4. DiscussionCichoric acid and rosm

4. Discussion
Cichoric acid and rosmaric acid exist naturally as major
phenolic compounds in lettuce (Rajashekar et al., 2012; Becker
et al., 2013) and basil (Lee and Scagel, 2009; Taulavuori et al., 2013),
respectively. In accordance with previous studies, cichoric acid was
the most abundant phenolic compound found in red leaf lettuce
(Table 2) and similarly rosmaric acid in basil (Table 3). In
accordance with our previous study (Taulavuori et al., 2013), the
enhanced blue light increased only few of the
flavonoid
compounds in basil. This may indicate that the phenolic pool is
not the most responsive to changes in light quality in this plant
species. This is supported by the fact that terpenoid biosynthesis
may be highly increased under environmental stress in basil (Misra
et al., 2014). And indeed, the blue light has induced essential oil
production in basil, especially under blue light exposure (Amaki
et al., 2011). However, the supplemental blue light has increased
rosmaric acid concentration up to 4 fold compared to plants grown
under high sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). In the
present work, the rosmaric acid in basil was relatively high in all
treatments, but marginally decreased during the experiment in
response to the extension of the blue light period.
It has been shown that specifically red light increases the
rosmaric acid concentration in basil (Shiga et al., 2009). This
indicates that rosmaric acid biosynthesis is reactive to both blue
and red wavelengths. However, cichoric acid production was
boosted clearly by supplemental blue light in both species
(Tables 2 and 3). When compared to our previous study (Taulavuori
et al., 2013) analogous
findings may be observed in concentrationsof chlorogenic acid, p-OH cinnamic acid derivative and feruloyl-
tartaric acid in basil. There were no differences in concentrations of
these compounds between blue and red light treatments in this
study (Table 3), while supplemental blue increased these
compounds significantly compared to basil plants grown under
high sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). This indicates
that biosynthetic accumulation of these phenolic acids may be
increased both blue- and red- weighted spectra, similarly rosmaric
acid in basil.
The red leaf lettuce is known to be rich in quercetins and
chlorogenic acid (Crozier et al., 2000; Arabbi et al., 2004; Becker
et al., 2013). Total phenols, chlorogenic acid and anthocyanin
concentrations in the seedlings of this cultivar were found to be
significantly higher under blue-containing LEDs (Johkan et al.,
2010). There may exist a direct link between blue light biosynthesis
of certain phenylpropanoids through photosynthesis. Becker et al.
(2013) showed a close correlation between quercetin-glycosides
concentrations with the reducing sugar concentration indicating
that glucose might directly increase glucosylation of certain
flavonoid aglycones to their glucosides. Accordingly, concentra-
tions of two quercetin-glucosides increased in red leaf lettuce
under supplemental blue light (Table 2).
The two species investigated responded differentially in terms
of phytochemical accumulation, in accordance with the
first
hypothesis and previous literature (e.g., Julkunen-Tiitto, 1989;
Crozier et al., 1997; Pichersky et al., 2006; Cheynier et al., 2013).
Taken together, supplemental blue light increased many bioactive
compounds in red leaf lettuce, while in basil only two compounds
show this response. In addition, although cichoric acid increased
under supplemental blue light in basil, its concentration was also
relatively high under the red-weighted light. Finally, lettuce and
basil yielded a different mixture of substances. Thus, these
findings
support the hypothesis that possible responses are speciesspecific.
Consequently, the hypothesis that blue light rather than
red is behind the phenolic acid and
flavonoid biosynthesis, is only
partially supported. The species-specific difference was evident in
relation to hypothesis 3: certain
flavonoids accumulated over time
in red leaf lettuce while not in basil. However, hypothesis 4 –
according to which the developmental stage may affect the
response – can be neither supported nor rejected by the data.
In addition to the light spectrum, the species-specific responses
may also be modified by other aspects of light. For example, light
intensity may be a factor behind the regulation of these responses.
Especially dihydroxy-B ring-substituted
flavonoids (e.g., quercetin
glycosides) have been found to be up-regulated by high irradiance
(Agati et al., 2013). As the light saturation level of basil is much
higher, exceeding >1000 mmol m2 s1, compared to the respective
level (

