Altogether 218 frozen semen AI dose

Altogether 218 frozen semen AI doses (0.25 mL
plastic straws) were used in this study. Doses were
prepared between 1980 and 1989 and also between
2003 and 2005 from ejaculates collected from 18 Thai
AI swamp buffalo bulls housed at the Frozen Semen and
Artificial Insemination Center of the Department of
Livestock Development (DLD) of Khon-Khaen Province
in north-eastern Thailand (latitude 16.3 N and
102.8 E). The age of the bulls averaged 9.6 5.0 years
(range 5–18 years). Ejaculates were collected using
artificial vaginas and were conventionally assessed for
volume, color, density, and sperm concentration, as well
as subjectively for the percentage of motile spermatozoa
(spz). Only ejaculates with at least 70% of spz
exhibiting individual progressive Mot were used to
produce frozen semen AI doses. The semen was
extended in one step, in Tris–egg yolk extender plus 8%
glycerol, to a final concentration of 120 106 spz/mL.
Thereafter, the extended semen was slowly cooled to
4 8C over a period of 2–4 h. The spz were loaded into
0.25 mL plastic straws (IMV, L’Aigle, France) and
frozen using a programmable biological freezer (IMV,
L’Aigle, France) at a rate of 18 8C/min from 4 8C to
40 8C, and at 8 8C/min from 40 8C to 140 8C
before the straws were plunged into liquid nitrogen for
storage. For analysis, the straws were thawed by
immersion in water at 35 8C for a minimum of 12 s.
2.2. Sperm plasma membrane integrity
2.2.1. SYBR-14/propidium iodide assay
Sperm membrane integrity was assessed using a
combination of the fluorophores SYBR-14 and PI (Live/
Dead1 Sperm Viability Kit L-7011; Molecular Probes,
Inc., Eugene, OR, USA), as described by [24]. The
1.0 mL assay volumes consisted of 50 mL of thawed
semen suspended in 950 mL of Tris–fructose citric acid
buffer (FCB). For the staining procedure, SYBR-14
stock solution was diluted (1:50) with FCB. The reextended
semen was mixed with 5 mL of SYBR-14
stock solution. The samples were incubated at 37 8C for
5 min. After incubation, the sample was mixed with
5 mL PI and then again incubated at 37 8C for 5 min
before cytometric analysis. Flow cytometric analysis
was conducted using an LSR flow cytometer (Becton
Dickinson, San Jose´, CA, USA) equipped with standard
optics. Measures of forward scatter (FSC), side scatter
(SSC), green fluorescence (FL1), and red fluorescence
(FL3) were collected for each event. The FSC measure
indicated the size, SSC the granularity, FL1 the SYBR-
14-positive, and FL3 the PI-positive fluorescence of
each spermatozoon. Logarithmic amplification was
used to collect green and red fluorescence. From each
sample, a total of 100,000 events were collected and
quantified as percentages. Three categories of spermatozoa
could be described, alive (SYBR-14+/PI),
moribund (SYBR-14+/PI+), and dead (SYBR-14-/
PI+), according to the degree of intactness of the
plasma membrane.
2.3. Sperm plasma membrane stability
2.3.1. Annexin-V/propidium iodide assay
Annexin-V-fluorescein isothiocyanate (FITC) apoptosis
detection kit II (Pharmingen, San Diego, CA,
USA) was used to detect the membrane phospholipid
PS of the plasma membrane of the spermatozoa postthaw,
as a measurement of PMS. The staining procedure
was conducted according to instructions from the
manufacturer, with slight modifications. After thawing,
frozen-thawed semen were extended with Annexin-V
binding buffer (10 mM N-2-hydroxyethyl piperazineethane
sulfonic acid (HEPES)/NaOH, 140 mM NaCl,
2.5 mM CaCl2) to a final concentration of 1.0
106 spz/mL. Aliquots of 100 mL extended semen
(1.0 106 spz/mL) were transferred to a 5 mL culture
and incubated in the dark for 10 min with 1 mL Hoechst
33342. After incubation, 5 mL Annexin-V-FITC and
5 mL PI (50 mL/mL) were added to the samples. The
tubes were gently mixed and further incubated for

