? 0.10
ตามลำดับ การรักษาที่ได้รับการตรวจสอบภายใต้มวลเบาคง
สภาพน้ำที่มีการเปลี่ยนน้ำ 50% ทุกวัน อย่างต่อเนื่อง
การเติมอากาศให้กับแต่ละถังผ่านหินอากาศที่เชื่อมต่อ
กับเครื่องอัดอากาศกลาง ในระหว่างการทดลองการทดลอง (7 สัปดาห์)
ปลามือเลี้ยงป้อยอชัดเจนวันละสองครั้ง (เวลา 09:00 น
15:00)
สำหรับอาหารที่เหลือถูกเก็บรวบรวม 1 ชั่วโมงหลังจากให้อาหารและการอบที่ 60 องศาเซลเซียส [3]
2.2 prebiotic
แหล่งที่มาของ Galactooligosaccharide (GOS) เป็น Vivinal-GOS,
ให้ความกรุณาโดยอาหาร Friesland Domo บริษัท (ซโวลเลอ, The
เนเธอร์แลนด์) ผลิตภัณฑ์นี้เป็นที่อุดมไปด้วย Galacto-oligosaccarides ถูก
ที่ได้รับผ่านการแปลงเอนไซม์แลคโตสไดแซ็กคาไรด์
ที่ส่วนใหญ่ประกอบด้วยกาแลคโตและกลูโคสโมเลกุล
2.3 การเตรียมอาหาร
ในระดับที่แตกต่างกันของ prebiotic GOS (0 ควบคุมหรือ nonsupplemented
อาหาร, 1% และ 2%) เป็นนิติบุคคลที่จัดตั้งขึ้นในอาหารพื้นฐาน
สูตรสำหรับทอดแคสเปี้ยแมลงสาบ (ตารางที่ 1) ส่วนผสมทั้งหมดถูก
ปั่นให้ละเอียดในเครื่องผสมที่ทำเม็ดอากาศแห้งพื้นดินและ
ร่อนในการผลิตที่เหมาะสมสลาย (แคลิฟอร์เนีย
500 มิลลิเมตร) และเก็บไว้ใน ถุงพลาสติกที่? 2? C สำหรับการใช้งานต่อไป
2.4 การเจริญเติบโต
ของปลาทั้งหมดถูกชั่งน้ำหนักในตอนท้ายของการทดลองให้อาหาร 7 สัปดาห์สำหรับ
การประมาณค่าของการเจริญเติบโต การเจริญเติบโตและอัตราการรอดตายของ
roachs แคสเปี้ยคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้:
น้ำหนักตัวเพิ่มขึ้น¼ W2? W1; อัตราการเจริญเติบโตที่เฉพาะเจาะจง (SGR) ¼ 100
[LN W2? LN W1] / T, ปัจจัยสภาพ (CF) ¼ 100 (น้ำหนักตัว; G) /
(ความยาวลำตัว; ซม.) 3
; อัตราการเปลี่ยนอาหาร (FCR) ¼ FO / WG W1 เป็น
น้ำหนักเริ่มต้น (g), W2 มีน้ำหนักสุดท้าย (g), T คือเวลา (วัน), FO ฟีด
ที่นำเสนอ (g) และ WG คือการเพิ่มน้ำหนัก (g) นอกจากนี้อัตราการรอดตายได้รับการ
คำนวณในตอนท้ายของการทดสอบ: ความอยู่รอด¼ (Nf / N0) 100;
ที่ N0 เป็นจำนวนเริ่มต้นของปลาและ Nf เป็นจำนวนสุดท้ายของปลา
2.5 การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารและซากปลา
วิเคราะห์ของอาหารเคมีและปลาได้รับการพิจารณาตาม
มาตรฐาน AOAC [14] วิธีการ พลังงานขั้นต้นที่คำนวณ
โดยใช้ปัจจัยการแปลงของ 23.6, 39.5 และ 17.0 กิโลจูล G? 1 สำหรับโปรตีน
ไขมันและไนโตรเจนฟรีสารสกัดจาก (กศน) ตามลำดับ [15]
2.6 วิเคราะห์ microbiota ลำไส้
รวมทำงานได้แบคทีเรีย heterotrophic และแบคทีเรียกรดแลคติก