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

4. สนทนากรด Cichoric และ rosmaric กรดมีอยู่ตามธรรมชาติเป็นหลักผักกาด (Rajashekar et al., 2012 ม่อฮ่อม Beckerร้อยเอ็ด al., 2013) ใบกะเพรา (ลีและ Scagel, 2009 Taulavuori et al., 2013),ตามลำดับ สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้ มีกรด cichoricอุดมสมบูรณ์ที่สุดฟีนอผสมพบได้ในผักกาดหอมใบแดง(ตารางที่ 2) และในทำนองเดียวกัน rosmaric กรดในกระเพรา (ตาราง 3) ในสามัคคีกับเราศึกษาก่อนหน้า (Taulavuori et al., 2013), การแสงสีน้ำเงินปรับเพิ่มขึ้นเพียงไม่กี่ของการflavonoidสารประกอบในใบโหระพา นี้อาจบ่งชี้ว่า ประเภทฟีนอไม่ที่สุดตอบสนองกับการเปลี่ยนแปลงคุณภาพแสงในพืชนี้สายพันธ์ นี้ได้รับการสนับสนุนความจริงสังเคราะห์ terpenoid ที่อาจจะเพิ่มขึ้นสูงภายใต้ความเครียดสิ่งแวดล้อมในโหระพา (Misraร้อยเอ็ด al., 2014) และแน่นอน แสงสีฟ้าได้เกิดจากน้ำมันหอมระเหยผลิตในโหระพา โดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้แสงไฟสีน้ำเงิน (Amakiร้อยเอ็ด al., 2011) อย่างไรก็ตาม แสงสีฟ้าเพิ่มเติมขึ้นความเข้มข้นกรด rosmaric ถึง 4 เท่าเมื่อเทียบกับพืชที่ปลูกภายใต้โคมไฟแรงดันในโซเดียมสูง (Taulavuori et al., 2013) ในงานนำเสนอ กรด rosmaric ในใบโหระพามีค่อนข้างสูงในทุกรักษา แต่ดีที่ลดลงในระหว่างการทดลองในตอบสนองการขยายรอบระยะเวลาที่แสงสีน้ำเงินมันมีการแสดงแสงสีแดงโดยเฉพาะเพิ่มการเข้มข้นกรด rosmaric ในโหระพา (งะ et al., 2009) นี้บ่งชี้ว่า การสังเคราะห์กรด rosmaric ที่เป็นปฏิกิริยาทั้งสีน้ำเงินและความยาวคลื่นสีแดง อย่างไรก็ตาม ถูกผลิตกรด cichoricเพิ่มขึ้นอย่างชัดเจน โดยแสงสีน้ำเงินเพิ่มเติมในทั้งสองชนิด(ตารางที่ 2 และ 3) เมื่อเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา (Taulavuoriร้อยเอ็ด al., 2013) คู่ผลการวิจัยที่อาจพบในกรด chlorogenic concentrationsof อนุพันธ์กรดทรานส์-ซินนามิก p-OH และ feruloyl-กรด tartaric ในโหระพา มีไม่มีความแตกต่างในความเข้มข้นของสารประกอบเหล่านี้ระหว่างรักษาแสงสีน้ำเงิน และสีแดงนี้ศึกษา (ตาราง 3), ในขณะที่สีน้ำเงินเสริมเพิ่มขึ้นเหล่านี้อย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับพืชใบโหระพาที่ปลูกภายใต้สารโซเดียมสูงความดันโคม (Taulavuori et al., 2013) บ่งชี้biosynthetic สะสมกรดฟินอลิเหล่านี้อาจจะเพิ่มขึ้นทั้งบลู - และแดง-ถ่วงน้ำหนักแรมสเป็คตรา ในทำนองเดียวกัน rosmaricกรดในกระเพราเรียกว่าผักกาดหอมใบแดงอุดมไป ด้วย quercetins และกรด chlorogenic (Crozier et al., 2000 Arabbi et al., 2004 Beckerร้อยเอ็ด al., 2013) Phenols รวม กรด chlorogenic และมีโฟเลทสูงพบความเข้มข้นในการกล้าไม้ของ cultivar นี้จะอย่างมีนัยสำคัญสูงภายใต้สีฟ้า-ประกอบด้วยไฟ Led (Johkan et al.,2010. อาจมีการเชื่อมโยงโดยตรงระหว่างการสังเคราะห์แสงสีน้ำเงินของบาง phenylpropanoids ผ่านการสังเคราะห์ด้วยแสง Becker et al(2013) แสดงให้เห็นความสัมพันธ์ใกล้ชิดระหว่าง quercetin glycosidesความเข้มข้น ด้วยการลดน้ำตาลระบุความเข้มข้นกลูโคสที่อาจเพิ่ม glucosylation ของบางอย่างโดยตรงaglycones flavonoid เพื่อ glucosides ของพวกเขา ตาม concentra-tions glucosides quercetin สองเพิ่มขึ้นในผักกาดหอมใบแดงภายใต้เติมสีฟ้าแสง (ตาราง 2)ชนิดสองตรวจสอบตอบสนอง differentially ในเงื่อนไขของสะสมสารพฤกษเคมี ในกับการครั้งแรกสมมติฐานและวรรณกรรมก่อนหน้า (เช่น Julkunen-Tiitto, 1989Crozier et al., 1997 Pichersky และ al., 2006 Cheynier et al., 2013)ถ่ายด้วยกัน เติมสีน้ำเงินไฟเพิ่มหลายกรรมการกสารประกอบในผักกาดหอมใบแดง ในสารเพียงสองใบโหระพาแสดงคำตอบ นอกจากนี้ แม้ว่าการเพิ่มขึ้นของกรด cichoricภายใต้เติมสีแสงในโหระพา สมาธิที่ยังเป็นค่อนข้างสูงภายใต้แสงสีแดงที่ถ่วงน้ำหนัก สุดท้าย ผักกาดหอม และใบโหระพาหาส่วนผสมที่แตกต่างกันของสาร ดังนั้น เหล่านี้พบสนับสนุนสมมติฐานที่ว่า ตอบรับได้ speciesspecificดังนั้น สมมติฐานที่บลูไฟ rather กว่าสีแดงอยู่หลังกรดฟีนอ และการสังเคราะห์ flavonoid เป็นบางส่วนได้รับการสนับสนุน Species-specific ความแตกต่างเห็นได้ชัดความสัมพันธ์กับสมมติฐาน 3: แน่นอนflavonoids สะสมเวลาในผักกาดหอมใบแดงไม่ในใบโหระพา อย่างไรก็ตาม สมมติฐาน 4 –ตามซึ่งอาจส่งผลต่อระยะการพัฒนาตอบ – จะไม่สามารถได้รับการสนับสนุน