3. Results and discussion3.1. Growt

3. Results and discussion
3.1. Growth of Lactobacillus strains with prebiotic sources
The growth profiles of six different Lactobacillus strains in the
presence of lactulose, GOS-La, GOS-Lu are shown in Fig. 1. Glucose
was also included in this study for comparative purposes. All
Lactobacillus strains grew during the first 24 h for all the substrates.
Higher growth rates were observed for LC and LD with glucose and
lactulose than with GOS-La and GOS-Lu substrates, whereas for LP1,
LP2 and LS the initial growth rates were similar for all carbohydrates
tested, and for LB the lowest initial growth was obtained
with glucose. However, after this time, growth rates of all Lactobacillus
strains decreased quickly when they were grown with
glucose and lactulose, whilst all strains kept constant or were
slightly modified with GOS-Lu and GOS-La. This response could be
attributed to different reasons. It is known that carbohydrates with
longer chain lengths are fermented more slowly (Cummings et al.,
2001) which is in agreement with the fermentation kinetics of
Lactobacillus strains exhibited in presence of GOS-La and GOS-Lu
(Fig. 1). Likewise, this could also explain the initial higher growth
observed for LC and LD with glucose and lactulose at 24 h
of incubation. However, no notable differences were detected
between GOS-La and GOS-Lu for all fermentation times and strains.
Similar behaviour has previously been reported in some bifidobacteria
species, using fructooligosaccharides and inulin as the
carbon sources, where the oligomers with high molecular weight
promoted a higher bacterial growth than other substrates with
lower molecular weight (Vernazza et al., 2006).
Conversely the metabolism of large carbohydrate molecules
requires the use of glycosidases and specific transport mechanisms
for the hydrolysis products (Vernazza et al., 2006). In Lactobacillus
genus, the b-galactosidases are specifically located in the cytoplasm
(Fortina et al., 2003) which implies that for the metabolization
of GOS, Lactobacillus strains need a transport system in order to
hydrolyze these oligosaccharides into the cell by b-galactosidases.
This could explain the slower growth of LC and LD strains at 24 h
with GOS-Lu and GOS-La compared with glucose and lactulose;
however, for LP1, LP2 and LS, the similar values for initial growth
provide evidence for a strain-dependence on the assimilation of
carbon source.
Furthermore, it has been previously observed that the monomeric
composition, polymerization degree and type of glycosidic
linkages can affect the growth of probiotic strains (Rastall et al.,
2005). GOS-La obtained from Vivinal-GOS primarily consist of
b-(1-4) linkages (Coulier et al., 2009; Rastall, 2010) and GOS-Lu
consist of b-(1-6), being the most abundant trisaccharide 60-
galactosyl-lactulose (Hernández-Hernández et al., 2011). Cardelle-
Cobas et al. (2011) when studying the effect of different trisaccharides
isolated from GOS-Lu and GOS-La mixtures on different
bacteria strains, including Lactobacillus, reported a preference for
linkages b-(1-6) instead of b-(1-4); however, the results obtained in
our work showed no differences in growth responses of Lactobacillus
strains using GOS-Lu or GOS-La.
3.2. Lactic and acetic acid production
In general, for all strains and carbon sources tested, concentrations
of lactic acid were higher than that of acetic acid (Table 1).
Lactobacillus strains grown in glucose and lactulose generated
higher concentrations of lactic acid than GOS-La and GOS-Lu,
whilst similar levels of acetic acid were found for all assayed
carbohydrates. The low amount of lactic acid produced in GOS
grown culture could be due to the slower and prolonged fermentation
by the bacterial strains. This could also have an influence on
the higher survival rate of Lactobacillus strains grown in GOS
substrates (Fig. 1), as a lower acid production leads to less acidic pH
values. No significant differences were, in general, detected among
the different incubation times either for each carbohydrate or
between GOS-La and GOS-Lu. Lactic and acetic acids are fermentation
products of lactic acid bacteria (Lindgren and Dobrogosz,
1990). These acids decrease the pH and consequently can
prevent the over growth of pathogenic bacteria in the intestine
(Roy et al., 2006). Short chain fatty acids (SCFA) such as acetic and
lactic acids are involved in multiple beneficial effects on the host.
