2.3. Quantitative estimation of pho

2.3. Quantitative estimation of phosphate solubilization
and pH changes
Bacterial cultures were inoculated in 100 ml Pikovskaya's broth
medium in 250 ml of Erlenmeyerflasks and incubated at 28721Cfor
2 and 5 days in rotary shaker at 120 rpm. Triplicates were maintained
for each treatment. After incubation the bacterial cultures werefiltered
through Whatman no.1filter paper and were clarified by centrifugation at 10,000 rpm for 15 min. Uninoculated broth served as control.
After that pH of thefiltrate was recorded with a digital pH meter and
amount of soluble phosphate was measured by a Molybdenum blue
method (Strickland and Parsons, 1972). Potassium di-hydrogen phosphate was used as standard. The intensity of blue color was measured
by an UV–vis spectrophotometer at 690 nm.
2.4. Biochemical characterization
Biochemical characteristics of the purified isolates like Gram
reaction, catalase reactions, methyl red, Voges–Proskauer test
(Cappuccino and Sherman, 1992; Aneja, 2003), ammonia production (Dye, 1962), IAA productions (Sarwar et al., 1992), siderophore
production (Alexander and Zuberer, 1991), and HCN production
(Bakker and Schippers, 1987) were determined following the
standard procedures.
2.5. Amplification of 16S rDNA genes by polymerase chain
reaction (PCR)
Universal primer was used for the amplification of 16S rDNA
gene in all bacterial isolate. This primer was custom synthesized by
Bangalore Genei, Bangalore, India. The 50μlofreactionmixture
consisted of 50 ng of genomic DNA, 2.5 U of Taq polymerase, 5μlof
10buffer (100 mM Tris–HCl, 500 mM KCl pH 8.3), 200μMdNTP,
1.5 mM MgCl2and 10 pmoles of each primer. The forward primer
27 F (5
0
-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3
0
) and reverse primer 1492 R
(5
0
-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3
0
)wereused(Narde et al., 2004).
Amplification was performed under the following PCR (PCR System
2720, Applied Biosystems, Singapore) conditions: initial denaturation at 941C for 5 min, followed by 34 cycles of denaturation at
941C for 1 min, annealing at 521C for 1.5 min, extension at 721Cfor
2minandafinal extension at 721C for 7 min.
Amplified PCR products (5ml) were resolved on a 1.5% (w/v)
agarose gel at 100 V for 45 min in 1TAE buffer containing
ethidium bromide (EtBr) along with 500 bp DNA ladder (Bangalore
Genei Pvt., Ltd. Bangalore, India). PCR product size was observed
approximate 1500 bp. PCR product was purified using PCR purification kit (Bangalore Genei, Bangalore, India) for the sequencing
of 16S rDNA.
2.6. DNA sequencing
Sequencing of 16S rDNA was carried out at Bangalore Genei Pvt.
Ltd., Bangalore, India. The 16S rDNA sequences were analyzed with
the nucleotide database available at the Gen Bank using the BLAST
tool at NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) for identification of
bacteria and then the 16S rDNA sequences were submitted in NCBI
Gen Bank for obtaining accession numbers.
2.7. Seed bacterization
Wheat seeds var. HUW 234 was obtained from Banaras Hindu
University, Agriculture farm, Varanasi, Uttar Pradesh, India and
surface sterilized (0.1% HgCl2for 2 min and rinsed five times with
sterilized water). Pure cultures ofB. megaterium, A. chlorophenolicus
andEnterobactersp. were grown in nutrient agar for experiments.
A single colony from each strain was transferred into a 50 mlflask,
containing nutrient broth and grown aerobically inflasks overnight
on a rotating shaker (200 rpm) at 301C. Bacteria grown on nutrient
broth were then diluted with sterile distilled water, containing
0.025% Tween 20 to afinal concentration of 10
7
CFU ml

1
.For
treatments, seeds were placed at a bacterial suspension of 10
7
CFU
(colony forming unit) ml

1
along with sticker solution (2.5 g gum
acaciaþ5 g sugar in 100 ml distilled water) for 30 min before
sowing.
2.8. Pot andfield experiments
To study the individual and combined effect of strains, pot and
field experiments were conducted with wheat var. HUW 234
during rabi season of 2011–12 and 2012–13. Six inoculated treatments viz. Control,B. megaterium, A. chlorophenolicus, Enterobacter