หรือปฏิเสธข้อมูลนอกจากสเปกตรัมแสง การตอบสนอง species-specificอาจยังสามารถปรับเปลี่ยนตามลักษณะด้านอื่นของแสง ตัวอย่าง ไฟความเข้มอาจเป็นปัจจัยที่อยู่เบื้องหลังควบคุมตอบสนองเหล่านี้โดยเฉพาะอย่างยิ่ง dihydroxy-B แทนแหวนflavonoids (เช่น quercetinglycosides) พบจะกำหนดขึ้น โดย irradiance สูง(Agati et al., 2013) เป็นระดับความเข้มแสงของใบโหระพามากสูง เกิน > 1000 mmol m 2 s 1 เปรียบเทียบกับที่เกี่ยวข้องระดับ (< s m 2 mmol 300 – 400 1) ของผักกาดหอม (เช่น Kitaya และ al., 1998ช้างร้อยเอ็ด al., 2008), เป็นที่เข้าใจว่า ใบกะเพราไม่เป็นตอบสนองต่อการรักษาทดลองเป็นผักกาดหอมภายใต้การความเข้มแสงให้ (300 mmol m 2 s 1) ควรจดจำผักกาดหอมใบแดงนั้นเป็น bred สำหรับการผลิตสูงanthocyanins เม็ดสีทำให้เกิดสีแดง และการให้ป้องกันเพิ่มเติมกับความเข้มแสงสูงมีไม่ต่างยิง elongation ของจริงโหระพาที่ปลูกภายใต้การถ่วง น้ำหนักสีแดง หรือสีฟ้ามีอำนาจเหนือแสง(Fig. 4) ผลลัพธ์นี้เป็นไปตามการเจริญเติบโตเมื่อผลของแสงสีแดงที่พบ (Ballar e, 2014 และอ้างอิง therein),และสรุปว่า เอาไฟสีน้ำเงินเพิ่ม elongationหลายชนิด (Sarala et al., 2011) ในสนสก็อทส์กล้าไม้สังเกตก้าน elongation เป็นความคิดที่จะ เป็น photomorphogenicตอบ ซึ่งไม่ขึ้นอยู่กับการสะสมหรือการแลกเปลี่ยนก๊าซเจริญเติบโตของทรัพยากร (Sarala et al., 2009) ปฏิกิริยาเหล่านี้อาจสามารถอธิบายความflavonoids ผ่าน coumaroyl p เปลี่ยนแปลง CoAเผาผลาญที่เป็นสื่อกลางตอบสนอง photomorphogenic (เช่น บริกส์Huala, 1999 และ Folta และ Spalding, 2001 สวนสาธารณะและ al., 2001)Flavonoids และ monolignols สังเคราะห์ ด้วยสองแตกต่างกันเส้นทาง: ถ้าสังเคราะห์ quercetin และอื่น ๆเพิ่ม flavonoidsภายใต้แสงสีฟ้า มันอาจจะลดลง monolignolsความจำเป็นในการสังเคราะห์ lignin นี้อาจทำให้เกิดการเจริญเติบโตลดลงผ่าน chalcone synthase กิจกรรมและออกซินขนส่งผลกระทบต่อการในความเป็นจริง Besseau et al. (2007) แสดงให้เห็นว่าการปราบปราม ligninสังเคราะห์ใน Arabidopsis thaliana นำไปสู่การแสงควบคุมเปลี่ยนเส้นทางของการเผาผลาญฟลักซ์เป็นflavonoids และพวกเขาสรุปว่า phenotype ลดขนาดของพืชครบกำหนดการปรากฏตัวของflavonoids นอกจากนี้ ยับยั้งการแทนนินบีบทางเดินที่นำไปสู่การสะสมของการสารก่อนมนต์ phenylpropanoid (Kosonenร้อยเอ็ด al., 2015) เพิ่มมีความแข็งแรงโดยเฉพาะอย่างยิ่งในflavonolตราสารอนุพันธ์ เช่น quercetins ซึ่งเป็นที่รู้จักกันจะเป็นผู้ม่อฮ่อมอยู่มากที่สุดใน perturbing ออกซินขนส่ง นอกจากนี้flavonoids ได้ถูกแสดงเป็นในนิวเคลียสที่อาจควบคุม transcription ของยีนเกี่ยวข้องในการเจริญเติบโตและการพัฒนา (เช่น Saslowsky et al., 2005)สำหรับแนวโน้มในอนาคต เป็นที่น่าสนใจระบุในรายละเอียดเพิ่มเติมช่วงหรือช่วงของแสงสีน้ำเงินที่เป็น inducible สำหรับการการสังเคราะห์การกำหนดกรด flavonoid หรือฟีนอ แน่นอนคำถามที่เกี่ยวข้องกับรังสี UV เช่นกัน ตั้งแต่ทั้ง UV A(เช่น Wilson et al., 2001) และรังสี UV-B (เช่น Gerhardt et al.,ปรับเปลี่ยน 2008)บทประพันธ์ flavonoid เอนไซม์อยู่เบื้องหลังflavo-การสังเคราะห์ noid เป็น chalcone synthase (CHS), และมันจะแสดงที่รังสี UV-A และ inductions แสงสีน้ำเงินในนิพจน์ CHSmediated โดย cryptochrome (cry1) (เวดและ al., 2001) Phenylala-เก้า สารตั้งต้นในการสังเคราะห์ flavonoid จำเป็นสำหรับเฉพาะตอบพัฒนา mediated โดยรังสี (แวน et al.,2014) ก็ยังรู้จัก รังสี UV-B ที่จำกัดการเจริญเติบโต และการเปลี่ยนแปลงสัณฐานวิทยาของพืช (เช่น Teramura และซัลลิแวน 1994), เช่น การเปลี่ยนยังตอบสนองต่อสีฟ้าแสง (เช่น Sarala et al., 2011)เบียดเบียน การศึกษานี้สนับสนุนการทำงานก่อนหน้านี้ ตามซึ่งการflavonoid และสังเคราะห์กรดฟีนอในพืชชนิดขึ้นอยู่กับที่ (พันธุกรรม) อย่างไรก็ตาม การจัดการการสเปกตรัมแสงสิ่งแวดล้อมอาจเพิ่มการสังเคราะห์ของบางผลิตภัณฑ์ พันธุ์การศึกษา ผักกาดหอมใบแดงถูกมากตอบสนองต่อแสงสีน้ำเงินเพิ่มเติม แสงสีฟ้าเพิ่มเติมเพิ่มการผลิตสารเหล่านี้โดยเฉพาะอย่างยิ่งในใบไม้สีแดงผักกาดหอม ในขณะที่แสงสีน้ำเงิน และสีแดงอาจควบคุมของพวกเขาการผลิตในใบโหระพา สะสมของสารที่ตรวจพบเป็นฟังก์ชันของเวลาภายใต้เพิ่มเติมอย่างต่อเนื่องแสงสีน้ำเงิน ในผักกาดหอมใบแดง แต่ไม่ใช่ ในโหระพา

