2.2. Fish and feeding experimentGia

2.2. Fish and feeding experiment

Giant grouper juveniles were produced from a single cohort at the Pacific Aquaculture and Coastal Research Center, UHH according to larval rearing and nursery protocols described for the species (García-Ortega et al., 2013). Prior to the start of the trial, all fish were fed with commercial marine fish diets (O-range, INVE Aquaculture Inc., USA). All diet treatments were tested in triplicate in a feeding trial that lasted 12 weeks, diet treatments were randomly assigned to the tanks. Seventy-two fish with an average initial weight of 45.9 g ± 7.1 were distributed in a 4.5 m3 sea water recirculation system with twelve 90-L tanks at a density of six fish per tank. Fish were manually fed to apparent satiation twice per day at 08:00 and 16:00 h. Daily feed intake and fish mortality were recorded. A photoperiod of 12L:12D was maintained throughout the trial. A partial seawater exchange (30% total system volume) was performed once each week. Water quality parameters were monitored daily with a portable multi-meter (Pro 2030, YSI Inc., USA) and maintained at the following averages: temperature 24.8 ± 0.7 °C, dissolved oxygen 6.6 ± 0.3 mg L− 1, salinity 34.0 ± 0.5 ppt. The water pH (7.7 ± 0.2) and total ammonia nitrogen (0.3 ± 0.2 mg L− 1) were measured three times per week with a colorimeter (DR/890, Hach, USA).

2.3. Fish sampling and chemical analyses

All fish were individually weighed at the start of the experiment and group-weighed by tank every four weeks thereafter. Fish were fasted on the morning of weighing days. Four fish from the initial stock and one fish from each tank at the end of the experiment were sampled and stored frozen at − 80 °C for subsequent whole-body composition analysis. Another fish from each tank at the end of the experiment was dissected to remove liver, fillet and intestinal samples. The liver weight was recorded and used to calculate the hepatosomatic index. Fillets were frozen at − 80 °C until analysis. Small pieces (< 0.5 cm) of the distal intestine were sampled for histological analysis of gastrointestinal morphology.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.2. ปลา และให้อาหารทดลองปลาเก๋ายักษ์สัตว์ถูกผลิตจากกลุ่มรุ่นเดียวที่สัตว์ น้ำแปซิฟิก และ ศูนย์วิจัยชายฝั่ง UHH ตามเลี้ยงอ่อนและโปรโตคอเนอสเซอรี่ที่อธิบายไว้สำหรับการขยายพันธุ์ (García Ortega et al. 2013) ก่อนเริ่มต้นการทดลองใช้ ปลาทั้งหมดถูกเลี้ยง ด้วยอาหารปลาทะเลเชิงพาณิชย์ (ช่วง O, INVE สัตว์น้ำ อิงค์ สหรัฐอเมริกา) อาหารทั้งหมดทดสอบลข้อในการทดลองให้อาหารที่กินเวลา 12 สัปดาห์ อาหารรักษาถูกสุ่มกำหนดให้ถัง ปลาเจ็ดสิบสองมีน้ำหนักเริ่มต้นเฉลี่ยของ 45.9 g ± 7.1 ถูกแจกจ่ายใน 4.5 m3 ทะเลน้ำหมุนเวียนระบบกับสิบสองถัง 90 ลิตรความหนาแน่นของปลาหกต่อถัง ปลาได้ด้วยตนเองติดตามชัดเจน satiation สองครั้งต่อวันที่ h. 08:00 และ 16:00 น.ทุกวันอาหารบริโภค และปลาตายได้รับการบันทึก ช่วงแสงของ 12L: 12D กรุงตลอดการทดลอง การแลกเปลี่ยนน้ำทะเลบางส่วน (ปริมาตรระบบรวม 30%) ทำสัปดาห์ละครั้งแต่ละ พารามิเตอร์คุณภาพน้ำตรวจสอบทุกวันกับการวัดหลายแบบพกพา (Pro 2030, YSI Inc., USA) และเก็บรักษาไว้ที่ค่าเฉลี่ยต่อไปนี้: อุณหภูมิ 24.8 ± 0.7 ° C ค่าออกซิเจน 6.6 ± 0.3 มิลลิกรัม L− 1 เค็ม 34.0 ± 0.5 ppt ค่า pH น้ำ (7.7 ± 0.2) และแอมโมเนียรวมไนโตรเจน (± 0.3 0.2 มก. L− 1) ถูกวัดสามครั้งต่อสัปดาห์ ด้วยเครื่องทดสอบกรดด่างการ (DR/890, Hach สหรัฐอเมริกา)2.3. ปลาตัวอย่าง และเคมีวิเคราะห์ปลาทั้งหมดน้ำหนักเริ่มต้นของการทดสอบ และกลุ่มการชั่งน้ำหนัก โดยถังสี่สัปดาห์หลังจากนั้นแต่ละ ปลาที่อดในตอนเช้าของวันชั่งน้ำหนัก ปลาสี่จากหุ้นเบื้องต้นและปลาหนึ่งจากแต่ละถังในตอนท้ายของการทดสอบตัวอย่าง และเก็บแช่แข็งที่− 80 ° C สำหรับการวิเคราะห์องค์ประกอบทั้งร่างกายตามมา ปลาอื่นจากแต่ละถังที่สิ้นสุดของการทดลองถูก dissected เอาตับ เนื้อ และตัวอย่างลำไส้ น้ำหนักตับถูกบันทึก และใช้ในการคำนวณดัชนี hepatosomatic เนื้อถูกแช่แข็งที่− 80 ° C จนถึงการวิเคราะห์ ชิ้นเล็ก ๆ (< 0.5 ซม.) ของลำไส้ปลายเป็นตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ลักษณะของสัณฐานวิทยาทางเดินอาหาร

