El Hassni et al. [63] studied the effect of chitosan in date palm in response to Fusarium oxysporum f. sp. albedinis, the causal agent of a major wilt in this crop. Beside a direct toxicity of the molecule on the fungus, the authors showed an enhancement of essential components of the host resistance. When injected into the roots at various concentrations, chitosan elicited date palm peroxidase and polyphenoloxidase activities, and increased the level of phenolic compounds. Among the accumulated phenolics, there was an increase in content of specific non-constitutive hydroxycinnamic acid derivatives, known to be of great importance in the resistance of this plant to this vascular fusariosis. Similarly, treatment of wheat seeds with chitosan revealed an increase in hydroxycinnamic (i.e., p-coumaric, caffeic and ferulic) and benzoic (i.e., benzoic, protocatechuic and gallic) acid derivatives, leading to an increase in lignin synthesis and accumulation [49]. PAL activity was also reported to increase in response to elicitation with chitosan in many host species [74,90].
Ramonell et al. [91] used a microarray consisting of 2,375 EST clones representing putative defense-related and regulatory genes to characterize changes in the gene expression patterns of A. thaliana in response to treatment with chitin. The authors reported that 71 ESTs, representing 61 genes, were altered three-fold or more in their transcript levels in chitin-treated seedlings as compared to the control. Interestingly, the levels of transcription of numerous genes were revealed to be altered as early as 10 min after exposure to chitin, hence translating the earliest changes that may occur in chitin-treated plants. These genes included commonly elicited defense-related genes (i.e., phenylalanine amonia-lyase, chitinase, peroxidase) as well as other genes with function not yet identified. Among the transcriptional regulators, the authors reported on the increase in transcript accumulation of elements at the promoters region rich in W-boxes along with other unknown regulatory elements. In parallel, Ramonell et al. [91] showed a decrease in transcript abundance of a number of genes encoding cell wall strengthening and wall deposit proteins. These genes were all downstream the chalcone synthase promoter, suggesting their potential suppression during plant x pathogen interactions. The authors also examined the genes based on their controlling pathways. They found that among the up-regulated genes in response to treatment with chitin, there were 43% that were also up-regulated with salicylic acid, 39% with methyl jasmonate and another 36% with ethylene. Among the down-regulated genes in response to chitin, 7% shared the down-regulation with salicylic acid, 9% with methyl jasmonate and 14% with ethylene.
Similarly, Akimoto-Tomiyama et al. [92] examined the expression of defense-related genes in rice treated with N-acetylchitooctaose, using microarray analysis consisting of 8,987 randomly selected expressed sequence tags. In their experiments, the authors reported on the significant up-regulation of 166 genes and down-regulation of 93 genes. Out of the 259 responsive ESTs to N-acetylchytooctaose identified, the authors highlighted 18 putative genes related to signal transduction, including five calcium-dependent protein kinases (CDPKs).
4.6. Chitosan–A general pathogen-associated molecular pattern
Plants possess mechanisms by which they recognize their intruders. They are thought to have trans-membrane pattern recognition receptors (PRRs) able to interact with pathogen/microbe-associated molecular patterns PAMPs/MAMPs [93]. PAMPs/MAMPs can be any effectors secreted by the pathogens or released from the cell wall of the host upon attack on the infection site. Cell wall polysaccharides such as glucans and chitosan have been reported to act as PAMPs/MAMPs in many pathosystems. Chitosan presents the advantage of being recognized by plant PRRs and triggers a panel of defense responses. Iriti and Faoro [94] reported that chitosan behaves like a PAMPs/MAMPs or a general elicitor, inducing non-host resistance and priming systemic immunity. The defense responses enhanced by chitosan application include the increase in H+ and Ca2+ influx into the cytosol, the activation of MAP-kinases, callose apposition, oxidative burst, hypersensitive responses, the synthesis of abscisic acid, jasmonates, phytoalexins, and PR-proteins [82].
