The five most potential antagonisti

The five most potential antagonistic actinomycete isolates
(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 and KAI-90) against FOC from the
in vitro studies were evaluated individually for their antagonistic
potential in pots in the greenhouse. Each actinomycete isolate was
inoculated by five different methods viz. M1 ¼ inoculation of the
potting mixture with respective actinomycete culture along with
FOC two weeks before sowing; M2 ¼ inoculation of the seeds
by soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;
M3 ¼ inoculation of the sprouted seeds by soaking in the respective
actinomycete culture for 1 h; M4 ¼ inoculation of the potting
mixture with actinomycete culture at the time of sowing (10 ml of
well-grown actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seed and covered with soil) and M5 ¼ inoculation of the seedlings
after emergence with actinomycete culture (10 ml of well-grown
actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seedlings after emergence). Thus the combination of actinomycetes
isolates  five methods of inoculation constituted 25 independent
treatments. Also, there were seven more treatments as various
controls were included as follows: treatments 26e30: the potting
mixtures inoculated with each actinomycete isolate individually two
weeks before sowing, 31: the potting mixtures inoculated only with
FOC 2weeks before sowing and 32: the potting mixture treated only
with 200 ml sterilized water two weeks before sowing (negative
control). The experiment had six replications.
FOC inoculum was mass-multiplied on chickpea grains (variety
JG-62, highly susceptible to Fusarium wilt, acquired from theLegumes Pathology Division, ICRISAT) using the protocols of Gupta
et al. (2002). Pot mixture (800 g) was prepared by mixing red soil,
sand and farmyard manure at 3:2:2 (w/w) andwas filled in 8 inches
plastic pots followed by inoculation with FOC inoculum (20% of pot
weight, 200 g pot1). In the M1 treatment, respective actinomycetes
(grown in starch casein broth for 4 days)were inoculated (20% of pot
weight; 200 ml pot1, 108 CFU ml1) along with the FOC, whereas in
the other treatment pots 200 ml of sterile water was added. Inoculumwas
thoroughly mixed with the pot mixture and the potswere
covered with polythene sheets. The whole set-up was incubated at
26  2 C for 15 days to have Fusarium wilt sick conditions. Two
weeks later, the seeds of chickpea variety JG-62 were surface-sterilized
with 2.5% sodium hypochlorite solution for 5 min and rinsed
with sterilized water (8 times). The surface-sterilized seeds were
treated with respective actinomycetes and/or FOC (as discussed
earlier). Six such seeds were sown in each pots and one week later
thinned to retain three seedlings. Plants were irrigated once every
two days with 20 ml sterilized distilled water. Incidence of Fusarium
wilt disease (number of plants showing wilt symptoms to the total
number of plants in a pot) was recorded on 5, 10, 15, 20 and 29 days
after sowing (DAS). In addition, actinomycetes population was
enumerated on day 29 in the negative control, in the actinomycetes
control (where no FOC was inoculated) and in the treatments
(where both FOC and actinomycetes were inoculated) on SCA plate,
as explained earlier.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

The five most potential antagonistic actinomycete isolates(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 and KAI-90) against FOC from thein vitro studies were evaluated individually for their antagonisticpotential in pots in the greenhouse. Each actinomycete isolate wasinoculated by five different methods viz. M1 ¼ inoculation of thepotting mixture with respective actinomycete culture along withFOC two weeks before sowing; M2 ¼ inoculation of the seedsby soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;M3 ¼ inoculation of the sprouted seeds by soaking in the respectiveactinomycete culture for 1 h; M4 ¼ inoculation of the pottingmixture with