3. Resultsthe slaughterhouse, altog

3. Resultsthe slaughterhouse, altogether 240 Campylobacter quantification
analyses were conducted on neck-skin samples (10 carcasses/batch,
six slaughter batches, sampled at 5 sampling positions along processing
line), 60 analyses for Campylobacter presence in corresponding
caeca and 8 analyses for Campylobacter presence in
slaughterhouse environment and equipment samples. The results
illustrating C. jejuni carcass contamination dynamics during
slaughtering and carcass processing of six monitored batches are
shown in Fig. 1.
The C. jejuni-negative flock was processed first on the slaughterhouse
day schedule. C. jejuni could not be isolated from the caeca
from this flock (n ¼ 10) and also carcasses from this batch (B4)
remained C. jejuni-negative throughout the slaughtering and also
following the chilling and packaging procedure. In other batches,
all caecal samples from broilers originating from C. jejuni -positive
farms (n ¼ 50) tested C. jejuni-positive also during slaughtering and
C. jejuni neck-skin contamination was confirmed in all corresponding
carcass samples from the evisceration room, with
Campylobacter numbers ranging from 1.6  103 (batch 2, pFR) to
1.4  104 CFU/g (batch 3, pPL; 10 carcasses per batch average;
Fig. 1). Enumeration results for the neck-skin sampled sequentially
at three successive sampling positions in the evisceration room
(shown as CFU/g average calculated from 50 positive carcasses from
the positive batches) revealed the highest contamination level at
the entrance to the evisceration room (pPL, i.e. after plucking:
average 6.6  103 C. jejuni CFU/g; 3.82 log), slightly lower immediately
after evisceration (pEV: average 6.1  103; 3.78 log) and the
lowest in the samples taken after the final carcass wash before
cooling (pFR: average 4  103; 3.6 log). A marked CFU reductionwas
observed in carcasses refrigerated for three days: 8.8  102 CFU/g;
2.94 log (a 4.5-fold decrease compared with the contamination
level detected at the exit from the evisceration room) and in carcasses
frozen for three days: 28 CFU/g; 1.44 log (a 143-fold
decrease, again compared with the contamination level detected
at the exit from the evisceration room). Analyses of individual
batches in the evisceration room show that two batches (B3 and B6)
had the highest CFU counts immediately at the first sampling point
(after plucking) while two batches (B2 and B5) peaked at the second
sampling point (after evisceration). Increasing CFU counts
were recorded at positions pPL and pEV when the three successive
batches were compared at each individual sampling point, both in
the spring and autumn samples.
All the slaughterhouse environment samples resulted
Campylobacter-negative before slaughtering and positive after
slaughtering. The only exception was the scalding tank water,
which remained negative also after slaughtering (data not
shown).
The genetic heterogeneity of C. jejuni isolates from caeca and
carcasses was low: three dominant pulsotypes (designated A, B and
C) were found in caeca and were usually typical for each batch (one
pulsotype per batch). The pulsotypes detected in the neck-skin
samples of a slaughtered batch corresponded to the pulsotypes
present in the caeca of that particular batch. The pulsotype typical
for the last slaughtered batch (pulsotype C from B3 in spring and
from B6 in autumn) also prevailed among the slaughterhouse
environment isolates, with two small additional genetic groups (D,
E) detected in the spring samples (Table 1).