Acetic acid is metabolised by different human tissues representing
a route to obtain energy from non-digestible carbohydrates (Roy
et al., 2006; Roberfroid et al., 2010); however, lactic and acetic
acids are assimilated by different species present in the gut
microbiota, producing butyric acid which can be involved in
multiple positive effects such as the reduction of colon cancer risk
(Roy et al., 2006; Falony and De Vuyst, 2009; Roberfroid et al.,
2010).
These results support that Lactobacillus strains are able to
hydrolyze GOS synthesized from lactose and lactulose, as well as
lactulose to produce beneficial metabolites as final products.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1 การเจริญเติบโตของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสกับพรีไบโอติกส์แหล่งโพรไฟล์การเจริญเติบโตของหกแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์แตกต่างกันในการของ lactulose, GOS-ลา GOS ลูจะแสดงใน Fig. 1 น้ำตาลกลูโคสนอกจากนี้ยังรวมอยู่ในการศึกษานี้เพื่อเปรียบเทียบ ทั้งหมดแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์เติบโตระหว่าง 24 ชมแรกสำหรับพื้นผิวทั้งหมดสูงสุภัค LC และ LD กับกลูโคส และlactulose กว่ากับพื้นผิวของ GOS ลาและ GOS Lu ในขณะที่สำหรับ LP1LP2 และ LS ราคาเริ่มต้นการเจริญเติบโตคล้ายกันสำหรับคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดทดสอบ และป.เจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดได้รับด้วยกลูโคส อย่างไรก็ตาม หลังจากนี้เวลา อัตราการขยายตัวของแลคโตบาซิลลัสที่ทั้งหมดสายพันธุ์ที่ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาได้เติบโตขึ้นด้วยกลูโคสและ lactulose ในขณะที่สายพันธุ์ทั้งหมดเก็บไว้คง หรือไม่แก้ไขเล็กน้อยกับลู GOS GOS La. ตอบสนองนี้อาจเป็นบันทึกเหตุผล เป็นที่รู้จักที่มีคาร์โบไฮเดรตความยาวโซ่ยาวหมักช้า (Cummings et al.,2001) ซึ่งเป็นข้อตกลงกับจลนพลศาสตร์การหมักของจัดแสดงสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสในของ GOS ลาและลู GOS(Fig. 1) ทำนองเดียวกัน ซึ่งจะอธิบายการเติบโตสูงที่เริ่มต้นยังสังเกต LC และ LD ด้วยน้ำตาลกลูโคสและ lactulose ใน 24 ชมของคณะทันตแพทยศาสตร์ อย่างไรก็ตาม ค้นพบความแตกต่างไม่โดดเด่นระหว่างลา GOS และ GOS-ลูทุกครั้งหมักและสายพันธุ์รายงานพฤติกรรมที่คล้ายกันในบาง bifidobacteria ก่อนหน้านี้สปีชีส์ fructooligosaccharides และ inulin เป็นแหล่งคาร์บอน ที่ oligomers มีน้ำหนักโมเลกุลสูงส่งเสริมการเจริญเติบโตแบคทีเรียสูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆ ด้วยน้ำหนักโมเลกุลต่ำ (Vernazza et al., 2006)ในทางกลับกันเผาผลาญโมเลกุลของคาร์โบไฮเดรตที่มีขนาดใหญ่ต้องใช้ glycosidases และกลไกขนส่งเฉพาะสำหรับผลิตภัณฑ์ไฮโตรไลซ์ (Vernazza และ al., 2006) ในแลคโตบาซิลลัสสกุล galactosidases บีอยู่เฉพาะในไซโทพลาซึม(Fortina et al., 2003) ซึ่งหมายถึงที่สำหรับการ metabolizationของ GOS แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ต้องการระบบขนส่งเพื่อhydrolyze oligosaccharides เหล่านี้ลงในเซลล์ โดยบี-galactosidasesนี้สามารถอธิบายการเจริญเติบโตช้าลงของสายพันธุ์ LC และ LD ที่ 24 