It was long believed that the elicitor activity of chitosan is mediated through the interaction of this polycationic molecule with negatively-charged phospholipids, rather than a specific interaction with a receptor-like molecule [95]. However, Day et al. [96], examining the expression patterns of two GRAS family genes responsive to chitosan, have suggested that these two genes were regulated, at least partially, by high-affinity chitin-binding proteins localized in the plasma membrane of rice [97,98]. Recently, several chitosan-binding proteins have been isolated and described as putative receptors for chitosan. These proteins are thought to bind also to chitin and have been called chitin elicitor-binding protein (CEBiP) [99]. However, the biological activity of chitosan, as a general elicitor, remains tied to its physicochemical properties such as the molecular weight, deacetylation degree and viscosity. These properties can make the difference between cytotoxicity due to higher concentrations and the priming of resistance using appropriate molecular weight, deacetylation degree, viscosity and concentration.
El Hassni et al. [63] ศึกษาผลของไคโตซานในวันปาล์มตอบ Fusarium oxysporum f. sp. albedinis ตัวแทนสาเหตุของทั้งหลายที่สำคัญในพืชนี้ ผู้เขียนพบว่าการเพิ่มประสิทธิภาพของส่วนประกอบสำคัญของการต้านทานของโฮสต์ข้าง toxicity โดยตรงของโมเลกุลในการเชื้อรา เมื่อฉีดเข้าไปในรากที่ความเข้มข้นต่าง ๆ ไคโตซาน elicited อินทผลัม peroxidase และ polyphenoloxidase กิจกรรม และเพิ่มระดับของสารฟีนอ ระหว่าง phenolics สะสม มีการเพิ่มเนื้อหาของ hydroxycinnamic ไม่ขึ้นเฉพาะอนุพันธ์กรด รู้จักให้ความสำคัญแก่ความต้านทานของพืชนี้จะ fusariosis นี้หลอดเลือด ในทำนองเดียวกัน การรักษาเมล็ดพันธุ์ข้าวสาลีด้วยไคโตซานเปิดเผยเพิ่มขึ้นใน hydroxycinnamic (เช่น p-coumaric, caffeic และ ferulic) และ benzoic (เช่น benzoic, protocatechuic และ gallic) อนุพันธ์กรด นำไปสู่การเพิ่มการสังเคราะห์ lignin และรวบรวม [49] กิจกรรม PAL ยังได้รายงานเพิ่มตอบ elicitation ด้วยไคโตซานในโฮสต์หลายชนิด [74,90]Ramonell et al. [91] used a microarray consisting of 2,375 EST clones representing putative defense-related and regulatory genes to characterize changes in the gene expression patterns of A. thaliana in response to treatment with chitin. The authors reported that 71 ESTs, representing 61 genes, were altered three-fold or more in their transcript levels in chitin-treated seedlings as compared to the control. Interestingly, the levels of transcription of numerous genes were revealed to be altered as early as 10 min after exposure to chitin, hence translating the earliest changes that may occur in chitin-treated plants. These genes included commonly elicited defense-related genes (i.e., phenylalanine amonia-lyase, chitinase, peroxidase) as well as other genes with function not yet identified. Among the transcriptional regulators, the authors reported on the