On farms, C. jejuni was detected in broiler faeces in five out of six
flocks; one of the autumn flocks (B4) remained negative. At the
positive farms, C. jejuni was isolated from every faecal sample. At

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. Resultsthe บิดา นับกัน 240 Campylobacterได้ดำเนินการวิเคราะห์บนตัวอย่างผิวหนังคอ (10 ซาก/ชุดหกชุดฆ่า ตัวอย่างที่ 5 สุ่มตำแหน่งตามประมวลบรรทัด), 60 วิเคราะห์สำหรับสถานะ Campylobacter ในที่สอดคล้องcaeca และวิเคราะห์ 8 สำหรับสถานะ Campylobacter ในบิดาสิ่งแวดล้อมและอุปกรณ์ตัวอย่าง ผลลัพธ์C. jejuni dynamics การปนเปื้อนของซากในระหว่างการแสดงslaughtering และการประมวลผลชุด 6 ตรวจสอบซากแสดงใน Fig. 1C. jejuni ลบแกะประมวลก่อนบิดากำหนดการวัน ไม่สามารถแยกต่างหากจาก caeca C. jejuniจากนี้แกะ (n ¼ 10) และซากจากชุดนี้ (B4)C. jejuni ลบตลอด slaughtering ยังคงอยู่ และยังต่อการถือ และขั้นตอนการบรรจุภัณฑ์ ในชุดอื่น ๆตัวอย่างทั้งหมด caecal จากออกมาจาก C. jejuni-บวกฟาร์ม (n ¼ 50) ทดสอบ C. jejuni บวกยังระหว่าง slaughtering และC. jejuni คอผิวปนได้รับการยืนยันในที่สอดคล้องกันทั้งหมดซากตัวอย่างจากห้อง evisceration กับหมายเลข Campylobacter ตั้งแต่ 1.6 103 (ชุด 2, pFR)1.4 104 CFU/g (ชุด 3, pPL ซาก 10 ต่อชุดเฉลี่ยFig. 1) ผลการแจงนับสำหรับคอผิวตัวอย่างตามลำดับในตำแหน่งที่สามสุ่มตัวอย่างต่อเนื่องในห้อง evisceration(แสดงเป็น CFU/g เฉลี่ยคำนวณจากซาก 50 บวกจากชุดบวก) เปิดเผยการปนเปื้อนในระดับสูงสุดที่ทางเข้าห้อง evisceration (pPL เช่นหลังจากถอนขน:ค่าเฉลี่ย 6.6 103 C. jejuni CFU/g 3.82 ล็อก), ต่ำกว่าเล็กน้อยทันทีหลังจาก evisceration (pEV: เฉลี่ย 6.1 ล็อก 103; 3.78) และต่ำสุดในตัวอย่างที่ถ่ายหลังจากล้างซากสุดท้ายก่อนระบายความร้อน (pFR: เฉลี่ย 4 103; 3.6 บันทึก) Reductionwas เป็น CFU ทำเครื่องหมายพบในซากรเออร์สำหรับสามวัน: 8.8 102 CFU/g2.94 ล็อก (4.5-fold ลดลงเมื่อเทียบกับการปนเปื้อนระดับที่ตรวจพบที่ออกจากห้อง evisceration) และ ในซากหยุดสามวันที่: 28 CFU/g 1.44 ล็อก (แบบ 143-foldลด อีกครั้ง เปรียบเทียบกับการตรวจพบระดับการปนเปื้อนที่ออกจากห้อง evisceration) วิเคราะห์ของแต่ละบุคคลชุดในห้อง evisceration แสดงว่า สองชุด (B3 และ B6)มีจำนวน CFU สูงสุดทันทีที่จุดสุ่มตัวอย่างแรก(หลังจากการถอนขน) ในขณะที่ชุดสอง (B2 และ B5) peaked ที่สองจุดสุ่มตัวอย่าง (จาก evisceration) เพิ่ม CFU นับบันทึกที่ตำแหน่ง pPL และ pEV เมื่อสามต่อชุดถูกเปรียบเทียบในแต่ละจุดสุ่มตัวอย่างแต่ละ ทั้งในฤดูใบไม้ผลิและฤดูใบไม้ร่วงตัวอย่างตัวอย่างสภาพแวดล้อมบิดาทั้งหมดผลCampylobacter เป็นค่าลบ และค่าบวกหลังจาก slaughteringslaughtering น้ำถัง scalding มีข้อยกเว้นเท่านั้นซึ่งยังคงติดลบยังหลัง slaughtering (ข้อมูลไม่แสดง)แยก heterogeneity พันธุของ C. jejuni จาก caeca และซากอยู่ในระดับต่ำ: pulsotypes สามหลัก (กำหนด A, B และC) ถูกพบใน caeca และก็ปกติทั่วไปแต่ละชุด(pulsotype ต่อชุด) Pulsotypes ที่พบในผิวหนังคอตัวอย่างของชุด slaughtered corresponded กับ pulsotypesใน caeca ของชุดที่เฉพาะ Pulsotype ทั่วไปสำหรับชุด slaughtered สุดท้าย (pulsotype C จาก B3 ในฤดูใบไม้ผลิ และจาก B6 ในฤดูใบไม้ร่วง) นอกจากนี้ยังแผ่ขยายไปจากบิดาสิ่งแวดล้อมแยก มีสองขนาดเล็กกลุ่มเพิ่มเติมทางพันธุกรรม (Dอี) พบในตัวอย่างสปริง (ตาราง 1)ในฟาร์ม C. jejuni พบในไก่เนื้อ faeces ใน 5 จาก 6จำนวนเกือบเท่าเดิม หนึ่งในฤดูใบไม้ร่วงจำนวนเกือบเท่าเดิม (B4) ยังคงติดลบ ที่ฟาร์มบวก C. jejuni ถูกแยกต่างหากจากตัวอย่างทุก faecal ที่

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3. โรงฆ่าสัตว์ Resultsthe, Campylobacter ทั้งหมด 240
ปริมาณการวิเคราะห์ได้ดำเนินการกับตัวอย่างคอผิว(10 ซาก /
ชุดหกสำหรับกระบวนการฆ่าตัวอย่างที่5 ตำแหน่งพร้อมการประมวลผลการสุ่มตัวอย่าง
line) 60 การวิเคราะห์การปรากฏ Campylobacter ในสอดคล้อง
caeca และ 8 การวิเคราะห์ Campylobacter
อยู่ในสภาพแวดล้อมที่โรงฆ่าสัตว์และตัวอย่างอุปกรณ์ ผลประกอบ C. jejuni การเปลี่ยนแปลงการปนเปื้อนซากในระหว่างการฆ่าและการประมวลผลซากหกสำหรับกระบวนการตรวจสอบจะมีการแสดงในรูป 1. ฝูง C. jejuni ลบการประมวลผลครั้งแรกในโรงฆ่าสัตว์กำหนดการวัน C. jejuni ไม่สามารถแยกออกจาก caeca จากฝูงนี้ (n ¼ 10) และซากจากชุดนี้ (B4) ยังคง C. jejuni ลบตลอดทั้งฆ่าและยังดังต่อไปนี้ขั้นตอนที่หนาวเหน็บและบรรจุภัณฑ์ ใน batches อื่น ๆทั้งหมดตัวอย่าง caecal จากไก่ที่มาจากซี jejuni บวกฟาร์ม(n ¼ 50) การทดสอบ C. jejuni บวกในระหว่างการฆ่าและซี การปนเปื้อนคอ jejuni ผิวได้รับการยืนยันที่สอดคล้องกันในทุกตัวอย่างซากจากห้องชำแหละที่มีตัวเลขCampylobacter ตั้งแต่ 1.6? 103 (ชุดที่ 2 PFR) เพื่อ1.4? 104 โคโลนี / กรัม (ชุดที่ 3 PPL 10 ซากต่อชุดเฉลี่ย. รูปที่ 1) ผลการแจงนับสำหรับคอผิวตัวอย่างลำดับที่สามตำแหน่งการเก็บตัวอย่างต่อเนื่องในห้องพักชำแหละ(แสดงเป็นโคโลนี / กรัมเฉลี่ยที่คำนวณจาก 50 ซากบวกจากแบตช์บวก) เปิดเผยว่าระดับการปนเปื้อนสูงสุดที่ทางเข้าห้องชำแหละที่ (PPL, คือหลังจากถอนขน: เฉลี่ย 6.6 C. jejuni 103 โคโลนี / กรัม 3.82 log) ลดลงเล็กน้อยได้ทันทีหรือไม่หลังจากชำแหละ(PEV: เฉลี่ย 6.1 103; 3.78 log) และต่ำสุดในตัวอย่างที่ถ่ายหลังจากที่ล้างซากสุดท้ายก่อนที่จะระบายความร้อน( PFR: เฉลี่ย 4 103; 3.6 log) ทำเครื่องหมาย CFU reductionwas สังเกตในซากตู้เย็นเป็นเวลาสามวัน: 8.8? 