Altogether 218 frozen semen AI doses (0.25 mL
plastic straws) were used in this study. Doses were
prepared between 1980 and 1989 and also between
2003 and 2005 from ejaculates collected from 18 Thai
AI swamp buffalo bulls housed at the Frozen Semen and
Artificial Insemination Center of the Department of
Livestock Development (DLD) of Khon-Khaen Province
in north-eastern Thailand (latitude 16.3 N and
102.8 E). The age of the bulls averaged 9.6  5.0 years
(range 5–18 years). Ejaculates were collected using
artificial vaginas and were conventionally assessed for
volume, color, density, and sperm concentration, as well
as subjectively for the percentage of motile spermatozoa
(spz). Only ejaculates with at least 70% of spz
exhibiting individual progressive Mot were used to
produce frozen semen AI doses. The semen was
extended in one step, in Tris–egg yolk extender plus 8%
glycerol, to a final concentration of 120  106 spz/mL.
Thereafter, the extended semen was slowly cooled to
4 8C over a period of 2–4 h. The spz were loaded into
0.25 mL plastic straws (IMV, L’Aigle, France) and
frozen using a programmable biological freezer (IMV,
L’Aigle, France) at a rate of 18 8C/min from 4 8C to
40 8C, and at 8 8C/min from 40 8C to 140 8C
before the straws were plunged into liquid nitrogen for
storage. For analysis, the straws were thawed by
immersion in water at 35 8C for a minimum of 12 s.
2.2. Sperm plasma membrane integrity
2.2.1. SYBR-14/propidium iodide assay
Sperm membrane integrity was assessed using a
combination of the fluorophores SYBR-14 and PI (Live/
Dead1 Sperm Viability Kit L-7011; Molecular Probes,
Inc., Eugene, OR, USA), as described by [24]. The
1.0 mL assay volumes consisted of 50 mL of thawed
semen suspended in 950 mL of Tris–fructose citric acid
buffer (FCB). For the staining procedure, SYBR-14
stock solution was diluted (1:50) with FCB. The reextended
semen was mixed with 5 mL of SYBR-14
stock solution. The samples were incubated at 37 8C for
5 min. After incubation, the sample was mixed with
5 mL PI and then again incubated at 37 8C for 5 min
before cytometric analysis. Flow cytometric analysis
was conducted using an LSR flow cytometer (Becton
Dickinson, San Jose´, CA, USA) equipped with standard
optics. Measures of forward scatter (FSC), side scatter
(SSC), green fluorescence (FL1), and red fluorescence
(FL3) were collected for each event. The FSC measure
indicated the size, SSC the granularity, FL1 the SYBR-
14-positive, and FL3 the PI-positive fluorescence of
each spermatozoon. Logarithmic amplification was
used to collect green and red fluorescence. From each
sample, a total of 100,000 events were collected and
quantified as percentages. Three categories of spermatozoa
could be described, alive (SYBR-14+/PI),
moribund (SYBR-14+/PI+), and dead (SYBR-14-/
PI+), according to the degree of intactness of the
plasma membrane.
2.3. Sperm plasma membrane stability
2.3.1. Annexin-V/propidium iodide assay
Annexin-V-fluorescein isothiocyanate (FITC) apoptosis
detection kit II (Pharmingen, San Diego, CA,
USA) was used to detect the membrane phospholipid
PS of the plasma membrane of the spermatozoa postthaw,
as a measurement of PMS. The staining procedure
was conducted according to instructions from the
manufacturer, with slight modifications. After thawing,
frozen-thawed semen were extended with Annexin-V
binding buffer (10 mM N-2-hydroxyethyl piperazineethane
sulfonic acid (HEPES)/NaOH, 140 mM NaCl,
2.5 mM CaCl2) to a final concentration of 1.0 
106 spz/mL. Aliquots of 100 mL extended semen
(1.0  106 spz/mL) were transferred to a 5 mL culture
and incubated in the dark for 10 min with 1 mL Hoechst
33342. After incubation, 5 mL Annexin-V-FITC and
5 mL PI (50 mL/mL) were added to the samples. The
tubes were gently mixed and further incubated for

0/5000

จาก: -

เป็น: -

ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]

คัดลอก!