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.2 และการให้อาหารปลาทดลองยักษ์พันธุ์ปลาที่ผลิตจากหมู่คนเดียวในมหาสมุทรแปซิฟิกและเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำชายฝั่งศูนย์วิจัยเอ่อตามตัวอ่อนที่เลี้ยงและอนุบาลโปรโตคอลอธิบายสำหรับสายพันธุ์ (การ์เซียกาซา et al., 2013) ก่อนที่จะเริ่มทดลองใช้ปลาทั้งหมดได้รับการเลี้ยงดูด้วยอาหารปลาทะเลในเชิงพาณิชย์ (O-ช่วง Inve เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำอิงค์สหรัฐอเมริกา) การรักษาอาหารทั้งหมดถูกทดสอบในเพิ่มขึ้นสามเท่าในการทดลองให้อาหารที่กินเวลานาน 12 สัปดาห์การรักษาอาหารที่ถูกสุ่มให้รถถัง เจ็ดสิบสองปลาที่มีน้ำหนักเริ่มต้นเฉลี่ย 45.9 กรัม± 7.1 มีการกระจายใน 4.5 M3 ทะเลระบบน้ำหมุนเวียนสิบถัง 90 ลิตรที่ความหนาแน่นของปลาหกต่อถัง ปลาได้รับการเลี้ยงดูด้วยตนเองเพื่อการป้อยอชัดเจนวันละสองครั้งเวลา 08:00 และ 16:00 ชั่วโมง ปริมาณอาหารที่กินในชีวิตประจำวันและการตายของปลาที่ถูกบันทึกไว้ แสงของ 12L: 12D ถูกเก็บรักษาไว้ตลอดการศึกษา แลกเปลี่ยนน้ำทะเลบางส่วน (30% ของยอดขายรวมของทั้งระบบ) ได้ดำเนินการในแต่ละสัปดาห์ละครั้ง พารามิเตอร์ที่มีคุณภาพน้ำถูกตรวจสอบทุกวันด้วยแบบพกพาหลายเมตร (Pro 2030 YSI อิงค์สหรัฐอเมริกา) และเก็บรักษาไว้ที่ค่าเฉลี่ยต่อไปนี้: อุณหภูมิ 24.8 ± 0.7 ° C, ออกซิเจนละลายน้ำ 6.6 ± 0.3 mg L-1, ความเค็ม 34.0 ± 0.5 PPT เป็นกรดเป็นด่างของน้ำ (7.7 ± 0.2) และไนโตรเจนแอมโมเนียรวม (0.3 ± 0.2 mg L-1) วัดสามครั้งต่อสัปดาห์กับ colorimeter (DR / 890 Hach, สหรัฐอเมริกา). 2.3 การสุ่มตัวอย่างปลาและวิเคราะห์ทางเคมีปลาทั้งหมดได้รับการชั่งน้ำหนักที่ไม่ซ้ำกันในช่วงเริ่มต้นของการทดลองและกลุ่มชั่งน้ำหนักถังทุกสี่สัปดาห์หลังจากนั้น ปลาอดอาหารในตอนเช้าของวันชั่งน้ำหนัก สี่ปลาจากหุ้นเริ่มต้นและปลาหนึ่งจากแต่ละถังในตอนท้ายของการทดลองเก็บตัวอย่างและเก็บไว้แช่แข็งที่ - 80 องศาเซลเซียสสำหรับการวิเคราะห์องค์ประกอบทั้งร่างกายตามมา ปลาจากแต่ละถังในตอนท้ายของการทดลองอีกชำแหละเพื่อเอาตับเนื้อและตัวอย่างลำไส้ น้ำหนักตับที่ถูกบันทึกไว้และใช้ในการคำนวณดัชนีตับ เนื้อถูกแช่แข็งที่ - 80 ° C จนการวิเคราะห์ ชิ้นเล็ก ๆ (<0.5 