ชมGOS ลูและเมื่อเทียบกับกลูโคสและ lactulose ลา GOSอย่างไรก็ตาม LP1, LP2 และ LS ค่าคล้ายกันสำหรับการเริ่มต้นเจริญเติบโตแสดงหลักฐานในการพึ่งพาต้องใช้ในการผสมกลมกลืนของแหล่งคาร์บอนนอกจากนี้ มันมีแล้วก่อนหน้านี้สังเกตที่ที่ monomericองค์ประกอบ polymerization ระดับ และชนิดของ glycosidicเชื่อมโยงส่งผลต่อการเจริญเติบโตของโปรไบโอติกส์สายพันธุ์ (Rastall et al.,2005) รับจาก Vivinal GOS หลักลา GOS ประกอบด้วยb-(1-4) ลิงค์ (Coulier et al., 2009 Rastall, 2010) และ ลู GOSประกอบด้วย b-(1-6) ถูก trisaccharide อุดมสมบูรณ์มากที่สุด 60-galactosyl-lactulose (Hernández Hernández et al., 2011) Cardelle-Cobas et al. (2011) เมื่อศึกษาผลของ trisaccharides แตกต่างกันแยกต่างหากจาก GOS ลูและ GOS ลาส่วนผสมบนแตกต่างกันสายพันธุ์แบคทีเรีย แลคโตบาซิลลัส รวมทั้งรายงานค่าสำหรับลิงค์ b-(1-6) แทน b-(1-4) อย่างไรก็ตาม ผลลัพธ์ที่ได้ในงานของเราแสดงให้เห็นว่าไม่มีความแตกต่างในการเจริญเติบโตการตอบสนองของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ใช้ GOS Lu หรือ GOS La.3.2 การผลิตกรดอะซิติก และแล็กติกทั่วไป ทุกสายพันธุ์และคาร์บอน แหล่งทดสอบ ความเข้มข้นของกรดได้สูงกว่าของกรดน้ำส้ม (ตาราง 1)แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ปลูกในกลูโคสและ lactulose สร้างสูงกว่าความเข้มข้นของกรดแลกติกลา GOS และ GOS-Luในขณะที่ระดับของกรดอะซิติกคล้ายพบทั้งหมด assayedคาร์โบไฮเดรต ยอดเงินต่ำสุดของกรดแลกติกที่ผลิตใน GOSวัฒนธรรมที่ปลูกอาจเป็น เพราะการหมักที่ช้า และนานโดยสายพันธุ์แบคทีเรีย นี้ยังอาจมีผลต่อในอัตรารอดสูงกว่าสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่โตใน GOSพื้นผิว (Fig. 1), เป็นการผลิตกรดต่ำนำไปสู่ค่า pH น้อยกว่ากรดค่า ไม่แตกต่างกัน ทั่วไป พบระหว่างเวลาฟักตัวแตกต่างกันสำหรับแต่ละคาร์โบไฮเดรต หรือระหว่างลา GOS และ GOS ลู แลกติกและกรดน้ำส้มหมักผลิตภัณฑ์ของแบคทีเรียกรดแลกติก (Lindgren และ Dobrogoszปี 1990) การลด pH กรดเหล่านี้ และดังนั้น สามารถป้องกันมากกว่าการเจริญเติบโตของแบคทีเรียในลำไส้ pathogenic(รอยและ al., 2006) สั้น ๆ กรดไขมันห่วงโซ่ (SCFA) เช่นอะซิติก และกรดแลคติเกี่ยวข้องในผลประโยชน์หลายในโฮสต์กรดอะซิติกเป็น metabolised ตามเนื้อเยื่อต่าง ๆ ที่แสดงถึงมนุษย์กระบวนการผลิตเพื่อให้ได้พลังงานจากคาร์โบไฮเดรตไม่ digestible (รอยและ al., 2006 Roberfroid et al., 2010); อย่างไรก็ตาม แล็กติก และอะซิติกกรดมีขนบธรรมเนียมประเพณี โดยสายพันธุ์ต่าง ๆ ที่อยู่ในลำไส้microbiota กรด butyric ซึ่งจะเกี่ยวข้องในการผลิตผลบวกหลายเช่นการลดความเสี่ยงมะเร็งลำไส้ใหญ่(รอยและ al., 2006 Falony และเดอ Vuyst, 2009 Roberfroid et al.,2010)ผลลัพธ์เหล่านี้สนับสนุนว่าแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์จะhydrolyze GOS ที่สังเคราะห์จากแล็กโทสและ lactulose เป็นlactulose ผลิตประโยชน์ metabolites เป็นผลิตภัณฑ์ขั้นสุดท้าย

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

3. ผลการอภิปรายและ
3.1 การเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์กับแหล่ง prebiotic
โปรไฟล์การเจริญเติบโตของหกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่แตกต่างกันในการปรากฏตัวของ lactulose, GOS-La, GOS-Lu จะแสดงในรูป
1.