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.3 ประมาณเชิงปริมาณของฟอสเฟต solubilizationและการเปลี่ยนแปลง pHวัฒนธรรมจากแบคทีเรียถูก inoculated ในซุป Pikovskaya 100 mlกลางใน 250 ml ของ Erlenmeyerflasks และ incubated ที่ 28721Cfor2 และ 5 วันในเชคเกอร์โรตารี่ที่ 120 รอบต่อนาที Triplicates ได้รับการดูแลรักษาสำหรับการรักษาแต่ละ หลังจากบ่ม werefiltered วัฒนธรรมเชื้อแบคทีเรียผ่าน Whatman no.1filter กระดาษ และก็ขึ้ โดย centrifugation ที่ 10000 rpm สำหรับ 15 นาทีซุป Uninoculated เป็นตัวควบคุมหลังจากที่ pH thefiltrate ถูกบันทึก ด้วยเครื่องวัด pH ดิจิตอล และปริมาณฟอสเฟตที่ละลายน้ำถูกวัด โดยบลูโมลิบดีนัมวิธีการ (Strickland และพาร์สันส์ 1972) โพแทสเซียมไดไฮโดรเจนฟอสเฟตถูกใช้เป็นมาตรฐาน เป็นวัดความเข้มของสีน้ำเงินโดยเครื่องทดสอบกรดด่าง UV – vis ที่ 690 nm2.4. ชีวเคมีจำแนกลักษณะชีวเคมีของแยกบริสุทธิ์เช่นกรัมปฏิกิริยา ปฏิกิริยา catalase, methyl แดง ทดสอบ Voges-Proskauer(คาปูชิโน่และเชอร์แมน 1992 Aneja, 2003) ผลิตแอมโมเนีย (สีย้อม 1962), การผลิต IAA (Sarwar et al., 1992), siderophore(อเล็กซานเดอร์และ Zuberer, 1991), และ HCN ผลิต(Bakker และ Schippers, 1987) ได้กำหนดวิธีการกระบวนการมาตรฐาน2.5 การขยายของ 16S rDNA ยีนโดยห่วงโซ่พอลิเมอเรสปฏิกิริยา (PCR)ใช้รองพื้นสากลสำหรับขยายของ 16S rDNAยีนในแบคทีเรียทุกแยก รองพื้นนี้ถูกกำหนดเองสังเคราะห์โดยบังกาลอร์ Genei บังกาลอร์ อินเดีย 50μlofreactionmixtureประกอบด้วย 50 ng ของ genomic DNA พอลิเมอเรส U Taq 2.5 5μlofบัฟเฟอร์ 10 (100 mM ตรี – HCl, 500 mM KCl pH 8.3), 200μMdNTP1.5 mM pmoles MgCl2and 10 พื้นแต่ละ รองพื้นไปข้างหน้า27 F (50-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-30) และกลับพื้น 1492 R(50-TACGGTTACCTTGTTACGACTT-30) wereused (Narde et al., 2004)ทำการขยายภายใต้ PCR ต่อไปนี้ (ระบบ PCR2720, Biosystems ใช้ สิงคโปร์) เงื่อนไข: denaturation เริ่มที่ C 941 ใน 5 นาที ตาม ด้วยรอบที่ 34 ของ denaturation ที่C 941 ใน 1 นาที การอบเหนียวที่ 521C สำหรับ 1.5 นาที 721Cforนามสกุล 2minandafinal ที่ 721C ใน 7 นาทีผลิตภัณฑ์ PCR เอาต์ (5 มล.) ได้รับการแก้ไขใน 1.5% (w/v)agarose เจ 100 V สำหรับ 45 นาทีในเต้ 1 ประกอบด้วยบัฟเฟอร์โบรไมด์ ethidium (EtBr) พร้อมกับบันได 500 bp ดีเอ็นเอ (บังกาลอร์Genei pvt. บังกาลอร์ อินเดียจำกัด) ขนาดผลิตภัณฑ์ PCR ถูกสังเกตประมาณ 1500 bp. PCR ผลิตภัณฑ์ที่บริสุทธิ์ใช้ชุดฟอก PCR (Genei บังกาลอร์ บังกาลอร์ อินเดีย) ในลำดับที่ของ 16S rDNA2.6 ลำดับ DNAลำดับเบสของ 16S rDNA ถูกดำเนินการที่บังกาลอร์ Genei Pvtจำกัด บังกาลอร์ อินเดีย การ 16S rDNA ลำดับถูกวิเคราะห์ด้วยต่อนิวคลีโอไทด์ ธนาคาร Gen ที่ใช้ระเบิดเครื่องมือที่ NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) สำหรับการระบุมีส่งเชื้อแบคทีเรีย แล้วที่ 16S rDNA ลำดับใน NCBIธนาคาร gen สำหรับการได้รับเลขทะเบียน2.7. เมล็ด bacterizationเพียงเมล็ดข้าวสาลี HUW 234 กล่าวจากฮินดู Banarasมหาวิทยาลัย ฟาร์มเกษตร พาราณสี อุตตระประเทศ อินเดีย และผิว sterilized (0.1% HgCl2for 2 นาทีและห้า rinsed เวลาด้วยsterilized น้ำ) วัฒนธรรมบริสุทธิ์ ofB megaterium, chlorophenolicus อ.andEnterobactersp มีปลูกใน agar ธาตุอาหารสำหรับการทดลองโคโลนีเดียวจากแต่ละต้องใช้ถูกโอนเข้า 50 mlflaskประกอบด้วยธาตุอาหารซุป และโต aerobically inflasks นอนในเชคเกอร์หมุนตัว (200 รอบต่อนาที) ที่ค. 301 แบคทีเรียที่เติบโตบนอาหารซุปที่ผสมกับน้ำกลั่นฆ่าเชื้อ แล้วประกอบด้วย0.025% Tween 20 เพื่อ afinal ความเข้มข้น 107CFU ml1. สำหรับรักษา เมล็ดถูกวางที่ 10 ระงับเชื้อแบคทีเรีย7CFUมล (เป็นหน่วยโคโลนี)1พร้อมสติ๊กเกอร์โซลูชัน (2.5 g หมากฝรั่งacaciaþ5 น้ำตาลทราย g ในน้ำกลั่น 100 มล) สำหรับ 30 นาทีก่อนsowing2.8. หม้อ andfield ทดลองการศึกษาผลรวม และแต่ละสายพันธุ์ หม้อ และได้ดำเนินการทดลองฟิลด์กับข้าวสาลีเพียง HUW 234ในช่วงฤดู rabi 2011-12 และ 2012-13 หก inoculated รักษา viz.ควบคุม megaterium เกิด A. chlorophenolicus, Enterobacter

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 การประมาณปริมาณการละลายฟอสเฟตและค่า pH เปลี่ยนแปลงวัฒนธรรมแบคทีเรียถูกเชื้อใน100 มล. น้ำซุป Pikovskaya ของกลาง250 มิลลิลิตร Erlenmeyerflasks และบ่มที่ 28721Cfor 2 และ 5 วันในเครื่องปั่นหมุนที่ 120 รอบต่อนาที Triplicates ได้รับการดูแลในการรักษาแต่ละ หลังจากการบ่มวัฒนธรรมแบคทีเรีย werefiltered ผ่านกระดาษเบอร์ no.1filter และได้รับการชี้แจงจากการหมุนเหวี่ยงที่ 10,000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาที น้ำซุป Uninoculated ทำหน้าที่เป็นผู้ควบคุม. หลังจากที่พีเอชของ thefiltrate ที่ถูกบันทึกด้วยเครื่องวัดค่า pH แบบดิจิตอลและปริมาณของฟอสเฟตที่ละลายน้ำได้รับการวัดโดยโมลิบดีนัมสีฟ้าวิธีการ(Strickland และพาร์สันส์ 1972) โพแทสเซียมฟอสเฟต di-ไฮโดรเจนที่ใช้เป็นมาตรฐาน ความเข้มของสีฟ้าที่ได้รับการวัดโดย spectrophotometer UV-Vis ที่ 690 นาโนเมตร. 2.4 ลักษณะทางชีวเคมีลักษณะทางชีวเคมีของสายพันธุ์บริสุทธิ์เช่นแกรมปฏิกิริยาปฏิกิริยาcatalase, สีแดงเมธิการทดสอบ Voges-Proskauer (คาปูชิโนและเชอร์แมน, 1992; Aneja, 2003) การผลิตแอมโมเนีย (ย้อม, 1962), โปรดักชั่น IAA (โฉบ, et al. 1992) siderophore ผลิต (อเล็กซานเดและ Zuberer, 1991) และการผลิต HCN (แบกเกอร์และ Schippers, 1987) ได้รับการพิจารณาดังต่อไปนี้ขั้นตอนมาตรฐาน. 2.5 การขยายของยีน 16S rDNA โดยลูกโซ่โพลิเมอร์ปฏิกิริยา(PCR) ไพรเมอร์สากลที่ใช้สำหรับการขยายของ 16S rDNA ยีนแยกแบคทีเรียทั้งหมด ไพรเมอร์นี้ได้รับการสังเคราะห์ที่กำหนดเองโดยบังกาลอร์ Genei บังกาลอร์, อินเดีย 50μlofreactionmixtureประกอบด้วย 50 มณฑลของดีเอ็นเอ 2.5 U ของโพลิเมอร์ Taq, 5μlof 10 บัฟเฟอร์ (100 มิลลิ Tris-HCl 500 มิลลิ KCl ค่า pH 8.3) 200μMdNTP, 1.5 มิลลิ MgCl2and 10 pmoles ของแต่ละไพรเมอร์ ไพรเมอร์ไปข้างหน้า27 F (5 0 -AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3 0) และย้อนกลับไพรเมอร์ 1492 R (5 0 -TACGGTTACCTTGTTACGACTT-3 0) wereused (Narde et al., 2004). ขยายได้ดำเนินการภายใต้ PCR ดังต่อไปนี้ (ระบบ PCR 2720 Applied Biosystems สิงคโปร์) เงื่อนไข denaturation เริ่มต้นที่ 941C เป็นเวลา 