Altogether 218 frozen semen AI doses (0.25 mLplastic straws) were used in this study. Doses wereprepared between 1980 and 1989 and also between2003 and 2005 from ejaculates collected from 18 ThaiAI swamp buffalo bulls housed at the Frozen Semen andArtificial Insemination Center of the Department ofLivestock Development (DLD) of Khon-Khaen Provincein north-eastern Thailand (latitude 16.3 N and102.8 E). The age of the bulls averaged 9.6 5.0 years(range 5–18 years). Ejaculates were collected usingartificial vaginas and were conventionally assessed forvolume, color, density, and sperm concentration, as wellas subjectively for the percentage of motile spermatozoa(spz). Only ejaculates with at least 70% of spzexhibiting individual progressive Mot were used toproduce frozen semen AI doses. The semen wasextended in one step, in Tris–egg yolk extender plus 8%glycerol, to a final concentration of 120 106 spz/mL.Thereafter, the extended semen was slowly cooled to4 8C over a period of 2–4 h. The spz were loaded into0.25 mL plastic straws (IMV, L’Aigle, France) andfrozen using a programmable biological freezer (IMV,L’Aigle, France) at a rate of 18 8C/min from 4 8C to40 8C, and at 8 8C/min from 40 8C to 140 8Cbefore the straws were plunged into liquid nitrogen forstorage. For analysis, the straws were thawed byimmersion in water at 35 8C for a minimum of 12 s.2.2. Sperm plasma membrane integrity2.2.1. SYBR-14/propidium iodide assaySperm membrane integrity was assessed using acombination of the fluorophores SYBR-14 and PI (Live/Dead1 Sperm Viability Kit L-7011; Molecular Probes,Inc., Eugene, OR, USA), as described by [24]. The1.0 mL assay volumes consisted of 50 mL of thawedsemen suspended in 950 mL of Tris–fructose citric acidbuffer (FCB). For the staining procedure, SYBR-14stock solution was diluted (1:50) with FCB. The reextendedsemen was mixed with 5 mL of SYBR-14stock solution. The samples were incubated at 37 8C for5 min. After incubation, the sample was mixed with5 mL PI and then again incubated at 37 8C for 5 minbefore cytometric analysis. Flow cytometric analysiswas conducted using an LSR flow cytometer (BectonDickinson, San Jose´, CA, USA) equipped with standardoptics. Measures of forward scatter (FSC), side scatter(SSC), green fluorescence (FL1), and red fluorescence(FL3) were collected for each event. The FSC measureindicated the size, SSC the granularity, FL1 the SYBR-14-positive, and FL3 the PI-positive fluorescence ofeach spermatozoon. Logarithmic amplification wasused to collect green and red fluorescence. From eachsample, a total of 100,000 events were collected andquantified as percentages. Three categories of spermatozoacould be described, alive (SYBR-14+/PI),moribund (SYBR-14+/PI+), and dead (SYBR-14-/PI+), according to the degree of intactness of theplasma membrane.2.3. Sperm plasma membrane stability2.3.1. Annexin-V/propidium iodide assayAnnexin-V-fluorescein isothiocyanate (FITC) apoptosisdetection kit II (Pharmingen, San Diego, CA,USA) was used to detect the membrane phospholipidPS of the plasma membrane of the spermatozoa postthaw,as a measurement of PMS. The staining procedurewas conducted according to instructions from themanufacturer, with slight modifications. After thawing,frozen-thawed semen were extended with Annexin-Vbinding buffer (10 mM N-2-hydroxyethyl piperazineethanesulfonic acid (HEPES)/NaOH, 140 mM NaCl,2.5 mM CaCl2) to a final concentration of 1.0 106 spz/mL. Aliquots of 100 mL extended semen(1.0 106 spz/mL) were transferred to a 5 mL cultureand incubated in the dark for 10 min with 1 mL Hoechst33342. After incubation, 5 mL Annexin-V-FITC and5 mL PI (50 mL/mL) were added to the samples. Thetubes were gently mixed and further incubated for

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]

คัดลอก!