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

4. อภิปราย
Cichoric กรดและกรด rosmaric
มีอยู่ตามธรรมชาติที่สำคัญเป็นสารประกอบฟีนอลในผักกาดหอม(Rajashekar et al, 2012;. เบกเกอร์
et al, 2013.) และใบโหระพา (ลีและ Scagel 2009;. Taulavuori et al, 2013)
ตามลำดับ สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้ากรด cichoric
เป็นสารประกอบฟีนอลที่มีมากที่สุดที่พบในผักกาดหอมใบสีแดง
(ตารางที่ 2) และกรด rosmaric ในทำนองเดียวกันในโหระพา (ตารางที่ 3) ในสอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา (Taulavuori et al., 2013) ซึ่งเป็นแสงสีฟ้าที่เพิ่มขึ้นเพิ่มขึ้นไม่กี่เท่านั้นflavonoid สารในใบโหระพา นี้อาจบ่งชี้ว่าสระว่ายน้ำฟีนอลคือไม่ตอบสนองมากที่สุดต่อการเปลี่ยนแปลงในคุณภาพแสงในพืชชนิดนี้สายพันธุ์ นี้ได้รับการสนับสนุนจากข้อเท็จจริงที่ว่าการสังเคราะห์ terpenoid อาจจะเพิ่มขึ้นอย่างมากภายใต้ความเครียดสิ่งแวดล้อมในโหระพา (Misra et al., 2014) และแน่นอนแสงสีฟ้าที่มีการเหนี่ยวนำน้ำมันหอมระเหยการผลิตในโหระพาโดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้แสงสีฟ้า (Amaki et al., 2011) แต่แสงสีฟ้าเสริมได้เพิ่มความเข้มข้นของกรด rosmaric ถึง 4 เท่าเมื่อเทียบกับพืชที่ปลูกภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง(Taulavuori et al., 2013) ในการทำงานปัจจุบันกรด rosmaric ในโหระพาค่อนข้างสูงในทุกการรักษาแต่ลดลงเล็กน้อยในช่วงการทดลองในการตอบสนองต่อการขยายระยะเวลาแสงสีฟ้า. จะได้รับการแสดงให้เห็นว่าแสงสีแดงโดยเฉพาะเพิ่มความเข้มข้นของกรด rosmaric ในโหระพา ( Shiga et al., 2009) นี้แสดงให้เห็นว่าการสังเคราะห์กรด rosmaric เป็นปฏิกิริยาทั้งสีฟ้าความยาวคลื่นและสีแดง อย่างไรก็ตามการผลิตกรด cichoric ได้เพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัดด้วยแสงสีฟ้าเสริมในทั้งสองชนิด(ตารางที่ 2 และ 3) เมื่อเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา (Taulavuori et al., 2013) คล้ายการค้นพบอาจจะสังเกตเห็นในกรดchlorogenic concentrationsof, p-OH อนุพันธ์กรดซินนามิกและ feruloyl- กรดทาร์ทาริกในใบโหระพา ไม่มีความแตกต่างในระดับความเข้มข้นของการมีสารเหล่านี้ระหว่างการรักษาแสงสีฟ้าและสีแดงในการศึกษา(ตารางที่ 3) ในขณะที่สีฟ้าเสริมที่เพิ่มขึ้นเหล่านี้สารประกอบอย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับพืชที่ปลูกโหระพาภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง(Taulavuori et al., 2013) นี้แสดงให้เห็นว่าการสะสมชีวสังเคราะห์ของกรดฟีนอลเหล่านี้อาจจะเพิ่มขึ้นทั้งสีฟ้าและสีแดงสเปกตรัมถ่วงน้ำหนักrosmaric ในทำนองเดียวกันกรดในกระเพรา. ผักกาดหอมใบสีแดงเป็นที่รู้จักกันจะอุดมไปด้วย quercetins และกรดchlorogenic (Crozier et al, 2000;. Arabbi et al, 2004;. Becker. et al, 2013) ฟีนอลรวม, กรด chlorogenic และ anthocyanin ความเข้มข้นในต้นกล้าพันธุ์นี้พบว่ามีนัยสำคัญสูงภายใต้ไฟ LED สีฟ้าที่มี (Johkan et al., 2010) อาจมีการเชื่อมโยงโดยตรงระหว่างการสังเคราะห์แสงสีฟ้าของ phenylpropanoids บางอย่างผ่านการสังเคราะห์ Becker et al. (2013) พบว่ามีความสัมพันธ์ที่ใกล้ชิดระหว่าง quercetin-ไกลโคไซด์ที่ความเข้มข้นที่มีความเข้มข้นน้ำตาลลดการแสดงให้เห็นว่าระดับน้ำตาลโดยตรงอาจเพิ่มglucosylation ของบางaglycones flavonoid เพื่อ glucosides ของพวกเขา ดังนั้นความเข้มข้นtions สอง quercetin-glucosides ที่เพิ่มขึ้นในผักกาดหอมใบสีแดงภายใต้แสงสีฟ้าเสริม(ตารางที่ 2). ทั้งสองสายพันธุ์ที่ตรวจสอบการตอบสนองแตกต่างกันในแง่ของการสะสมสารพฤกษเคมีในสอดคล้องกับครั้งแรกสมมติฐานและวรรณกรรมก่อนหน้า(เช่น Julkunen- Tiitto 1989; Crozier, et al, 1997;. Pichersky et al, 2006;... Cheynier et al, 2013) ที่ร่วมกันแสงสีฟ้าเสริมเพิ่มขึ้นออกฤทธิ์ทางชีวภาพหลายสารประกอบในผักกาดหอมใบสีแดงในขณะที่ในใบโหระพาเพียงสองสารแสดงการตอบสนองนี้. นอกจากนี้แม้ว่ากรด cichoric เพิ่มขึ้นภายใต้แสงสีฟ้าในเสริมโหระพาความเข้มข้นก็ยังค่อนข้างสูงภายใต้แสงสีแดงน้ำหนัก สุดท้ายผักกาดหอมและใบโหระพาให้ผลที่แตกต่างกันมีส่วนผสมของสาร ดังนั้นเหล่านี้ผลการวิจัยสนับสนุนสมมติฐานที่ว่าการตอบสนองที่เป็นไปได้speciesspecific. ดังนั้นสมมติฐานที่ว่าแสงสีฟ้ามากกว่าสีแดงเป็นผู้อยู่เบื้องหลังกรดฟีนอลและการสังเคราะห์flavonoid, เป็นเพียงการได้รับการสนับสนุนบางส่วน ความแตกต่างชนิดที่เฉพาะเจาะจงได้ชัดในความสัมพันธ์กับสมมติฐานที่ 3: บาง flavonoids สะสมในช่วงเวลาในผักกาดหอมใบสีแดงในขณะที่ไม่ได้อยู่ในใบโหระพา อย่างไรก็ตามสมมติฐานที่ 4 - ตามที่ขั้นตอนการพัฒนาอาจมีผลต่อการตอบสนอง -. สามารถไม่ได้รับการสนับสนุนหรือปฏิเสธโดยข้อมูลนอกเหนือจากคลื่นแสงที่ตอบสนองชนิดเฉพาะนอกจากนี้ยังอาจมีการเปลี่ยนแปลงโดยด้านอื่นๆ ของแสง ยกตัวอย่างเช่นแสงความเข้มอาจจะเป็นปัจจัยที่อยู่เบื้องหลังการควบคุมการตอบสนองเหล่านี้. โดยเฉพาะอย่างยิ่งแหวนแทน dihydroxy-B flavonoids (เช่น quercetin ไกลโคไซด์) ได้รับพบว่าจะขึ้นควบคุมโดยรังสีสูง(Agati et al., 2013) ในฐานะที่เป็นระดับความอิ่มตัวของสีแสงของใบโหระพาเป็นอย่างมากที่สูงขึ้นเกิน> 1,000 มิลลิโม m? 2 วินาที 1 เมื่อเทียบกับแต่ละระดับ(<300-400 มิลลิโมลม. 2 หรือไม่? 