5 นาทีตามด้วย 34 รอบของการสูญเสียสภาพธรรมชาติที่941C เป็นเวลา 1 นาที, การอบที่ 521C 1.5 นาทีส่วนขยายที่ 721Cfor ขยาย 2minandafinal ที่ 721C เป็นเวลา 7 นาที. ผลิตภัณฑ์ขยาย PCR (5ml ) ได้รับการแก้ไขใน 1.5% (w / v) เจล agarose ที่ 100 V สำหรับ 45 นาทีใน 1 บัฟเฟอร์ TAE มีethidium bromide (EtBr) พร้อมด้วยบันไดดีเอ็นเอ 500 bp (บังกาลอร์Genei Pvt. จำกัด บังกาลอร์, อินเดีย) ขนาดผลิตภัณฑ์ PCR พบว่าประมาณ1,500 bp ผลิตภัณฑ์ PCR บริสุทธิ์โดยใช้ชุดฟอก PCR (บังกาลอร์ Genei บังกาลอร์, อินเดีย) สำหรับลำดับของ16S rDNA. 2.6 ลำดับดีเอ็นเอลำดับของ 16S rDNA ได้ดำเนินการที่บังกาลอร์ Genei Pvt. Ltd. , บังกาลอร์, อินเดีย 16S rDNA ลำดับวิเคราะห์กับฐานข้อมูลที่มีอยู่เบื่อหน่ายที่Gen ธนาคารโดยใช้ระเบิดเครื่องมือที่NCBI (http://www.ncbi.nlm.nih.gov) สำหรับบัตรประจำตัวของเชื้อแบคทีเรียและแล้ว16S rDNA ลำดับที่ถูกส่งมาใน NCBI Gen ธนาคารสำหรับการได้รับหมายเลขภาคยานุวัติ. 2.7 เมล็ดพันธุ์ bacterization ข้าวสาลีเมล็ด var Huw 234 ที่ได้รับจาก Banaras ฮินดูมหาวิทยาลัยฟาร์มเกษตรพาราณ สีอุตตรประเทศอินเดียและพื้นผิวที่ผ่านการฆ่าเชื้อ(0.1% HgCl2for 2 นาทีและล้างห้าครั้งด้วยน้ำฆ่าเชื้อ) วัฒนธรรมบริสุทธิ์ OFB megaterium, เอ chlorophenolicus andEnterobactersp ปลูกในอาหารเลี้ยงเชื้อสำหรับการทดลอง. อาณานิคมเดียวจากแต่ละสายพันธุ์ก็ถูกย้ายเป็น 50 mlflask, ที่มีสารอาหารและน้ำซุปที่ปลูก aerobically inflasks ค้างคืนบนเครื่องปั่นหมุน(200 รอบต่อนาที) ที่ 301C แบคทีเรียสารอาหารที่ปลูกในน้ำซุปที่ถูกเจือจางแล้วด้วยน้ำกลั่นปลอดเชื้อที่มีTween 0.025 20% ความเข้มข้น afinal 10 7 CFU มล. 1 การกีฬาการรักษาเมล็ดถูกวางไว้ในการระงับแบคทีเรีย 10 7 CFU (อาณานิคมหน่วยสร้างมล)? 1 พร้อมกับการแก้ปัญหาการติดสติกเกอร์ (2.5 กรัมเหงือกacaciaþ5กรัมน้ำตาล100 มล. น้ำกลั่น) เป็นเวลา 30 นาทีก่อนที่จะหว่านเมล็ด. 2.8 หม้อ andfield การทดลองเพื่อศึกษารายบุคคลและผลรวมของสายพันธุ์หม้อและทดลองได้ดำเนินการด้วยข้าวสาลีvar Huw 234 ในช่วงฤดู ​​Rabi 2011-12 และ 2012-13 หกการรักษาเชื้อ ได้แก่ ควบคุม B megaterium, เอ chlorophenolicus, Enterobacter