(LAB) ระดับได้รับการพิจารณาในช่วงเริ่มต้นของการทดลองโดยการสุ่ม
เก็บตัวอย่างปลา 15 ก่อนที่ถุงน่อง ในตอนท้ายของการทดลองที่ 3
ปลาต่อถัง (9 ต่อการรักษา) สุ่มสำหรับ
การศึกษาทางจุลชีววิทยา
ลำไส้ถูกประมวลผลบนบุคคล พื้นฐาน (เช่นพวกเขาไม่ได้สำรอง) การเตรียมตัวสำหรับลำไส้
วิเคราะห์ microbiota ได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [16]
ร้อยไมโครลิตรของลำไส้ homogenate เป็น Spreader ใน
เพิ่มขึ้นสามเท่าบนนับจานเลี้ยงเชื้อ (PCA) (เมอร์ค, เยอรมนี) และ
Deman, Rogosa และชาร์ป (MRS) สื่อวุ้น (เมอร์ค, เยอรมนี) สำหรับ
ความมุ่งมั่นของแบคทีเรียแอโรบิกรวมทำงานได้ heterotrophic และ
กรดแลคติก เชื้อแบคทีเรียตามลำดับ แผ่นถูกบ่มที่ห้อง
อุณหภูมิ (25 องศาเซลเซียส) เป็นเวลา 5 วัน [17] และอดีตอาณานิคมหน่วย (CFU)
G? 1 จะถูกคำนวณจากแผ่นที่มีศักยภาพทางสถิติ (แผ่น IE มี
30e300 อาณานิคม) [18]
2.7
ความเครียดความเค็มความท้าทาย ความท้าทายความเครียดความเค็มได้ดำเนินการในตอนท้ายของการพิจารณาคดีตามที่
อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดย Soleimani et al, [3] สิบห้าปลา
ตัวอย่างจากแต่ละถังและภายใต้ความท้าทายความเครียดความเค็ม
สำหรับจุดมุ่งหมายนี้ทอดชิมได้สัมผัสกับน้ำกร่อย (15 กรัม L? 1
เค็ม) ในเพิ่มขึ้นสามเท่า (เช่นปลา 15 ต่อถัง) อัตราการรอดตายของ
แคสเปี้ยแมลงสาบที่คำนวณได้ใน 72 ชั่วโมงโพสต์ความท้าทาย [3]
2.8 การวิเคราะห์สถิติ
ข้อมูลทั้งหมดจะถูกนำเสนอเป็นค่าเฉลี่ย? SE ในตัวเลข ชั้นประหยัด
การวิเคราะห์ความแปรปรวน (ANOVA) ตามด้วยของดันแคนหลาย
การทดสอบช่วงถูกนำมาใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูล [19] ค่าเฉลี่ยที่ได้รับ
การพิจารณาที่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญที่ P <0.05
สถิติการวิเคราะห์ ตารางที่ 1
สูตรอาหาร (%) และองค์ประกอบใกล้เคียง
ส่วนผสมอาหารทดลอง
ควบคุม 1% GOS 2% GOS
ปลาป่น 40.0 39.8 39.7
แป้งสาลี 21.0 20.8 20.5
กากถั่วเหลือง 13.5 13.4

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