102 โคโลนี / กรัม2.94 ล็อก (ลดลง 4.5 เท่าเมื่อเทียบกับการปนเปื้อนในระดับที่ตรวจพบที่ประตูทางออกจากห้องชำแหละ) และในซากแช่แข็งเป็นเวลาสามวัน 28 โคโลนี / กรัม 1.44 ล็อก (143 เท่าลดลงเมื่อเทียบกับระดับอีกครั้งที่ตรวจพบการปนเปื้อนที่ประตูทางออกจากห้องชำแหละที่) การวิเคราะห์ของแต่ละบุคคลสำหรับกระบวนการในการแสดงห้องชำแหละที่สองสำหรับกระบวนการ (B3 และ B6) มีนับ CFU สูงสุดทันทีที่จุดเก็บตัวอย่างครั้งแรก(หลังจากถอนขน) ในขณะที่สองสำหรับกระบวนการ (B2 และ B5) แหลมที่สองจุดสุ่มตัวอย่าง(หลังจากชำแหละ) . ที่เพิ่มขึ้นนับโคโลนีที่ถูกบันทึกไว้ที่ตำแหน่ง ppl และ PEV เมื่อสามต่อเนื่องสำหรับกระบวนการถูกนำมาเปรียบเทียบในแต่ละจุดการสุ่มตัวอย่างของแต่ละบุคคลทั้งในฤดูใบไม้ผลิและฤดูใบไม้ร่วงตัวอย่าง. ทั้งหมดตัวอย่างสภาพแวดล้อมที่ส่งผลให้โรงฆ่าสัตว์Campylobacter ลบก่อนที่จะฆ่าและบวกหลังจากที่ฆ่า ยกเว้นอย่างเดียวคือถังน้ำลวกที่ซึ่งยังคงอยู่ในเชิงลบหลังจากฆ่า(ข้อมูลไม่แสดง). ความหลากหลายทางพันธุกรรมของ C. jejuni แยกจาก caeca และซากต่ำ: สามสายพันธุ์ที่โดดเด่น (กำหนดให้ A, B และC) ที่พบใน caeca และก็มักจะเป็นเรื่องปกติสำหรับแต่ละชุด (หนึ่งpulsotype ต่อชุด) สายพันธุ์ที่พบในคอผิวตัวอย่างชุดฆ่าตรงกับสายพันธุ์ที่อยู่ในcaeca ของชุดนั้น pulsotype ทั่วไปสำหรับชุดฆ่าที่ผ่านมา(pulsotype C จาก B3 ในฤดูใบไม้ผลิและจากB6 ในฤดูใบไม้ร่วง) นอกจากนี้ยังได้ตระหนักในหมู่โรงฆ่าสัตว์สภาพแวดล้อมที่แยกกับสองกลุ่มเล็กๆ ทางพันธุกรรมเพิ่มเติม (D, E) ตรวจพบในตัวอย่างฤดูใบไม้ผลิ (ตารางที่ 1) ในฟาร์ม C. jejuni ถูกตรวจพบในอุจจาระไก่เนื้อในห้าหกออกมาจากฝูงแพะแกะ หนึ่งในฝูงฤดูใบไม้ร่วง (B4) ยังคงอยู่ในเชิงลบ ที่ฟาร์มบวก C. jejuni แยกได้จากตัวอย่างอุจจาระทุก ที่

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . resultsthe โรงฆ่าสัตว์ทั้งหมด 240 รวมทั้งการวิเคราะห์เชิงปริมาณ
ตัวอย่างหนังคอ ( 10 ซาก /
6 ชุด ฆ่าได้ ตัวอย่างที่ 5 ตัวอย่างตำแหน่งตามการประมวลผล
บรรทัด ) , 60 จากการวิเคราะห์การแสดงประกวดในที่ 8 การวิเคราะห์และการแสดงตนของพยาธิ

รวมทั้งในสิ่งแวดล้อมโรงฆ่าสัตว์และอุปกรณ์ตัวอย่าง ผลลัพธ์
C . ใช้แสดงซากปนเปื้อนพลวัตในการฆ่าและการประมวลผลของหก
ซากตรวจสอบชุดจะแสดงในรูปที่ 1
.