กลูโคสก็รวมอยู่ในการศึกษาเพื่อการเปรียบเทียบนี้ ทุกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสเพิ่มขึ้นในช่วงแรก 24 ชั่วโมงสำหรับพื้นผิวทั้งหมด. ที่สูงขึ้นอัตราการเจริญเติบโตถูกตั้งข้อสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสและlactulose กว่าด้วย GOS-La และพื้นผิว GOS-Lu, ในขณะที่สำหรับ LP1, lp2 และ LS อัตราการเจริญเติบโตเริ่มต้นได้ คาร์โบไฮเดรตที่คล้ายกันสำหรับทุกการทดสอบและLB การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดที่ได้รับกับกลูโคส อย่างไรก็ตามหลังจากที่เวลานี้อัตราการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาเติบโตขึ้นโดยมีกลูโคสและlactulose ขณะที่ทุกสายพันธุ์คงที่หรือไม่ก็ถูกปรับเปลี่ยนเล็กน้อยกับGOS-Lu และ GOS-La การตอบสนองนี้สามารถนำมาประกอบกับเหตุผลที่แตกต่าง เป็นที่รู้จักกันว่าคาร์โบไฮเดรตที่มีความยาวโซ่อีกต่อไปหมักช้ากว่า (คัมมิ่งส์ et al., 2001) ซึ่งอยู่ในข้อตกลงกับจลนศาสตร์หมักสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสจัดแสดงในการปรากฏตัวของGOS-La และ GOS-Lu (รูปที่ 1). ในทำนองเดียวกันนี้ยังสามารถอธิบายได้ว่าการเจริญเติบโตที่สูงขึ้นเริ่มต้นสังเกต LC และ LD กับกลูโคสและ lactulose เวลา 24 ชั่วโมงของการบ่ม แต่ไม่มีความแตกต่างได้รับการตรวจพบที่น่าทึ่งระหว่าง GOS-La และ GOS-Lu สำหรับทุกครั้งที่หมักและสายพันธุ์. พฤติกรรมที่คล้ายกันได้รับก่อนหน้านี้รายงานใน bifidobacteria บางชนิดใช้คาร์บอเนตและอินนูลินเป็นแหล่งคาร์บอนที่oligomers ที่มีน้ำหนักโมเลกุลสูงการเลื่อนตำแหน่งการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆ ที่มีน้ำหนักโมเลกุลต่ำ(Vernazza et al., 2006). ในทางกลับกันการเผาผลาญคาร์โบไฮเดรตโมเลกุลขนาดใหญ่ที่ต้องใช้ของไกลโคซิเดและกลไกการขนส่งที่เฉพาะเจาะจงสำหรับผลิตภัณฑ์ไฮโดรไลซิ(Vernazza et al., 2006) ในแลคโตบาซิลลัสประเภท B-galactosidases อยู่เฉพาะในพลาสซึม (Fortina et al., 2003) ซึ่งหมายถึงว่าสำหรับ metabolization ของ GOS สายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสจำเป็นต้องมีระบบการขนส่งเพื่อย่อยสลายoligosaccharides เหล่านี้ลงในเซลล์ b-galactosidases . นี้สามารถอธิบายได้ว่าการเจริญเติบโตที่ช้าลงของ LC และสายพันธุ์ LD เวลา 24 ชั่วโมงกับGOS-Lu และ GOS-La เทียบกับกลูโคสและ lactulose; แต่สำหรับ LP1, lp2 LS และค่าที่คล้ายกันสำหรับการเจริญเติบโตเริ่มต้นให้หลักฐานสำหรับสายพันธุ์การพึ่งพาการดูดซึมของแหล่งคาร์บอน. นอกจากนี้ยังได้รับการปฏิบัติก่อนหน้านี้ว่า monomeric องค์ประกอบระดับพอลิเมอและชนิดของ glycosidic เชื่อมโยงจะมีผลต่อการเจริญเติบโตของสายพันธุ์โปรไบโอติก (Rastall et al., 2005) GOS-La ที่ได้รับจาก Vivinal-เกย์? ส่วนใหญ่ประกอบด้วยB- (1-4) การเชื่อมโยง (Coulier et al, 2009;. Rastall 2010) และ GOS-Lu ประกอบด้วย B- (1-6), เป็น trisaccharide มากที่สุด 60 galactosyl-lactulose (Hernández- Hernández et al., 2011) Cardelle- Cobas et al, (2011) เมื่อศึกษาผลกระทบของการ trisaccharides ที่แตกต่างกันที่แยกได้จากGOS-Lu และสารผสม GOS-La ที่แตกต่างกันในสายพันธุ์แบคทีเรียแลคโตบาซิลลัสรวมทั้งรายงานการตั้งค่าสำหรับการเชื่อมโยงB- (1-6) แทน B- (1-4); แต่ผลที่ได้รับในการทำงานของเราพบว่าไม่มีความแตกต่างในการตอบสนองต่อการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์โดยใช้GOS-Lu หรือ GOS-La. 3.2 แลคติคและการผลิตกรดอะซิติกโดยทั่วไปสำหรับทุกสายพันธุ์และแหล่งคาร์บอนทดสอบความเข้มข้นของกรดแลคติกสูงกว่ากรดอะซิติก(ตารางที่ 1). สายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่ปลูกในกลูโคสและ lactulose สร้างความเข้มข้นที่สูงขึ้นของกรดแลคติกกว่าGOS-La และ GOS-Lu, ในขณะที่ระดับที่คล้ายกันของกรดอะซิติกถูกพบ assayed ทั้งหมดคาร์โบไฮเดรต จำนวนเงินที่ต่ำของกรดแลคติคที่ผลิตใน GOS วัฒนธรรมที่ปลูกอาจจะเกิดจากการหมักช้าลงและเป็นเวลานานโดยสายพันธุ์แบคทีเรีย นอกจากนี้ยังอาจมีอิทธิพลต่ออัตราการรอดตายสูงขึ้นของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่ปลูกใน GOS พื้นผิว (รูปที่ 1). เป็นผลิตกรดต่ำนำไปสู่ค่า pH ที่เป็นกรดน้อยค่า ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญโดยทั่วไปในหมู่ผู้ที่ตรวจพบครั้งบ่มที่แตกต่างกันอย่างใดอย่างหนึ่งสำหรับแต่ละคาร์โบไฮเดรตหรือระหว่างGOS-La และ GOS-Lu กรดแลคติกและอะซิติกที่มีการหมักผลิตภัณฑ์ของแบคทีเรียกรดแลคติก (ลินด์เกรนและ Dobrogosz, 1990) กรดเหล่านี้ลดค่า pH จึงสามารถป้องกันการเจริญเติบโตมากกว่าของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคในลำไส้(รอย et al., 2006) กรดไขมันสายสั้น (SCFA) เช่นอะซิติกและกรดแลคติกที่มีส่วนร่วมในผลประโยชน์หลายในพื้นที่. กรดอะซิติกเป็น metabolised โดยเนื้อเยื่อของมนุษย์ที่แตกต่างกันที่เป็นตัวแทนของเส้นทางที่จะได้รับพลังงานจากคาร์โบไฮเดรตที่ไม่ย่อย(รอยet al, 2006. . Roberfroid et al, 2010); แต่แลคติกและอะซิติกกรดจะหลอมรวมสายพันธุ์ที่แตกต่างกันอยู่ในลำไส้microbiota ผลิตกรดบิวทิริกซึ่งสามารถมีส่วนร่วมในผลในเชิงบวกหลายอย่างเช่นการลดลงของความเสี่ยงของมะเร็งลำไส้ใหญ่(รอย et al, 2006;. Falony และ De Vuyst 2009 . Roberfroid, et al,. 2010) ผลการศึกษานี้สนับสนุนว่าสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสสามารถที่จะGOS ย่อยสลายสังเคราะห์จากแลคโตสและ lactulose เช่นเดียวกับlactulose ในการผลิตสารประโยชน์เป็นผลิตภัณฑ์ขั้นสุดท้าย

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