increase in transcript accumulation of elements at the promoters region rich in W-boxes along with other unknown regulatory elements. In parallel, Ramonell et al. [91] showed a decrease in transcript abundance of a number of genes encoding cell wall strengthening and wall deposit proteins. These genes were all downstream the chalcone synthase promoter, suggesting their potential suppression during plant x pathogen interactions. The authors also examined the genes based on their controlling pathways. They found that among the up-regulated genes in response to treatment with chitin, there were 43% that were also up-regulated with salicylic acid, 39% with methyl jasmonate and another 36% with ethylene. Among the down-regulated genes in response to chitin, 7% shared the down-regulation with salicylic acid, 9% with methyl jasmonate and 14% with ethylene.Similarly, Akimoto-Tomiyama et al. [92] examined the expression of defense-related genes in rice treated with N-acetylchitooctaose, using microarray analysis consisting of 8,987 randomly selected expressed sequence tags. In their experiments, the authors reported on the significant up-regulation of 166 genes and down-regulation of 93 genes. Out of the 259 responsive ESTs to N-acetylchytooctaose identified, the authors highlighted 18 putative genes related to signal transduction, including five calcium-dependent protein kinases (CDPKs).4.6. Chitosan–A general pathogen-associated molecular patternPlants possess mechanisms by which they recognize their intruders. They are thought to have trans-membrane pattern recognition receptors (PRRs) able to interact with pathogen/microbe-associated molecular patterns PAMPs/MAMPs [93]. PAMPs/MAMPs can be any effectors secreted by the pathogens or released from the cell wall of the host upon attack on the infection site. Cell wall polysaccharides such as glucans and chitosan have been reported to act as PAMPs/MAMPs in many pathosystems. Chitosan presents the advantage of being recognized by plant PRRs and triggers a panel of defense responses. Iriti and Faoro [94] reported that chitosan behaves like a PAMPs/MAMPs or a general elicitor, inducing non-host resistance and priming systemic immunity. The defense responses enhanced by chitosan application include the increase in H+ and Ca2+ influx into the cytosol, the activation of MAP-kinases, callose apposition, oxidative burst, hypersensitive responses, the synthesis of abscisic acid, jasmonates, phytoalexins, and PR-proteins [82].