actinomycete culture at the time of sowing (10 ml ofwell-grown actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on theseed and covered with soil) and M5 ¼ inoculation of the seedlingsafter emergence with actinomycete culture (10 ml of well-grownactinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on theseedlings after emergence). Thus the combination of actinomycetesisolates  five methods of inoculation constituted 25 independenttreatments. Also, there were seven more treatments as variouscontrols were included as follows: treatments 26e30: the pottingmixtures inoculated with each actinomycete isolate individually twoweeks before sowing, 31: the potting mixtures inoculated only withFOC 2weeks before sowing and 32: the potting mixture treated onlywith 200 ml sterilized water two weeks before sowing (negativecontrol). The experiment had six replications.FOC inoculum was mass-multiplied on chickpea grains (varietyJG-62, highly susceptible to Fusarium wilt, acquired from theLegumes Pathology Division, ICRISAT) using the protocols of Guptaet al. (2002). Pot mixture (800 g) was prepared by mixing red soil,sand and farmyard manure at 3:2:2 (w/w) andwas filled in 8 inchesplastic pots followed by inoculation with FOC inoculum (20% of potweight, 200 g pot1). In the M1 treatment, respective actinomycetes(grown in starch casein broth for 4 days)were inoculated (20% of potweight; 200 ml pot1, 108 CFU ml1) along with the FOC, whereas inthe other treatment pots 200 ml of sterile water was added. Inoculumwasthoroughly mixed with the pot mixture and the potswerecovered with polythene sheets. The whole set-up was incubated at26  2 C for 15 days to have Fusarium wilt sick conditions. Twoweeks later, the seeds of chickpea variety JG-62 were surface-sterilizedwith 2.5% sodium hypochlorite solution for 5 min and rinsedwith sterilized water (8 times). The surface-sterilized seeds weretreated with respective actinomycetes and/or FOC (as discussedearlier). Six such seeds were sown in each pots and one week laterthinned to retain three seedlings. Plants were irrigated once everytwo days with 20 ml sterilized distilled water. Incidence of Fusariumwilt disease (number of plants showing wilt symptoms to the totalจำนวนพืชในหม้อ) ถูกบันทึกในวันที่ 5, 10, 15, 20 และ 29หลังจาก sowing (DAS) นอกจากนี้ มีประชากร actinomycetesระบุในวัน 29 ควบคุมลบ ใน actinomycetesควบคุม (ที่ FOC ไม่ถูก inoculated) และ ในการรักษา(ที่ FOC และ actinomycetes ถูก inoculated) บนแผ่น SCAตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ห้ามีศักยภาพมากที่สุดสายพันธุ์ actinomycete ปฏิปักษ์
(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 และ KAI-90) กับฟรีจาก
การศึกษาในหลอดทดลองได้รับการประเมินเป็นรายบุคคลสำหรับเป็นศัตรูของพวกเขา
ที่มีศักยภาพในกระถางในเรือนกระจก แต่ละแยก actinomycete ได้รับ
เชื้อโดยห้าวิธีการที่แตกต่างกันกล่าวคือ M1 ¼ของการฉีดวัคซีน
ผสมปลูกกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้องพร้อมกับ
ฟรีสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด; M2 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรม actinomycete นั้นเป็นเวลา 1 ชั่วโมง;
M3 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดงอกโดยการแช่ในแต่ละ
วัฒนธรรม actinomycete เป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M4 ¼ของการฉีดวัคซีนปลูก
ผสมกับวัฒนธรรม actinomycete ในช่วงเวลาของการหว่านเมล็ด (10 มล. ของ
ดีที่ปลูกวัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ใน
เมล็ดและปกคลุมด้วยดิน) และการฉีดวัคซีน M5 ¼ของต้นกล้า
หลังจากเกิด กับวัฒนธรรม actinomycete (10 มล. ของความเติบโต
วัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ใน
ต้นกล้าหลังจากเกิด) ดังนั้นการรวมกันของแอคติโนมัย
สายพันธุ์? ห้าวิธีการฉีดวัคซีนประกอบด้วย 25 อิสระ
รักษา นอกจากนี้ยังมีเจ็ดการรักษามากขึ้นตามที่ต่างๆ
ควบคุมได้รวมดังนี้การรักษา 26e30: ปลูก
ผสมเชื้อด้วย actinomycete แต่ละแยกเป็นรายบุคคลสอง
สัปดาห์ก่อนที่จะหว่านเมล็ด, 31: ผสมปลูกเชื้อเฉพาะกับ
ฟรี 2weeks ก่อนที่จะปลูกและ 32: ส่วนผสมปลูก ได้รับการรักษาเพียง
ด้วยน้ำ 200 มลฆ่าเชื้อสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด (ลบ
ควบคุม) ทดลองหกซ้ำ.