ซม.) ของลำไส้ส่วนปลายถูกสุ่มเป็นตัวอย่างสำหรับการวิเคราะห์ทางเนื้อเยื่อของระบบทางเดินอาหารลักษณะทางสัณฐานวิทยา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.2 . ปลาและอาหารทดลองปลาเก๋ายักษ์และถูกผลิตจากหมู่คนเดียวที่เพาะเลี้ยงสัตว์น้ำชายฝั่งแปซิฟิก และศูนย์วิจัย เอ่อ ตามการเลี้ยงตัวอ่อนและสถานเลี้ยงเด็กโปรโตคอลอธิบายชนิด ( garc í a-ortega et al . , 2013 ) ก่อนที่จะเริ่มต้นของการทดลองทั้งหมดที่ปลาได้รับอาหารสัตว์น้ำเชิงพาณิชย์ ( o-range ที่ปรึกษาด้านการเพาะเลี้ยงสัตว์น้ำ , Inc . , USA ) ตำรับอาหารทั้งหมดถูกทดสอบทั้งสามใบในอาหารทดลองเป็นเวลา 12 สัปดาห์ อาหาร การทดลองแบบสุ่มรถถัง เจ็ดสิบสองปลาที่มีน้ำหนักเริ่มต้นเฉลี่ยของ± 45.9 กรัม 7.1 กระจายอยู่ในทะเลด้วยระบบน้ำหมุนเวียน 4.5 ลบ . ม. 12 90-l รถถังที่ความหนาแน่นของปลาหกต่อถัง ปลาเลี้ยงด้วยตนเองเพื่อความอิ่มอกอิ่มใจปรากฏสองครั้งต่อวันที่ 08 : 00 16 : 00 ชั่วโมงทุกวัน และปริมาณอาหารที่กินและอัตราการตาย ปลาที่ถูกบันทึกไว้ . ช่วงแสงของ 12L : 12D เป็นรักษาตลอดการทดลอง แลกเปลี่ยนน้ำทะเลบางส่วน ( ร้อยละ 30 ปริมาณรวมระบบ ) กำหนดครั้งในแต่ละสัปดาห์ พารามิเตอร์คุณภาพน้ำตรวจสอบทุกวัน ด้วยมัลติมิเตอร์แบบพกพา ( Pro 2030 , ysi Inc . , USA ) และเก็บรักษาที่อุณหภูมิสูงเฉลี่ยดังต่อไปนี้± 0.7 ° C , ออกซิเจน 6.6 ± 0.3 mg L − 1 น้ำ ความเค็ม±ร้อยละ 0.5 ส่วนในพัน น้ำ ( pH 7.7 ± 0.2 ) และแอมโมเนีย - ไนโตรเจนทั้งหมด ( 0.3 0.2 มิลลิกรัมต่อลิตร ±− 1 ) จำนวน 3 ครั้งต่อสัปดาห์ ด้วยระบบดิจิตอล ( ดร / 890 , HACH , USA )2.3 ปลา ) และการวิเคราะห์ทางเคมีปลาทั้งหมดเป็นแบบหนักที่เริ่มต้นของการทดลอง และกลุ่มชั่งน้ำหนักโดยถังทุก 4 สัปดาห์ หลังจากนั้น ปลาอดอาหารในช่วงเช้าชั่งวัน สี่ปลาจากสต็อกเริ่มต้นและหนึ่งจากแต่ละถังปลาเมื่อสิ้นสุดการทดลองทำการสุ่มตัวอย่างและเก็บแช่แข็งที่อุณหภูมิ 80 องศา C −การวิเคราะห์องค์ประกอบร่างกายตามมา อีกหนึ่งจากแต่ละถังปลาเมื่อสิ้นสุดการทดลองถูกผ่าเอาตับ เนื้อปลา และตัวอย่างที่ลำไส้ ตับถูกบันทึกไว้และใช้ในการคำนวณดัชนี hepatosomatic . ปลาถูกแช่แข็งที่ 80 ° C −จนถึงการวิเคราะห์ ชิ้นเล็ก ( < 0.5 ซม. ) ของลำไส้ส่วนปลาย จำนวนผลของการวิเคราะห์ทางสัณฐานวิทยา .