It was long believed that the elicitor activity of chitosan is mediated through the interaction of this polycationic molecule with negatively-charged phospholipids, rather than a specific interaction with a receptor-like molecule [95]. However, Day et al. [96], examining the expression patterns of two GRAS family genes responsive to chitosan, have suggested that these two genes were regulated, at least partially, by high-affinity chitin-binding proteins localized in the plasma membrane of rice [97,98]. Recently, several chitosan-binding proteins have been isolated and described as putative receptors for chitosan. These proteins are thought to bind also to chitin and have been called chitin elicitor-binding protein (CEBiP) [99]. However, the biological activity of chitosan, as a general elicitor, remains tied to its physicochemical properties such as the molecular weight, deacetylation degree and viscosity. These properties can make the difference between cytotoxicity due to higher concentrations and the priming of resistance using appropriate molecular weight, deacetylation degree, viscosity and concentration.
การแปล กรุณารอสักครู่..

El Hassni et al, [63] การศึกษาผลของไคโตซานในวันที่ปาล์มในการตอบสนองต่อเชื้อรา Fusarium oxysporum ฉ เอสพี albedinis, สาเหตุของโรคเหี่ยวที่สำคัญในการเพาะปลูกนี้ นอกจากความเป็นพิษโดยตรงของโมเลกุลในเชื้อราผู้เขียนแสดงให้เห็นว่าการเพิ่มประสิทธิภาพขององค์ประกอบที่สำคัญของความต้านทานโฮสต์ เมื่อฉีดเข้าไปในรากที่ระดับความเข้มข้นต่างๆไคโตซานออกมาวันที่ peroxidase ปาล์มและกิจกรรมพอลีฟีนและเพิ่มระดับของสารฟีนอล ท่ามกลางสะสมฟีนอลที่มีการเพิ่มขึ้นของเนื้อหาเฉพาะที่ไม่ใช่ส่วนประกอบอนุพันธ์ของกรด hydroxycinnamic, ที่รู้จักกันจะมีความสำคัญมากในการต่อต้านของพืชชนิดนี้จะ fusariosis หลอดเลือดนี้ ในทำนองเดียวกันการรักษาของเมล็ดข้าวสาลีที่มีไคโตซานเปิดเผยเพิ่มขึ้นใน hydroxycinnamic (เช่น, p-coumaric, caffeic และ ferulic) และเบนโซอิก (เช่นเบนโซอิก, protocatechuic และฝรั่งเศส) อนุพันธ์ของกรดที่นำไปสู่การเพิ่มขึ้นในการสังเคราะห์และการสะสมลิกนิน [49] . กิจกรรม PAL ยังมีรายงานว่าจะเพิ่มขึ้นในการตอบสนองต่อการสอบถามกับไคโตซานชนิดหลายพื้นที่ [74,90]. Ramonell et al, [91] ใช้ microarray 2375 ประกอบด้วยโคลน EST ตัวแทนสมมุติที่เกี่ยวข้องกับการป้องกันและการกำกับดูแลยีนที่จะอธิบายลักษณะการเปลี่ยนแปลงในรูปแบบการแสดงออกของยีนของ thaliana A. ในการตอบสนองต่อการรักษาด้วยสารไคติน ผู้เขียนรายงานว่า 71 ESTs คิดเป็น 61 ยีนมีการเปลี่ยนแปลงสามเท่าหรือมากกว่าในระดับหลักฐานในต้นกล้าไคตินที่ได้รับเมื่อเทียบกับการควบคุม ที่น่าสนใจระดับของการถอดรหัสของยีนจำนวนมากได้รับการเปิดเผยว่าจะมีการเปลี่ยนแปลงเร็วที่สุดเท่าที่เวลา 10 นาทีหลังจากที่สัมผัสกับไคตินจึงแปลการเปลี่ยนแปลงที่เก่าแก่ที่สุดที่อาจเกิดขึ้นในพืชไคตินได้รับการรักษา ยีนเหล่านี้ออกมารวมกันทั่วไปยีนที่เกี่ยวข้องกับการป้องกัน (เช่นแอมโมเนีย-phenylalanine ไอเลส, ไคติเนส, peroxidase) เช่นเดียวกับยีนอื่น ๆ ที่มีฟังก์ชั่นยังไม่ได้ระบุ ในบรรดาหน่วยงานกำกับดูแลการถอดรหัสผู้เขียนรายงานเกี่ยวกับการเพิ่มขึ้นของการสะสมหลักฐานขององค์ประกอบที่สนับสนุนภูมิภาคที่อุดมไปด้วย W-กล่องพร้อมกับองค์ประกอบกำกับดูแลอื่น ๆ ที่ไม่รู้จัก ในแบบคู่ขนาน Ramonell et al, [91] แสดงให้เห็นว่าการลดลงของความอุดมสมบูรณ์ของหลักฐานจำนวนของยีนที่ควบคุมการสร้างความเข้มแข็งของผนังเซลล์และโปรตีนฝากผนัง ยีนเหล่านี้ทุกคนปลายน้ำก่อการเทส