ผลต่อการเจริญเติบโต และภาวะภูมิคุ้มกันของลำไส้ลักษณะของกลองสีแดง ( sciaenops ocellatus ) [ 13 ]เพื่อความรู้ของเรา แม้ความก้าวหน้าเหล่านี้ ไม่มีข้อมูลเกี่ยวกับประสิทธิภาพของอาหารไปเป็นพรีไบโอติกสำหรับแคสเปียนแมลงสาบ ดังนั้น จุดมุ่งหมายของการศึกษาในปัจจุบันคือเพื่อประเมินผลของอาหารไปในประสิทธิภาพการเจริญเติบโต , องค์ประกอบของร่างกายความเครียดและความต้านทาน autochthonous ไมโครไบโ ้าของลำไส้แคสเปี้ยนแมลงสาบทอด2 . วัสดุและวิธีการ2.1 . ปลาและเงื่อนไขการทดลองการศึกษานี้ดำเนินการที่สถานีวิจัย gharesoo ( iran . kgmจังหวัด , อิหร่าน ) แคสเปียน โรช ( รูทิลัสรูทิลัส caspicus )( n ¼ 270 ) มีน้ำหนักเฉลี่ย 1.36 0.03 กรัม คือมาจากการ sijowal ทะเลแคสเปียน teleost ปลาขยายพันธุ์และการพัฒนาศูนย์ ( จังหวัด , อิหร่าน ) และทำการสุ่มเลี้ยงในเก้าถังพลาสติก ( 60 ลิตร ) ในอัตราความหนาแน่น 30 ตัว ต่อถังอุณหภูมิน้ำ ออกซิเจน และค่า pH ที่ละลาย ถูกทุกวันและการรักษาที่ 24.51 1.82 7.63 0.43 mg L1 C7.33 0.10 ,ตามลำดับ การรักษา คือ ภายใต้อากาศคงที่สภาพน้ำเปลี่ยนน้ำ 50% ทุกวัน อย่างต่อเนื่องการเติมอากาศให้แก่แต่ละถังผ่านอากาศหินเชื่อมต่อเป็นปั๊มลมเซ็นทรัล ในระหว่างการทดลอง ( 7 สัปดาห์ )มือเลี้ยงปลาชัดเจนอย่างเต็มที่วันละ 2 ครั้ง ( 09 : 00 และ15 : 00 ) uneaten ฟีดรวบรวม 1 ชั่วโมงหลังการให้อาหารและอบแห้งที่60 C [ 3 ]2.2 . พรีไบโอติกแหล่งที่มาของ galactooligosaccharide ( QoS ) คือ vivinal รัฐกรุณาให้บริการโดย บริษัท ฟรีสแลนด์ ฟู้ด ( Domo Zwolle ,เนเธอร์แลนด์ ) ผลิตภัณฑ์นี้เป็นผลิตภัณฑ์ที่อุดมไปด้วย galacto oligosaccarides คือได้ผ่านการแปลงเอนไซม์ของแลคโตส , เว็บไซต์ที่ประกอบด้วยส่วนใหญ่ของกาแลกโตสและโมเลกุลของกลูโคส2.3 การเตรียมอาหารระดับที่แตกต่างกันของพรีไบโอติก ( 0 , ควบคุมหรือ nonsupplemented โกอาหาร , 1% และ 2% ) ผสมในสูตรอาหารพื้นฐานสูตรสำหรับแคสเปียนแมลงสาบทอด ( ตารางที่ 1 ) ส่วนผสมทั้งหมดคือการผสมอย่างทั่วถึงในเครื่องทำอากาศแห้ง บดและอัดเม็ดขนาดการผลิตที่เหมาะสมสลาย ( ประมาณ 500 มม. ) และเก็บไว้ในถุงพลาสติกที่ 2 C สำหรับการใช้งานต่อไป2.4 . สมรรถนะการเจริญเติบโตทั้งหมดปลาและน้ำหนักที่ปลาย 7-week ให้อาหารทดลองสำหรับการประเมินการเจริญเติบโต การเจริญเติบโตและอัตราการรอดของแคสเปียน roachs ถูกคำนวณโดยใช้สูตรต่อไปนี้ :น้ำหนัก¼ W1 W1 ; อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ ( SGR ) ¼ 100[ LN ] / T W1 W2 ใน ปัจจัยเงื่อนไข ( CF ) ¼ 100 ( น้ำหนัก ร่างกายกรัม )( ความยาว ; ร่างกาย 3 ซม. ); อัตราส่วนการแปลงอาหาร ( FCR ) ¼โฟ / WG . การทดลองน้ำหนัก ( กรัม ) , W2 คือน้ำหนักสุดท้าย ( G ) t คือเวลา ( วัน ) สำหรับเป็นอาหารสัตว์เสนอ ( G ) และ WG เป็นเพิ่มน้ำหนัก ( กรัม ) นอกจากนี้ อัตราการอยู่รอด คือคำนวณเมื่อสิ้นสุดการทดลอง : ¼การอยู่รอด ( NF / NO ) 100ที่ 30 หมายเลขเริ่มต้นของปลาและ NF หมายเลขสุดท้ายของปลา2.5 การวิเคราะห์ทางเคมีของอาหาร และซากปลาการวิเคราะห์ทางเคมีของอาหารและปลาได้รับการพิจารณาตามมาตรฐานไม่ [ 14 ] ต่อไป พลังงานทั้งหมดถูกคำนวณการใช้ปัจจัยการแปลง 23.6 39.5 และ 17.0 จูล , G1 สำหรับโปรตีนไขมัน และสารไนโตรเจนฟรี ( NFE ) ตามลำดับ [ 15 ]2.6 การวิเคราะห์ไมโครไบโ ้าในทั้งหมดที่ทำงานแบบแอโรบิคแบคทีเรีย และแบคทีเรียกรดแลกติก( Lab ) เป็นระดับที่เริ่มทดลองโดยการสุ่มจำนวน 15 ปลาก่อนถุงน่อง เมื่อสิ้นสุดการทดลอง 3ปลาต่อถัง ( 9 ) การรักษา ) โดยมีวัตถุประสงค์จุลชีววิทยาศึกษา ลำไส้ที่ถูกประมวลผลในแต่ละคนพื้นฐาน ( เช่นที่พวกเขาไม่ได้รวม ) การเตรียมตัวอย่างสำหรับไส้การวิเคราะห์ไมโครไบโ ้าได้ดำเนินการตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [ 16 ]ร้อยตัวเลขของปริมาณกระจายในลำไส้ทำสำเนาสามฉบับลง Planetmath reference ( PCA ) ( Merck , เยอรมนี ) และดีเมิน rogosa ชาร์ป ( นาง ) , และอาหารวุ้น ( Merck , เยอรมัน )การรวมแบบแอโรบิคแบคทีเรียได้แบคทีเรียกรดแล็กติก ตามลำดับ แผ่นอุณหภูมิห้องอุณหภูมิ ( 25 องศาเซลเซียส ) เป็นเวลา 5 วัน [ 17 ] และอาณานิคมสร้างหน่วย ( CFU )คำนวณจากสถิติต่ำกว่า ( เช่นใช้แผ่นจานที่มี30e300 อาณานิคม ) [ 18 ]2.7 . ความเค็มความท้าทายความเค็มความท้าทายการทดลองที่สิ้นสุดของการทดลองเป็นที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ โดย soleimani et al . [ 3 ] 15 กลุ่มปลาตัวอย่างจากแต่ละถังและภายใต้ความเครียดและความท้าทายสำหรับจุดมุ่งหมายนี้ตัวอย่างลูกปลาสัมผัสน้ำกร่อย L1 ( 15 ก.ความเค็ม ) ทั้งสามใบ ( เช่น 15 ตัว ต่อถัง ) อัตราการอยู่รอดของแคสเปียน แมลงสาบถูกคำนวณที่เวลา 72 ชั่วโมง โพสต์ความท้าทาย [ 3 ]2.8 . สถิติที่ใช้ในการวิเคราะห์ข้อมูลข้อมูลทั้งหมดจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ยความเร็วในตัวเลข วันเวย์การวิเคราะห์ความแปรปรวน ( ANOVA ) โดยดันแคนหลายการทดสอบช่วงวิเคราะห์ข้อมูล [ 19 ] หมายถึงค่าถือว่า แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติที่ p < 0.05 การวิเคราะห์ทางสถิติตารางที่ 1อาหารสูตร ( % ) และวิเคราะห์องค์ประกอบสูตรอาหารทดลองควบคุม 1% 2% โกโกปลาป่น พบเลี้ยง 39.7แป้งสาลี 21.0 20.8 20.5กากถั่วเหลือง 13.5 ส์

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.