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 การประเมินเชิงปริมาณของฟอสเฟตและการเปลี่ยนแปลง pH

การสกัดเชื้อแบคทีเรียปลูกเชื้อ 100 มิลลิลิตรของน้ำซุป pikovskaya
ขนาดกลางใน erlenmeyerflasks 250 ml บ่มที่ 28721cfor
2 และ 5 วัน แบบเขย่า 120 รอบ / นาที ล้อมยังคง
สำหรับการรักษาแต่ละ หลังจากบ่มเชื้อวัฒนธรรม werefiltered
ผ่าน whatman ไม่1filter กระดาษและมีการชี้แจง โดยการปั่นเหวี่ยงที่ 10 , 000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 15 นาที ใส่น้ำซุป เสิร์ฟโดยควบคุม pH ของ thefiltrate .
หลังจากที่ถูกบันทึกด้วยเครื่องวัดพีเอช และปริมาณของฟอสเฟตที่ละลายน้ำได้เป็น

วิธีการวัดโดยโมลิบดีนัมสีฟ้า ( Strickland และพาร์สัน , 1972 ) โพแทสเซียมไดไฮโดรเจนฟอสเฟตใช้เป็นมาตรฐาน ความเข้มของสีฟ้าวัด
โดย– UV VIS Spectrophotometer ที่ 690 nm .
2.4 . คุณสมบัติทางชีวเคมีของเชื้อบริสุทธิ์

ชอบกรัมปฏิกิริยาคะตะเลสปฏิกิริยา สารสีแดง และการทดสอบ Voges proskauer
( คาปูชิโน่ และ เชอร์แมน , 1992 ; aneja , 2003 ) , การผลิตก๊าซแอมโมเนีย ( สี , 1962 ) , การผลิต ( IAA Sarw ā r et al . , 1992 ) , ผลิตไซเดอโรฟอร์
( อเล็กซานเดอร์ zuberer และ , 1991 ) และ
การผลิตกรดไฮโดรไซยานิก( Bakker และ schippers , 1987 ) เป็นขั้นตอนมาตรฐานดังต่อไปนี้
.
2.5 การเพิ่มปริมาณของ 16S rDNA ยีนโดยปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรส ( พีซีอาร์ )