1) ของผักกาดหอม (เช่น Kitaya et al., 1998; ช้าง, et al, 2008) เป็นที่เข้าใจว่าใบโหระพาไม่ได้เป็น. ตอบสนองต่อการรักษาเป็นผักกาดหอมทดลองภายใต้ความเข้มของแสงที่จัด (300 มิลลิโมลม. 2 วินาที 1)? มันควรจะจำได้ว่าผักกาดหอมใบสีแดงเป็นพันธุ์สำหรับการผลิตสูงanthocyanins สีที่ทำให้เกิดสีแดงและการให้ความคุ้มครองต่อไปกับความเข้มของแสงสูง. มีความแตกต่างกันในทางปฏิบัติในการยืดตัวยิงของโหระพาปลูกภายใต้สีแดงน้ำหนักหรือสีฟ้าแสงเหนือ(รูปที่. 4) ผลที่ได้นี้เป็นไปตามการเติบโตของการยับยั้งผลกระทบของแสงสีแดงพบโดย (Ballar? อีปี 2014 และการอ้างอิงนั้น) และสรุปว่าการกำจัดของแสงสีฟ้าที่เพิ่มขึ้นการยืดตัวของหลายชนิด (Sarala et al., 2011) ในต้นกล้าสนสก็อตการยืดตัวต้นกำเนิดที่สังเกตเป็นความคิดที่จะเป็น photomorphogenic การตอบสนองที่ไม่ขึ้นอยู่กับการแลกเปลี่ยนก๊าซหรือการสะสมของทรัพยากรการเจริญเติบโต (Sarala et al., 2009) ปฏิกิริยาเหล่านี้อาจจะอธิบายได้ด้วยflavonoids ผ่านการเปลี่ยนแปลงพี coumaroyl CoA การเผาผลาญ mediating การตอบสนอง photomorphogenic (เช่นบริกส์และ Huala 1999; Folta และสปัลดิง 2001 สวนสาธารณะ et al, 2001).. Flavonoids และ monolignols มีการสังเคราะห์โดยแตกต่างกันสองเส้นทาง: ถ้าการสังเคราะห์สาร quercetin และอื่น ๆ ที่flavonoids จะเพิ่มขึ้นภายใต้แสงไฟสีฟ้าอาจนำไปสู่การลดลงของmonolignols ที่จำเป็นต้องใช้ในการสังเคราะห์ลิกนิน ซึ่งอาจทำให้เกิดการเจริญเติบโตลดลงผ่านส่งผลกระทบต่อกิจกรรมเทส chalcone และการขนส่งออกซิน. ในความเป็นจริง Besseau et al, (2007) แสดงให้เห็นว่าการปราบปรามของลิกนินสังเคราะห์ในArabidopsis thaliana นำไปสู่แสงที่ควบคุมการเปลี่ยนเส้นทางของการเผาผลาญของฟลักซ์เข้าflavonoids และพวกเขาได้ข้อสรุปว่าฟีโนไทป์ลดขนาดของพืชที่เกิดจากการปรากฏตัวของflavonoids นอกจากนี้การยับยั้งของทางเดินแทนนินข้นนำไปสู่การสะสมของสารที่ก่อนหน้านี้ทางเดินphenylpropanoid นี้ (Kosonen et al., 2015) เพิ่มขึ้นโดยเฉพาะอย่างยิ่งที่แข็งแกร่งในflavonol อนุพันธ์เช่น quercetins ซึ่งเป็นที่รู้จักกันในหมู่สารประกอบฟีนอลในการใช้งานมากที่สุดออกซินก่อกวนการขนส่ง นอกจากนี้flavonoids ได้รับการแสดงที่จะตั้งอยู่ในนิวเคลียสที่พวกเขาอาจจะควบคุมการถอดรหัสของยีนที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและการพัฒนา(เช่น Saslowsky et al., 2005). สำหรับแนวโน้มในอนาคตเป็นที่น่าสนใจในการระบุในรายละเอียดเพิ่มเติมได้ที่หรือช่วงจุดสูงสุดของแสงสีฟ้าเป็น inducible สำหรับการสังเคราะห์ของให้เฉพาะกรดflavonoid หรือฟีนอล อันที่จริงคำถามที่เกี่ยวข้องกับรังสียูวีได้เป็นอย่างดีเพราะทั้งสอง UV-A (เช่นวิลสัน et al., 2001) และรังสียูวี-B (เช่น Gerhardt et al., 2008) การปรับเปลี่ยนองค์ประกอบflavonoid เอนไซม์หลังflavo- สังเคราะห์หวาดระแวงเป็นเทส chalcone (CHS) และมันแสดงให้เห็นว่าUV-A และรังสี inductions แสงสีฟ้าในการแสดงออกของ CHS มีการไกล่เกลี่ยโดยcryptochrome (cry1) (เวด et al., 2001) Phenylala- เก้าสารตั้งต้นในการสังเคราะห์ flavonoid, เป็นสิ่งจำเป็นสำหรับเฉพาะการตอบสนองการพัฒนาไกล่เกลี่ยโดยรังสียูวี(ซัลลิแวน et al., 2014) นอกจากนี้ยังเป็นที่รู้จักกันดีว่าการเติบโตของข้อ จำกัด ของรังสี UV-B และalters ลักษณะทางสัณฐานวิทยาของพืช (เช่น Teramura และซัลลิแวน, 1994) กล่าวคือการเปลี่ยนแปลงนอกจากนี้ยังตอบสนองต่อแสงสีฟ้า(เช่น Sarala et al., 2011). สรุป การศึกษานี้สนับสนุนการทำงานก่อนหน้านี้ตามที่การสังเคราะห์กรดflavonoid และฟีนอลในพืชที่มีสายพันธุ์(พันธุกรรม) ขึ้นอยู่กับ แต่การจัดการของคลื่นแสงสิ่งแวดล้อมอาจช่วยเพิ่มการสังเคราะห์ของบางผลิตภัณฑ์ ของสายพันธุ์ศึกษาผักกาดหอมใบสีแดงได้มากขึ้นเพื่อตอบสนองแสงสีฟ้าเสริม แสงสีฟ้าเสริมเพิ่มการผลิตของสารเหล่านี้โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสีแดงใบผักกาดหอมในขณะที่ทั้งแสงสีฟ้าและสีแดงของพวกเขาอาจจะควบคุมการผลิตในใบโหระพา บางส่วนของการตรวจพบสารสะสมอย่างต่อเนื่องเป็นหน้าที่ของเวลาที่ใช้เสริมภายใต้แสงสีฟ้าในผักกาดหอมใบสีแดงแต่ไม่ได้อยู่ในใบโหระพา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