พรึบ 218 ปริมาณน้ำอสุจิแช่แข็ง AI (0.25
มิลลิลิตรหลอดพลาสติก) ถูกนำมาใช้ในการศึกษานี้ ปริมาณที่ถูกจัดทำขึ้นระหว่างปี 1980 และปี 1989 และระหว่างปี2003 และ 2005 จาก ejaculates เก็บรวบรวมจาก 18 ไทยเอไอหนองวัวควายตั้งอยู่ที่น้ำเชื้อแช่แข็งและการผสมเทียมศูนย์ของกรมปศุสัตว์(DLD) จังหวัด-แคนจังหวัดในภาคตะวันออกเฉียงเหนือประเทศไทย (ละติจูด 16.3 n และ102.8 E) อายุวัวเฉลี่ย 9.6? 5.0 ปี(ช่วง 5-18 ปี) ejaculates ถูกเก็บรวบรวมโดยใช้ช่องคลอดเทียมและได้รับการประเมินตามอัตภาพสำหรับปริมาณสีที่มีความหนาแน่นและความเข้มข้นของสเปิร์มได้เป็นอย่างดีในฐานะผู้กระทำสำหรับร้อยละของตัวอสุจิเคลื่อนที่(SPZ) เฉพาะ ejaculates ที่มีอย่างน้อย 70% ของ SPZ แสดง Mot ของแต่ละบุคคลมีความก้าวหน้ามาใช้ในการผลิตน้ำอสุจิแช่แข็งปริมาณเอไอ น้ำอสุจิที่ได้รับการขยายในขั้นตอนเดียวในทริสขยายไข่แดงไข่บวก 8% กลีเซอรอลจะมีความเข้มข้นสุดท้ายของ 120? 106 SPZ / มล. หลังจากนั้นน้ำอสุจิขยายเย็นช้าไป4 8C ในช่วง 2-4 ชั่วโมง SPZ ถูกโหลดลง0.25 มิลลิลิตรหลอดพลาสติก (IMV, L'Aigle ฝรั่งเศส) และแช่แข็งตู้แช่แข็งโดยใช้โปรแกรมทางชีวภาพ(IMV, L'Aigle, ฝรั่งเศส) ในอัตรา 18 8C บาร์ / นาทีจาก 4 8C ไป40 8C, และ ณ วันที่ 8 8C / นาทีจาก 40 8C ไป? 140 8C ก่อนที่หลอดถูกกระโจนเข้าสู่ไนโตรเจนเหลวสำหรับการจัดเก็บข้อมูล สำหรับการวิเคราะห์หลอดที่ถูกละลายโดยการแช่ในน้ำที่ 35 8C อย่างน้อย 12 s. 2.2 เยื่อหุ้มอสุจิสมบูรณ์2.2.1 SYBR-14 / propidium ทดสอบไอโอไดด์ความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์สเปิร์มได้รับการประเมินโดยใช้การรวมกันของfluorophores SYBR-14 และ PI (สด / Dead1 อสุจิมีชีวิตชุด L-7011; Probes โมเลกุลอิงค์Eugene, OR, สหรัฐอเมริกา) ตามที่อธิบาย [24] 1.0 มิลลิลิตรปริมาณการทดสอบประกอบด้วย 50 มิลลิลิตรละลายน้ำอสุจิที่ลอยอยู่ใน950 มลทริสซิตริกกรดฟรุกโตสบัฟเฟอร์(FCB) สำหรับขั้นตอนการย้อมสีที่ SYBR-14 การแก้ปัญหาหุ้นถูกเจือจาง (01:50) กับ FCB reextended น้ำอสุจิผสมกับ 5 มิลลิลิตร SYBR-14 การแก้ปัญหาสต็อก กลุ่มตัวอย่างที่ถูกบ่มที่ 37 8C สำหรับ5 นาที หลังจากการบ่มตัวอย่างผสมกับ5 มิลลิลิตร PI แล้วบ่มอีกครั้งที่ 37 8C เป็นเวลา 5 นาทีก่อนที่จะวิเคราะห์cytometric การวิเคราะห์การไหลของ cytometric ได้รับการดำเนินการโดยใช้การไหลขี้ cytometer (Becton ดิกคินสัน, ซาน Jose', CA, USA) พร้อมกับมาตรฐานเลนส์ มาตรการกระจายไปข้างหน้า (FSC) กระจายด้าน(SSC) เรืองแสงสีเขียว (FL1) และการเรืองแสงสีแดง(FL3) ที่ถูกเก็บรวบรวมสำหรับแต่ละเหตุการณ์ วัด FSC ระบุขนาด SSC เมล็ด, FL1 SYBR- 14 บวกและ FL3 เรืองแสง PI บวกของตัวอสุจิในแต่ละ ขยายลอการิทึมถูกนำมาใช้ในการเก็บรวบรวมเรืองแสงเขียวและสีแดง จากแต่ละตัวอย่างรวมทั้งสิ้น 100,000 เหตุการณ์ถูกเก็บรวบรวมและวัดเป็นเปอร์เซ็นต์ สามประเภทของสเปิร์มสามารถอธิบายได้มีชีวิตอยู่ (SYBR-14 + / PI?) ตาย (SYBR-14 + / PI +) และตาย (SYBR-14 / PI +) ตามระดับของ intactness ของเมมเบรนพลาสม่า. 2.3 เยื่อหุ้มอสุจิเสถียรภาพ2.3.1 Annexin-V / propidium ทดสอบไอโอไดด์Annexin-V-fluorescein isothiocyanate (FITC) apoptosis ชุดการตรวจสอบครั้งที่สอง (PharMingen, ซานดิเอโก, CA, USA) ถูกนำมาใช้ในการตรวจสอบเรียมเมมเบรนPS ของเยื่อหุ้มของ postthaw สเปิร์มที่เป็นวัดของ PMS ขั้นตอนการย้อมสีได้ดำเนินการตามคำแนะนำจากผู้ผลิตที่มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย หลังจากที่ละลายน้ำอสุจิแช่แข็งละลายถูกขยายด้วย Annexin-V บัฟเฟอร์ผูกพัน (10 มิลลิ N-2-hydroxyethyl piperazineethane กรดซัลโฟ (HEPES) / NaOH 140 มิลลิโซเดียมคลอไรด์, 2.5 มิลลิ CaCl2) เพื่อความเข้มข้นสุดท้ายของ 1.0? 106 SPZ / มิลลิลิตร aliquots 100 มิลลิลิตรขยายน้ำอสุจิ(1.0? 106 SPZ / มิลลิลิตร) ถูกย้ายไปวัฒนธรรม 5 มิลลิลิตรและบ่มในที่มืดเป็นเวลา10 นาที 1 มิลลิลิตร Hoechst 33342 หลังจากบ่ม 5 มิลลิลิตร Annexin-V-FITC และ5 มิลลิลิตร PI (50 มล / มิลลิลิตร) ถูกเพิ่มเข้าไปในกลุ่มตัวอย่าง หลอดถูกผสมเบา ๆ และบ่มต่อไปสำหรับ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]