รองพื้นใช้สากลสำหรับการเพิ่มปริมาณของยีน 16S rDNA
ในแบคทีเรียไอโซเลท รองพื้นนี้เองที่ genei
อินเดีย , บังกาลอร์ , อินเดีย 50 μ lofreactionmixture
จำนวน 50 นาโนดีเอ็นเอจีโนมิค 25 U ของแท็กการ 5 μลอฟ
10  บัฟเฟอร์ ( 100 มม. นอกจากนี้ – HCL 500 mm . pH 8.3 ) , 200 μ mdntp
1.5 มม. , mgcl2and 10 pmoles แต่ละรองพื้น ส่งต่อรองพื้น 27 f (
5
0
-
0
agagtttgatcctggctcag-3 ) และย้อนกลับ ไพรเมอร์ 1 R (
5
0
-
0
tacggttaccttgttacgactt-3 ) และ ( narde et al . , 2004 ) .
( ถูกดำเนินการภายใต้ระบบ PCR PCR ต่อไปนี้
2720 , Applied Biosystems สิงคโปร์ ) เงื่อนไข :เริ่มต้น ( ที่ 941c เป็นเวลา 5 นาที ตามด้วย 34 รอบใน 1 นาที (
941c annealing ที่ 521c 1.5 นาที นามสกุลที่ 721cfor
2minandafinal ส่วนขยายที่ 721c 7 นาที
ขยายผลิตภัณฑ์ PCR ( 5ml ) ถูกแก้ไขบน 1.5 % ( w / v )
เจลที่ 100 V สำหรับ 45 นาทีใน 1  แทบัฟเฟอร์ที่มี
ทิเดียมโบรไมด์ ( etbr ) พร้อมกับ 500 BP ดีเอ็นเอบันได ( บังกาลอร์
genei Pvt . , Ltdบังกาลอร์ , อินเดีย ) ขนาดผลิตภัณฑ์ PCR พบ
ประมาณ 1500 BP . ผลิตภัณฑ์ PCR คือบริสุทธิ์ใช้ชุดผลิต PCR ( บังกาลอร์ genei บังกาลอร์ , อินเดีย ) เพื่อจัดลำดับของ 16S rDNA
.
2.6 การหาลำดับเบสของดีเอ็นเอลำดับ
16S rDNA พบว่าที่อินเดีย Pvt จำกัด genei
, Bangalore , อินเดีย ที่วิเคราะห์ด้วย
ลำดับ 16S rDNAยีนที่ฐานข้อมูลของธนาคารที่สร้างโดยใช้เครื่องมือที่ ncbi ระเบิด

( http://www.ncbi.nlm.nih.gov ) ในการจำแนกชนิดของแบคทีเรียและลำดับ 16S rDNA ถูกส่งใน ncbi ธนาคารเพื่อขอรับหมายเลขภาคยานุวัติ
, .
2.7 . ข้าวสาลีเมล็ดพันธุ์เมล็ดพันธุ์ bacterization
huw 234 ได้รับจากมหาวิทยาลัยฮินดู Banaras
เกษตรฟาร์ม เมืองพาราณสีรัฐอุตตรประเทศ ประเทศอินเดียและ
ฆ่าเชื้อที่ผิว ( 0.1% hgcl2for 2 นาทีและล้างห้าครั้ง
ฆ่าเชื้อน้ำ ) ใช้เชื้อบริสุทธิ์ . megaterium อ. chlorophenolicus
andenterobactersp . เติบโตใน NUMB3RS สำหรับการทดลอง
อาณานิคมเดียวจากแต่ละสายพันธุ์ ถูกส่งตัวไปเป็น 50 mlflask
ที่มีน้ำซุป , สารอาหารและเติบโต aerobically inflasks ค้างคืน
ในการหมุนปั่น ( 200 รอบต่อนาที ) ที่ 301c .แบคทีเรียที่เติบโตในน้ำสารอาหาร
แล้วเจือจางด้วยน้ำกลั่นฆ่าเชื้อที่มี
0.025% Tween 20 หลังจากที่ความเข้มข้น 10
7


CFU ml 1
.
รักษาเมล็ดอยู่ใน bacterial suspension 10
7

( เป็นหน่วยโคโลนีอาณานิคม )

พร้อม
1 มิลลิลิตร ด้วยสติ๊กเกอร์ โซลูชั่น ( 2.5 กรัมกาวกระถินþ
5 กรัมน้ำตาล 100 มล. น้ำกลั่นเป็นเวลา 30 นาทีก่อนที่จะหว่านเมล็ด
.
2.8 . การการทดลอง
หม้อเพื่อศึกษาผลของสายพันธุ์และรวมแต่ละหม้อและ
การทดลองด้วยข้าวสาลีพันธุ์ huw 234
ในระหว่างเดือน ฤดูกาล 2011 – 12 2012 – 13 หกจากการรักษา ได้แก่ ควบคุม , B . megaterium อ. chlorophenolicus , Enterobacter