4 . การอภิปราย
cichoric กรดและกรด rosmaric โดยธรรมชาติเป็นหลัก
สารประกอบฟีนอลในผักกาดหอม ( rajashekar et al . , 2012 ; Becker
et al . , 2013 ) และโหระพา ( ลี และ scagel , 2009 ; taulavuori et al . , 2013 )
) ตามการศึกษา cichoric กรดคือ
ดาษดื่นมาก สารประกอบฟีนอลิก พบในสีแดงใบผักกาดหอม
( ตารางที่ 2 ) และในทำนองเดียวกัน rosmaric กรดในกะเพรา ( ตารางที่ 3 ) ใน
สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา ( taulavuori et al . , 2013 ) ,
เพิ่มสีฟ้าเพิ่มขึ้นเพียงไม่กี่ของสารประกอบฟลาโวนอยด์

ในใบโหระพา นี้อาจบ่งชี้ว่าเป็นสระ ฟีนอล
ไม่ตอบสนองมากที่สุด เพื่อการเปลี่ยนแปลงคุณภาพแสงในพืช
ชนิดนี้ นี้สนับสนุนโดยข้อเท็จจริงที่ว่า เทอร์ปีนอยด์ใน
อาจจะเพิ่มขึ้นอย่างมากภายใต้ความเครียดสิ่งแวดล้อมในโหระพา ( มิสรา
et al . ,2014 ) และแน่นอน , ฟ้าได้กระตุ้นการผลิตน้ำมัน
จำเป็นในโหระพา โดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้แสงไฟสีฟ้า ( amaki
et al . , 2011 ) อย่างไรก็ตาม สีฟ้า เสริมเพิ่มขึ้น
rosmaric ความเข้มข้นของกรดได้ถึง 4 เท่า เมื่อเทียบกับพืชที่ปลูก
ภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง ( taulavuori et al . , 2013 ) ใน
งานในปัจจุบันกรดในกระเพรา rosmaric ค่อนข้างสูงในทุก
การรักษา แต่เทียบลดลงในระหว่างการทดลอง
การขยายระยะเวลาฟ้า .
มันได้ถูกแสดงว่าสีแดงโดยเฉพาะแสงเพิ่มความเข้มข้นของกรดในกระเพรา rosmaric
( ชิงะ et al . , 2009 ) นี้บ่งชี้ว่า กรดใน rosmaric