คัดลอก!

ทั้งหมด 218 น้ำเชื้อโดส ( 0.25 ml
AI พลาสติกหลอด ) สถิติที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้ ซึ่งอยู่ระหว่างปี 1980 และปี 1989
เตรียม และยัง ระหว่าง
2003 และ 2005 จาก ejaculates จำนวน 18 ไทย
อ้ายกระบือวัวตั้งอยู่ที่น้ำเชื้อและ
ศูนย์ผสมเทียมกรมปศุสัตว์ ( กรมปศุสัตว์ )

จังหวัดขอนแก่น ภาคตะวันออกเฉียงเหนือ ( ละติจูด 163 n
102.8 E ) อายุของวัวเฉลี่ย 9.6 5.0 ปี
( ช่วง 5 - 18 ปี ) เก็บรวบรวมข้อมูลโดยใช้ ejaculates
เทียมช่องคลอดและโดยทั่วไปการประเมินเพื่อ
ปริมาณ สี ความหนาแน่น และความเข้มข้นของอสุจิ เช่น
เป็นอย่างสำหรับร้อยละของอสุจิเคลื่อนที่
( spz ) เพียง ejaculates อย่างน้อย 70% ของ spz
จัดแสดงแต่ละก้าวหน้าใช้

มดผลิตน้ำเชื้ออ้ายยา อสุจิ คือ
ขยายในขั้นตอนเดียวในบริษัท–ไข่แดง Extender บวก 8 %
กลีเซอรอลเพื่อความเข้มข้นสุดท้าย 120 106 spz / มล.
หลังจากนั้น , น้ำเชื้อค่อยๆเย็นตัว
4 8 ซี ในช่วง 2 - 4 ชั่วโมง spz ถูกโหลดลงในพลาสติก หลอด (
0.25 มล. IMV l'aigle , ฝรั่งเศส ) , และแช่แข็งโดยใช้โปรแกรมแท้ๆ