chalcone บอกปราบปรามศักยภาพของพวกเขาในระหว่างการปฏิสัมพันธ์ x เชื้อโรคพืช ผู้เขียนยังตรวจสอบยีนที่อยู่บนพื้นฐานของการควบคุมทางเดินของพวกเขา พวกเขาพบว่าในหมู่ยีนขึ้นควบคุมในการตอบสนองต่อการรักษาด้วยสารไคตินมี 43% ที่มียังขึ้นควบคุมด้วยกรดซาลิไซลิ, 39% กับ jasmonate เมธิลและอีก 36% กับเอทิลีน ท่ามกลางยีนควบคุมลงในการตอบสนองต่อสารไคติน, 7% ที่ใช้ร่วมกันกฎระเบียบลงด้วยกรดซาลิไซลิ, 9% กับ jasmonate เมธิลและ 14% กับเอทิลีน. ในทำนองเดียวกัน Akimoto-Tomiyama et al, [92] การตรวจสอบการแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับการป้องกันข้าวรับการรักษาด้วย N-acetylchitooctaose โดยใช้การวิเคราะห์ microarray ประกอบด้วย 8,987 สุ่มเลือกแสดงแท็กลำดับ ในการทดลองของพวกเขาเขียนรายงานเกี่ยวกับการขึ้นอย่างมีนัยสำคัญระเบียบของ 166 ยีนและกฎระเบียบลง 93 ยีน ออกจาก 259 ESTs ตอบสนองต่อ N-acetylchytooctaose ระบุผู้เขียนเน้น 18 สมมุติยีนที่เกี่ยวข้องกับการส่งสัญญาณพลังงานรวมถึงห้าไคเนสส์โปรตีนแคลเซียมขึ้นอยู่กับ (CDPKs). 4.6 ไคโตซาน-เชื้อโรคที่เกี่ยวข้องทั่วไปรูปแบบโมเลกุลพืชมีกลไกโดยที่พวกเขารู้จักผู้บุกรุกของพวกเขา พวกเขามีความคิดที่มีรูปแบบทรานส์เมมเบรนรับการรับรู้ (PRRs) สามารถโต้ตอบกับเชื้อโรค / จุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้องรูปแบบโมเลกุล PAMPs / mAmps [93] PAMPs / mAmps สามารถเป็นเอฟเฟคใด ๆ ที่หลั่งมาจากเชื้อโรคหรือปล่อยออกมาจากผนังเซลล์ของโฮสต์เมื่อโจมตีเว็บไซต์ของการติดเชื้อ polysaccharides ผนังเซลล์เช่นกลูแคนและไคโตซานที่ได้รับรายงานการทำหน้าที่เป็น PAMPs / mAmps ใน pathosystems จำนวนมาก ไคโตซานที่มีการจัดประโยชน์จากการเป็นที่ยอมรับโดย PRRs พืชและเรียกแผงของการตอบสนองการป้องกัน Iriti และ Faoro [94] รายงานว่าไคโตซานพฤติกรรมเช่น PAMPs / mAmps หรือกระตุ้นทั่วไปการกระตุ้นให้เกิดความต้านทานที่ไม่ใช่โฮสต์และระบบภูมิคุ้มกันรองพื้น การตอบสนองการป้องกันที่เพิ่มขึ้นโดยการประยุกต์ใช้ไคโตซานรวมถึงการเพิ่มขึ้นของ H + และ Ca2 + ไหลบ่าเข้ามาลงในเซลล์เปิดใช้งานของ MAP-ไคเนสส์, callose ท้ายระเบิดออกซิเดชั่ตอบสนองเสียวสังเคราะห์กรดแอบไซซิก, jasmonates, phytoalexins และประชาสัมพันธ์โปรตีน [ 82]. มันเป็นความเชื่อมานานแล้วว่ากิจกรรมกระตุ้นของไคโตซานเป็นสื่อกลางผ่านการมีปฏิสัมพันธ์ของโมเลกุล polycationic นี้มีฟอสโฟประจุลบมากกว่าการมีปฏิสัมพันธ์เฉพาะกับโมเลกุลตัวรับเหมือน [95] แต่วัน et al, [96], การตรวจสอบรูปแบบการแสดงออกของยีนทั้งสองครอบครัว GRAS ตอบสนองต่อไคโตซานได้ชี้ให้เห็นว่าทั้งสองยีนที่ถูกควบคุมอย่างน้อยบางส่วนโดยความสัมพันธ์สูงโปรตีนไคตินที่มีผลผูกพันท้องถิ่นในเยื่อหุ้มข้าว [97,98] . เมื่อเร็ว ๆ นี้หลายโปรตีนไคโตซานที่มีผลผูกพันได้รับการแยกและอธิบายว่าผู้รับสมมุติสำหรับไคโตซาน โปรตีนเหล่านี้มีความคิดที่จะผูกยังไคตินและได้รับการเรียกว่าไคตินโปรตีนกระตุ้นผูกพัน (CEBiP) [99] แต่กิจกรรมทางชีวภาพของไคโตซานเป็นกระตุ้นโดยทั่วไปยังคงผูกติดอยู่กับคุณสมบัติทางเคมีกายภาพเช่นน้ำหนักโมเลกุลระดับสิกและความหนืด คุณสมบัติเหล่านี้สามารถสร้างความแตกต่างระหว่างความเป็นพิษเนื่องจากความเข้มข้นสูงและรองพื้นของความต้านทานโดยใช้น้ำหนักโมเลกุลที่เหมาะสมระดับสิก, ความหนืดและความเข้มข้น
การแปล กรุณารอสักครู่..