มีทั้งสีฟ้าและสีที่มีความยาวคลื่นสีแดง อย่างไรก็ตาม การผลิตกรด cichoric คือ
เพิ่มขึ้นอย่างชัดเจน โดยฟ้าเสริมทั้ง 2 ชนิด
( ตารางที่ 2 และ 3 ) เมื่อเปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา ( taulavuori
et al . , 2013 ) ที่คล้ายกัน
ค้นพบอาจจะสังเกตได้ในระดับ p-oh ซินนามิกกรด chlorogenic acid อนุพันธ์ และ feruloyl -
กรด tartaric ในใบโหระพา ไม่มีความแตกต่างในความเข้มข้นของสารประกอบเหล่านี้ระหว่างสีฟ้าและการรักษา

ไฟสีแดงในนี้การศึกษา ( ตารางที่ 3 ) ในขณะที่การเพิ่มสารประกอบเหล่านี้
สีฟ้าอย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับโหระพาที่ปลูกภายใต้
โคมไฟโซเดียมความดันสูง ( taulavuori et al . , 2013 ) นี้บ่งชี้ว่าการสะสมของกรดฟีนอล

เหล่านี้อาจเพิ่มขึ้นทั้งสีน้ำเงินและสีแดง - น้ำหนักแสงเหมือนกับ rosmaric

กรดในกะเพรา ใบผักกาดหอมสีแดงเป็นที่รู้จักกันใน quercetins
รวยและกรดคลอโรเจนิก ( crozier et al . , 2000 ; arabbi et al . , 2004 ; Becker
et al . , 2013 ) ฟีนอลทั้งหมด , chlorogenic acid ความเข้มข้น และแอนโธไซยานิน
ต้นกล้าพันธุ์ พบว่า มีค่าสูงกว่าภายใต้ที่มีไฟ LED สีฟ้า
( johkan et al . ,
2010 ) อาจมีอยู่การเชื่อมโยงโดยตรงระหว่างแสงสีฟ้าใน
บาง phenylpropanoids ผ่านการสังเคราะห์แสง เบคเกอร์ et al .
( 1 ) แสดงความสัมพันธ์ระหว่างปริมาณเควอซิติน ใกล้ไกลโคไซด์ที่มีความเข้มข้นของน้ำตาลรีดิวซ์

ที่แสดงอาจโดยตรงเพิ่มกลูโคส glucosylation บาง
ฟลาโวนอย aglycones เพื่อกลูโคไซด์ของตน ตาม ครุ่นคิด -
ยินดีด้วยสองเควอ กลูโคไซด์ที่เพิ่มขึ้นในสีแดงใบผักกาดหอม
ภายใต้เสริมฟ้า
( ตารางที่ 2 )สองชนิดที่แตกต่างกันเพื่อตอบสนองในแง่
ของพฤกษเคมีที่สะสม ตามสมมติฐานแรก

และวรรณคดีก่อนหน้านี้ ( เช่น julkunen tiitto , 1989 ;
crozier et al . , 1997 ; pichersky et al . , 2006 ; cheynier et al . , 2013 ) .
ถ่ายด้วยกัน สีฟ้า เสริมเพิ่ม สาร สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ
มากมายในผักกาดหอมใบแดง , ในขณะที่ในเพียงสองสารประกอบ
กระเพราแสดงการตอบสนองนี้ นอกจากนี้ แม้ว่า cichoric กรดเพิ่มขึ้น
ภายใต้ฟ้าเสริม ในกระเพรา ความเข้มข้นของมันยัง
ค่อนข้างสูงภายใต้แสงถัวแดง ในที่สุด , ผักกาดหอมและใบโหระพา ให้ผลแตกต่างกัน
ผสมสาร ซึ่งสนับสนุนสมมติฐานที่ว่า การตอบสนองที่เป็นไปได้ speciesspecific ค้นพบเหล่านี้

.
ดังนั้นสมมติฐานว่าฟ้ามากกว่า
สีแดงอยู่ข้างหลัง กรดฟีโนลิก และ ฟลาโวนอยด์ใน

เป็นเพียงบางส่วนได้รับการสนับสนุน ความแตกต่างเฉพาะ - ขยายพันธุ์ได้ชัดเจนในความสัมพันธ์กับสมมติฐานที่ 3 :


บาง flavonoids สะสมตลอดเวลาในผักกาดหอมใบสีแดงในขณะที่ไม่อยู่ในใบโหระพา อย่างไรก็ตาม สมมติฐานที่ 4 –
ตามขั้นพัฒนาการ ซึ่งอาจมีผลต่อการตอบสนอง มีทั้งไม่รองรับ

หรือปฏิเสธโดยข้อมูลนอกจากการตอบสนองสเปกตรัมแสง
เผ่าพันธุ์ - เฉพาะอาจจะแก้ไขโดยด้านอื่น ๆของแสง ตัวอย่างเช่น ความเข้มแสง
อาจเป็นปัจจัยเบื้องหลังระเบียบของการตอบสนองเหล่านี้ โดยเฉพาะอย่างยิ่ง dihydroxy-b แทน

แหวนฟลาโวนอยด์ ( เช่น quercetin
glycosides ) ได้ค้นพบว่าสามารถกระตุ้นโดย
ดังกล่าวสูง ( agati et al . , 2013 )เป็นแสงความเข้มระดับกระเพรามาก
สูงเกิน 1000 mmol m  2 s  1 , เมื่อเทียบกับระดับ
( < 300 – 400 mmol m  2 s  1 ) ผักกาดหอม ( เช่น คิทายะ et al . , 1998 ;
ชาง et al . , 2008 ) , เป็นที่เข้าใจกันว่าโหระพาไม่ได้
เพื่อตอบสนองการทดลองรักษา เช่น ผักกาดหอม ภายใต้ความเข้มแสง ( 300 มิลลิโมลา
2 S M   1 ) มันควรจะจำได้
สีแดงใบผักกาดหอมเป็นพันธุ์สำหรับการผลิตของแอนโทไซยานินสูง
, เม็ดสีทำให้สีแดง ให้คุ้มครองเพิ่มเติมต่อความเข้มแสงสูง
.
มีจริงไม่มีความแตกต่างในการยิง การยืดตัวของโหระพาที่ปลูกภายใต้น้ำหนัก
สีแดงหรือสีฟ้าควบคุมแสง
( รูปที่ 4 ) ผลที่ได้นี้จะสอดคล้องกับการปราบปราม ผลจากแสงแดงที่พบโดย ( ballar
E , 2014 ,อ้างอิง )
และบทสรุปที่การกำจัดฟ้าเพิ่มการยืดตัว
หลายชนิด ( Sarala et al . , 2011 ) ในพันทิป สน ต้นกล้า
สังเกตลำต้นยืดตัวคิดว่าเป็นคำตอบ photomorphogenic
ซึ่งไม่ได้ขึ้นอยู่กับการแลกเปลี่ยนก๊าซ หรือการสะสม
ทรัพยากรการเจริญเติบโต ( Sarala et al . , 2009 ) ปฏิกิริยาเหล่านี้อาจอธิบายด้วย