หัวเชื้อฟรีถูกมวลคูณธัญพืชถั่วเขียว (หลากหลาย
JG-62, สูงไวต่อเชื้อรา Fusarium เหี่ยวได้มาจากการ theLegumes พยาธิวิทยากอง ICRISAT) โดยใช้โปรโตคอลของ Gupta
et al, (2002) ส่วนผสมหม้อ (800 กรัม) ถูกจัดทำขึ้นโดยการผสมดินสีแดง, สี
ทรายและปุ๋ยคอกที่ 3: 2: 2 (w / w) andwas เติมเต็มใน 8 นิ้ว
กระถางพลาสติกตามด้วยการฉีดวัคซีนที่มีเชื้อฟรี (20% ของหม้อ
น้ำหนัก 200 กรัม หม้อ? 1) ในการรักษา M1, แอคติโนมัยนั้น
(ที่ปลูกในน้ำซุปเคซีนแป้งเป็นเวลา 4 วัน) ได้รับเชื้อ (20% ของหม้อ
น้ำหนัก? หม้อ 200 มล. 1, 108 CFU มล. 1) พร้อมด้วยฟรีในขณะที่ใน
กระถางการรักษาอื่น ๆ 200 มล. น้ำหมันถูกเพิ่มเข้ามา Inoculumwas
ผสมที่มีส่วนผสมหม้อและ potswere
ปกคลุมด้วยแผ่นพลาสติก ทั้งการตั้งค่าได้รับการบ่มที่
26? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 วันที่จะมีเชื้อรา Fusarium เหี่ยวเงื่อนไขป่วย สอง
สัปดาห์ต่อมาเมล็ดถั่วเขียวหลากหลาย JG-62 ถูกผิวผ่านการฆ่าเชื้อ
ด้วยสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 2.5% เป็นเวลา 5 นาทีและล้าง
ด้วยน้ำสะอาดผ่านการฆ่าเชื้อ (8 ครั้ง) เมล็ดผิวฆ่าเชื้อได้รับการ
รักษาด้วย actinomycetes ที่เกี่ยวข้องและ / หรือฟรี (ตามที่กล่าวไว้
ก่อนหน้านี้) หกเมล็ดพันธุ์ดังกล่าวถูกหว่านในกระถางแต่ละคนและหนึ่งสัปดาห์ต่อมา
บางตาที่จะเก็บสามต้นกล้า พืชที่ถูกชลประทานทุกๆ
สองวันมี 20 มล. น้ำกลั่นผ่านการฆ่าเชื้อ อุบัติการณ์ของเชื้อรา Fusarium
โรคเหี่ยว (จำนวนพืชแสดงอาการเหี่ยวที่จะรวม
จำนวนของพืชในหม้อ) จะถูกบันทึกในวันที่ 5, 10, 15, 20 และ 29 วัน
หลังหยอดเมล็ด (DAS) นอกจากนี้ประชากร actinomycetes ถูก
ระบุในวันที่ 29 ในการควบคุมเชิงลบใน actinomycetes
ควบคุม (ที่ไม่ได้รับการฉีดวัคซีนฟรี) และการรักษา
(ที่ทั้งฟรีและแอคติโนมัยถูกเชื้อ) ในจาน SCA,
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ห้าที่มีศักยภาพที่สุดปฏิปักษ์แอคติโนมัยซีทสายพันธุ์
( cai-24 cai-121 cai-127 , , , และ kai-32 kai-90 ) กับ ฟรี จาก
ในหลอดทดลองประเมินจากศักยภาพปฏิปักษ์
ในหม้อในเรือนกระจก แต่ละแยกได้เชื้อแอคติโนมัยซีท
ต่างกัน 5 วิธี ¼ M1
potting ผสมกับเชื้อแอคติโนมัยซีทแต่ละวัฒนธรรมพร้อมกับ
ฟรี 2 สัปดาห์ก่อนปลูก ; ( M2 ¼ของเมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทนั้นๆ 1 H ;
M3 ¼เชื้อของ sprouted เมล็ดโดยแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทแต่ละ
1 h ; ( M4 ¼ของ potting ผสมกับวัฒนธรรม
แอคติโนมัยซีทเวลาหว่าน ( 10 มล.