3 . ผลและการอภิปราย
3.1 . การเจริญเติบโตของเชื้อแลคโตบาซิลัสกับแหล่งที่มาพรีไบโอติก
การเจริญเติบโตโปรไฟล์ของหกสายพันธุ์ Lactobacillus ต่างๆใน
ตนของทูโลส โก ลา โกลู แสดงในรูปที่ 1 กลูโคส
ก็รวมอยู่ในการศึกษานี้เพื่อเปรียบเทียบ สายพันธุ์ Lactobacillus ทั้งหมด
เติบโตในช่วงแรก 24 ชั่วโมง
พื้นผิวทั้งหมดอัตราการเติบโตที่สูงขึ้นเป็นสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสและแลคทูโลสมากกว่าไป
LA ไปลู่พื้นผิวในขณะที่ LP1
lp2 LS , และอัตราการเจริญเติบโตเริ่มต้นคล้ายคาร์โบไฮเดรตทั้งหมด
ทดสอบและปอนด์การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดได้
กับกลูโคส อย่างไรก็ตาม หลังจากเวลานี้ อัตราการเจริญเติบโตของเชื้อ Lactobacillus
ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาเติบโตขึ้นด้วย
กลูโคสและแลคทูโลส ในขณะที่สายพันธุ์ที่คงที่หรือมีการแก้ไขเล็กน้อยกับโก
Lu และไป LA การตอบสนองนี้อาจ
เกิดจากเหตุผลที่แตกต่างกัน มันเป็นที่รู้จักกันว่าคาร์โบไฮเดรตกับ
ห่วงโซ่ยาวความยาวมีการหมักช้า ( Cummings et al . ,
2001 ) ซึ่งในข้อตกลงกับการหมักจลนพลศาสตร์ของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์
จัดแสดงในการแสดงตนของลาโก โก และลู่
( รูปที่ 1 )อนึ่ง นี้ยังไม่สามารถอธิบายเริ่มต้นการเพิ่มขึ้น
) LC และ LD กับกลูโคสและแลคทูโลสใน 24 H
ของการบ่ม อย่างไรก็ตามไม่พบความแตกต่างเด่น
ระหว่างไป LA และ QoS ลู่สำหรับครั้งหมักและสายพันธุ์ ก่อนหน้านี้ได้รับรายงานมีพฤติกรรมคล้ายกัน

ในบางชนิดบิฟิโดแบคทีเรีย ใช้ fructooligosaccharides อินนูลินเป็น
และแหล่งคาร์บอนที่หน่วยที่มีน้ำหนักโมเลกุลสูง
ส่งเสริมการเจริญเติบโตที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆที่มีน้ำหนักโมเลกุลต่ำด้วย
( เวอนาซซา et al . , 2006 ) .

แต่การเผาผลาญคาร์โบไฮเดรตโมเลกุลใหญ่ ต้องใช้ glycosidases
กลไกการขนส่งและเฉพาะผลิตภัณฑ์เอนไซม์ ( เวอนาซซา et al . , 2006 ) ในสกุลแลคโตบาซิลลัส
,การ b-galactosidases โดยเฉพาะจะอยู่ใน cytoplasm
( fortina et al . , 2003 ) ซึ่งหมายความว่าสำหรับ metabolization
ของรัฐ สายพันธุ์ Lactobacillus ต้องการระบบการขนส่งเพื่อ
, โอลิโกแซคคาไรด์เหล่านี้เข้าไปในเซลล์โดย b-galactosidases .
สามารถอธิบายการเจริญเติบโตช้าลงของ LC และ LD สายพันธุ์ที่ 24 H
กับโก Lu และ โก ลา เทียบ กับ กลูโคส และแลคทูโลส ;
อย่างไรก็ตามสำหรับ lp2 LP1 และ , LS , ค่าที่คล้ายกันสำหรับ
เริ่มต้นการเจริญเติบโตให้หลักฐานสำหรับการพึ่งพาเมื่อย assimilation ของ

แหล่งคาร์บอน นอกจากนี้ยังพบว่าองค์ประกอบก่อนหน้านี้เกิด
-
เชื่อมโยงแบบและชนิดของไกลโคซิดิกจะมีผลต่อการเจริญเติบโตของเชื้อโปรไบโอติก ( rastall et al . ,
2005 ) โก ลา ที่ได้จาก vivinal ไป  หลักประกอบด้วย