ฟลาโวนอยด์ ผ่านการเปลี่ยนแปลง p-coumaroyl COA
การเผาผลาญขณะ photomorphogenic ( เช่นการตอบสนองและบริกส์
huala , 1999 ; โฟต้า และ Spalding , 2001 ; สวนสาธารณะ et al . , 2001 ) และมี monolignols
ฟลาโวนอยด์ที่สังเคราะห์จากสองเส้นทางที่แตกต่างกัน
: ถ้าการสังเคราะห์เคอร์และ flavonoids อื่นๆ

เพิ่มภายใต้แสงสีฟ้าก็อาจจะนำไปสู่ลดลงใน monolignols
ใช้ลิกนินใน .นี้อาจทำให้เกิดการลดลงของกิจกรรม และมีผลต่อ chalcone
ผ่านและการขนส่งออกซิน .
ในความเป็นจริง besseau et al . ( 2007 ) พบว่า การปราบปรามของการสังเคราะห์ลิกนิน
ใน Arabidopsis thaliana นำไปสู่แสงควบคุมการเปลี่ยนเส้นทางของการสลาย



เป็นฟลาโวนอยด์ และสรุปได้ว่า การลดขนาดของพืชเนื่องจากการปรากฏตัวของฟลาโวนอยด์

. นอกจากนี้การยับยั้ง
สารแทนนินทางเดินนำไปสู่การสะสมของสารประกอบที่มีทางเดิน phenylpropanoid (

kosonen et al . , 2015 ) การเพิ่มความแข็งแรงโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน
3
( ตัวอย่างเช่น quercetins ซึ่งเป็นที่รู้จักที่จะใช้งานมากที่สุดของ

ในใจงั้นออกซินสารประกอบฟีนอลในการขนส่ง โดย
flavonoids ได้รับการแสดงที่จะอยู่
ในนิวเคลียสที่พวกเขาอาจจะควบคุมการถอดรหัสของยีนที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและการพัฒนา
( เช่น saslowsky et al . , 2005 ) .
สำหรับอนาคต มันเป็นที่น่าสนใจที่จะศึกษาในรายละเอียดเพิ่มเติม
ซึ่งหรือช่วง peak ของแสงสี inducible สำหรับการสังเคราะห์ให้เฉพาะ

ฟลาโวนอยด์ หรือ ฟีโนลิก กรด แน่นอน
คำถามข้อสงสัย รังสี UV ได้เป็นอย่างดี เนื่องจากทั้งรังสียูวี เอ
( เช่นวิลสัน et al . , 2001 ) และรังสียูวี - ข ( เช่น เกอร์ฮาร์ด et al . ,

ฟลาโวนอย 2008 ) ปรับเปลี่ยนองค์ประกอบ เอนไซม์ไว้
-
คนหวาดระแวงใน flavo เป็น chalcone synthase ( CHS ) และมันแสดงให้เห็นว่ารังสีรังสียูวี เอ และ ฟ้าอ่อนผสม

) โดย CHS ในการแสดงออกเป็นคริปโตโครม ( cry1 ) ( เวด et al . , 2001 ) phenylala -
9 , สารตั้งต้นใน
ฟลาโวนอยด์ในที่จําเป็นสําหรับเฉพาะ
,เพื่อตอบสนองการพัฒนาโดยรังสี UV ( ซัลลิแวน et al . ,
2014 ) และเป็นที่รู้จักกันดีว่า รังสียูวี บี จำกัด การเจริญเติบโตและการเปลี่ยนแปลงทางรังสี
พืช ( เช่น teramura และซัลลิแวน , 1994 ) คือ การเปลี่ยนแปลงยังตอบสนองต่อแสงสีฟ้า
( เช่น Sarala et al . , 2011 ) .
สรุปการศึกษานี้สนับสนุนก่อนหน้านี้ทำงานตาม

และฟลาโวนอยด์ ซึ่ง กรดฟีนอลในพืช
ชีวสังเคราะห์ชนิด ( พันธุกรรม ) ขึ้นอยู่กับ อย่างไรก็ตาม การจัดการของ
สเปกตรัมแสงสิ่งแวดล้อมอาจเพิ่มการสังเคราะห์ของผลิตภัณฑ์บางอย่าง

ของสายพันธุ์ ) ผักกาดหอมใบแดงได้มากขึ้น
ตอบสนองต่อแสงสีฟ้าเสริม เสริมฟ้า
เพิ่มการผลิตของสารประกอบเหล่านี้โดยเฉพาะอย่างยิ่งในใบผักกาดหอม
สีแดง ในขณะที่ทั้งสีฟ้าและสีแดงอ่อน อาจควบคุมการผลิต
ในใบโหระพาบางส่วนของสารที่ตรวจพบสะสม
อย่างต่อเนื่องเป็นฟังก์ชันของเวลาที่ใช้ภายใต้แสงไฟสีฟ้าเสริม
ในผักกาดหอมใบแดง แต่ไม่ใช่ในใบโหระพา