ฝูงลบ C ใช้การประมวลผลครั้งแรกในโรงฆ่าสัตว์
วันกำหนดการ C . ใช้ไม่สามารถแยกจากพยาธิ
จากฝูงนี้ ( N ¼ 10 ) และซากจากชุดนี้ ( B4 )
ยังคง Cใช้ลบตลอดการฆ่าและยัง
ต่อไปนี้เย็นบรรจุภัณฑ์และกระบวนการ ในชุดอื่น ๆ ,
ทั้งหมด caecal ตัวอย่างจากไก่ที่มาจากฟาร์ม C ใช้บวก
( N ¼ 50 ) ทดสอบ C บวกยังใช้ในการฆ่าและการปนเปื้อนเชื้อ
C คอผิวได้รับการยืนยันใน ทั้งหมด สอดคล้อง
ซากตัวอย่างจากห้อง evisceration กับ
รวมทั้งตัวเลขตั้งแต่ 1.6  103 ( ชุด 2 PFR )
1.4  104 CFU / g ( ชุด 3 , PPL ; 10 ซากต่อรุ่นเฉลี่ย ;
รูปที่ 1 ) แจงผลคอผิวตัวอย่างตามลำดับ
3 ต่อเนื่อง ) ในตำแหน่งที่ตัดอวยวะภายในห้อง
( แสดงเป็น cfu / g โดยเฉลี่ย คำนวณจาก 50 ซากบวกจาก
ชุดบวก ) พบการปนเปื้อนสูงสุดที่ระดับ
ทางเข้าห้อง evisceration ( PPL ) หลังจากเด็ด :
เฉลี่ย 6.6  103 องศาเซลเซียส เชื้อ CFU / g ; 3.82 เข้าสู่ระบบ ) ลดลงเล็กน้อยทันที
หลังจาก evisceration ( pev เฉลี่ย 6.1  103 ; 3.78 เข้าสู่ระบบ ) และ
สุดในตัวอย่างสุดท้ายหลังจากล้างซากสัตว์ก่อน
เย็น ( PFR : เฉลี่ย 4  103 ; 3.6 ล็อก ) ทำเครื่องหมาย CFU reductionwas
พบในซากตู้เย็นเป็นเวลา 3 วัน : 8.8  102 CFU / g ;
2.94 เข้าสู่ระบบ ( 4.5-fold ลดลงเมื่อเทียบกับระดับที่ตรวจพบการปนเปื้อน
ทางออกจากห้อง evisceration ) และในซาก
แช่แข็ง 3 วัน : 28 CFU / g ; 1.44 เข้าสู่ระบบ ( 143 พับ
ลดลงอีกเมื่อเทียบกับระดับที่ตรวจพบการปนเปื้อน
ที่ออกจากตัดอวยวะภายในห้อง ) การวิเคราะห์ของกลุ่มบุคคล
ในตัดอวยวะภายในห้องแสดงว่าทั้งสองกลุ่ม ( B3 B6
และ )