l'aigle ( IMV , ตู้แช่ ,ฝรั่งเศส ) ในอัตรา 18 8B / min จาก 4 8C

40 8C และ ที่ 8 8C / min จาก 40 8C จะ 140 8C
ก่อนที่หลอดมี plunged ลงในไนโตรเจนเหลวสำหรับ
กระเป๋า . การวิเคราะห์ , หลอดได้โดยแช่ในน้ำที่ละลาย
35 8C เป็นเวลาอย่างน้อย 12 S .
2.2 . อสุจิสมบูรณ์เมมเบรนพลาสม่า
2.2.1 . sybr-14 / propidium ไอโอไดด์ (
อสุจิสมบูรณ์คือการประเมินโดยใช้
เมมเบรนการรวมกันของ fluorophores และ sybr-14 ปี่ ( สด /
dead1 อสุจิชุด l-7011 ; โมเลกุล )
, Inc , ยูจีน , หรือ , USA ) ตามที่อธิบายไว้โดย [ 24 ]
1.0 มล. ) ปริมาณจำนวน 50 มิลลิลิตรน้ำเชื้อละลาย
แขวนลอยใน 950 ml และกรดซิตริกจากฟรุกโตส
บัฟเฟอร์ ( FCB ) สำหรับขั้นตอนการ โซลูชั่น หุ้น sybr-14
เจือจาง ( 1 : 50 ) FCB . การ reextended
น้ำเชื้อผสมกับ 5 มิลลิลิตรของสารละลาย Stock sybr-14

ตัวอย่างที่บ่มที่ 37 8C สำหรับ
5 นาที หลังจากบ่ม , ตัวอย่างผสมกับ
5 ml ปี่และจากนั้นอีกครั้ง บ่มที่ 37 8C เป็นเวลา 5 นาที
ก่อนการวิเคราะห์เชิงลบ . การวิเคราะห์ลักษณะการไหลผ่าน
ดำเนินการใช้ lsr ไหลใช้โมโน ( เบคตอน
ดิกคินสัน San Jose , ใหม่ , CA , USA ) พร้อมเลนส์มาตรฐาน

มาตรการของการส่งต่อกระจาย ( FSC )ด้านกระจาย
( SSC ) เรืองแสงสีเขียว ( fl1 ) และ
เรืองแสงสีแดง ( fl3 ) ในแต่ละเหตุการณ์ FSC ระบุขนาดวัด
SSC ที่ fl1 granularity , , และ SYBR -
14 บวก และ fl3 ปี่บวกเรืองแสงของ
แต่ละตัวอสุจิ . แบบลอการิทึมคือ
เคยเก็บสีเขียวเรืองแสงสีแดง จากแต่ละ
ตัวอย่างทั้งหมดถูกเก็บและ
100000 เหตุการณ์วัดเป็นเปอร์เซ็นต์ สามประเภทของท่อ
อาจจะอธิบายชีวิต ( sybr-14 / ปี่ )
ร่อแร่ ( sybr-14 / PI ) และตาย ( sybr-14 - /
pi ) ตามระดับของ intactness ของพลาสมาเมมเบรน
.
2.3 อสุจิเยื่อหุ้มเซลล์เสถียรภาพ
2.3.1 . annexin-v / propidium ไอโอไดด์ (
annexin-v-fluorescein ไอโซไทโอไซยาเนต ( fitc ) ชุด 2 ตรวจจับ (
( pharmingen , San Diego , CA ,
สหรัฐอเมริกา ) ถูกใช้เพื่อตรวจหาเยื่อฟอสโฟลิปิด
PS ของเยื่อหุ้มเซลล์ของอสุจิที่ postthaw
เป็นวัดของ PMS , . ขั้นตอนการย้อมสี
ดำเนินการตามคำสั่งจาก
ผลิต มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย หลังละลาย , ละลายน้ำเชื้อแช่แข็งถูกขยายด้วย

annexin-v ผูกบัฟเฟอร์ ( 10 มม. n-2-hydroxyethyl piperazineethane
ลาร์โซเดียมคาร์บอเนต ( ฮีเปส ) / NaOH ,ขนาด 140 มม.
2.5 มม. CaCl2 ) ความเข้มข้นสุดท้ายของ 1.0
106 spz / มล. เฉยๆของ
น้ำเชื้อขยาย 100 มล. ( 1.0 106 spz / ml ) ถูกย้ายไปเป็นวัฒนธรรม
5 มิลลิลิตรบ่มในที่มืดเป็นเวลา 10 นาที กับ 1 ml Hoechst
33342 . หลังจากระยะเวลา annexin-v-fitc 5 ml และ
pi 5 ml ( มิลลิลิตร 50 มิลลิลิตร ) มีการเพิ่มตัวอย่าง
หลอดผสมเบา ๆและเพิ่มเติม ) สำหรับ

การแปล กรุณารอสักครู่..

ภาษาอื่น ๆ

การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.