โตดี [ 108 CFU ml วัฒนธรรมแอคติโนมัยซีท  ประยุกต์บน
1 ]เมล็ดพันธุ์และปกคลุมด้วยดินและ M5 ¼ใส่ต้นกล้า
หลังงอกกับวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีท ( 10 มล. โตดี
[ 108 CFU / ml  วัฒนธรรมแอคติโนมัยซีท 1 ] ถูกนำไปใช้บน
ต้นกล้าหลังงอก ) ดังนั้นการรวมกันของเชื้อแอคติโนมัย
 ห้าวิธีการรักษาบัญญัติ 25 อิสระ

ยัง มี เจ็ด รักษาตามที่ต่างๆ
การควบคุมรวมดังนี้ การรักษา 26e30 : potting ผสมเชื้อแอคติโนมัยซีทแยกด้วยละ

แบบสองสัปดาห์ก่อนที่จะปลูกที่ 31 : potting ผสมหัวเชื้อด้วย
ฟรี 2 ก่อนการหว่านและ 32 : potting ผสมปฏิบัติเท่านั้น
กับ 200 ml ฆ่าเชื้อน้ำ 2 สัปดาห์ก่อนปลูก ( ดิน
) ทดลอง
6 ซ้ำฟรีโดยมีมวลคูณกับถั่วเขียวเมล็ด ( พันธุ์
jg-62 สูง เสี่ยงต่อการ Fusarium เหี่ยว ได้มาจาก thelegumes พยาธิวิทยากอง ICRISAT ) โดยใช้โปรโตคอล Gupta
et al . ( 2002 ) ส่วนผสมหม้อ ( 800 กรัม ) เตรียมโดยการผสมดินแดง ,
ทรายและใช้ปุ๋ยคอกที่ 3:2:2 ( w / w ) ดำเนินการกรอก 8 นิ้วกระถางพลาสติก
ตามด้วยการไม่คิดค่าบริการ 3 ( 20% ของหม้อ
,200 กรัมต่อกระถาง  1 ) ในการรักษาตามเชื้อแอคติโนมัยสีท M1
( ปลูกในน้ำซุปตะเข้แป้ง 4 วัน ) ปลูกเชื้อ ( 20% ของน้ำหนักหม้อหม้อ 
; 200 ml 1 , 108 CFU / ml  1 ) พร้อมกับฟรีในขณะที่ในการรักษาอื่น ๆหม้อ
200 มล. ของน้ำหมันก็เพิ่ม inoculumwas
ละเอียดผสมกับหม้อส่วนผสมและ potswere
ปกคลุมด้วยแผ่น polythene การตั้งค่าทั้งหมดถูกบ่มที่
26  2  เป็นเวลา 15 วันจะมี Fusarium เหี่ยวสภาพป่วย 2
สัปดาห์ต่อมา เมล็ดของถั่วเขียวพันธุ์ jg-62 ถูกฟอกฆ่าเชื้อด้วยสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์
2.5% เป็นเวลา 5 นาทีและล้างด้วยน้ำที่ผ่านการฆ่าเชื้อ (
8 ครั้ง ) การฟอกฆ่าเชื้อเมล็ด
ถือว่าแอคติโนมัยที่เกี่ยวข้องและ / หรือเสียตามที่กล่าว
ก่อนหน้านี้ ) 6 เมล็ดพันธุ์ดังกล่าวได้ถูกหว่านลงในแต่ละหม้อและหนึ่งสัปดาห์ต่อมา
ขนาดเล็กเพื่อเก็บสามต้น พืชปลูก ทุกๆ
2 วันกับ 20 ml ฆ่าเชื้อน้ำกลั่น อุบัติการณ์ของโรคเหี่ยวเน่าแห้ง
( จำนวนต้นที่แสดงอาการเหี่ยวจะรวม
จํานวนของพืชในหม้อ ) ถูกบันทึกไว้ในวันที่ 5 , 10 , 15 , 20 และ 30 วัน หลังจากหว่านเมล็ด
( DAS ) นอกจากนี้ แอคติโนมัยซีทจำนวน
ระบุในวันที่ 29 ในควบคุมลบในการแอคติโนมัย
ควบคุม ( ที่ไม่มีฟรีเป็นเชื้อ ) และในการรักษา
( ซึ่งทั้งสองและปลูกเชื้อแอคติโนมัยซีสฟรี ) บนจาน SCA
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้