เอล hassni et al . [ 63 ] ศึกษาผลของไคโตซานในวันปาล์มในการตอบสนอง Fusarium oxysporum F . . albedinis , สาเหตุโรคเหี่ยวในหลักการนี้ ติดพิษโดยตรงของโมเลกุลในเห็ดรา ผู้เขียนพบว่า มีการเพิ่มองค์ประกอบสำคัญของความต้านทานของโฮสต์ เมื่อฉีดเข้าไปในรากที่ความเข้มข้นต่าง ๆไคโตซานโดยใช้กิจกรรมทั้งปาล์มและโพลีฟีนอลอ ซิเดสวันที่และเพิ่มระดับของสารประกอบฟีนอล . ระหว่างที่สะสมโพลีฟีนอลมีเพิ่มขึ้นในเนื้อหาเฉพาะและไม่ hydroxycinnamic กรดอนุพันธ์ , ที่รู้จักกันมีความสําคัญมากในความต้านทานของพืชนี้จะฟูซาริโ ิสพรรณนี้ ในทํานองเดียวกันการรักษาของเมล็ดข้าวสาลีด้วยไคโตซาน พบเพิ่มขึ้นใน hydroxycinnamic ( เช่น p-coumaric Caffeic ferulic , และ ) และสูงสุด ( เช่น กรดเบนโซอิกและ protocatechuic , ฝรั่งเศส ) และ นําไปเพิ่มในการสังเคราะห์ลิกนินและสะสม [ 49 ] กิจกรรมเพื่อนมีการเพิ่มขึ้นในการตอบสนองด้วยไคโตซานในหลายโฮสต์ชนิด [ 74,90 ] .
ramonell et al .[ 91 ] ใช้ microarray ประกอบด้วยโคลนแทนซึ่งเกี่ยวข้องกับการป้องกัน 2375 EST หรือยีนในลักษณะของการเปลี่ยนแปลงในการแสดงออกของยีนในรูปแบบของ thaliana ในการตอบสนองการรักษาด้วยไคติน ผู้เขียนรายงานว่า 71 61 ฐานข้อมูลของยีนมีการเปลี่ยนแปลงสามพับหรือมากกว่าในระดับผลการเรียนของพวกเขาในไคตินรักษาต้นกล้าเมื่อเทียบกับการควบคุมทั้งนี้ ระดับของ mRNA ของยีนจำนวนมาก พบการเปลี่ยนแปลงได้เร็ว 10 นาที หลังจากการเปิดรับไคจึงแปลเร็วการเปลี่ยนแปลงที่อาจเกิดขึ้นในไคติน รักษาพืช ยีนเหล่านี้รวมทั่วไปโดยใช้ยีนที่เกี่ยวข้องกับการป้องกัน ( เช่น ฟีนิลอะลานีน amonia lyase เอนไซม์เปอร์ออกซิเดส , , ) เป็นยีนอื่น ๆที่มีฟังก์ชั่นยังไม่ระบุระหว่างสาร particle , ผู้เขียนรายงานในการเพิ่มผลการเรียนสะสมขององค์ประกอบในภูมิภาคโปรโมเตอร์ที่อุดมไปด้วย w-boxes พร้อมกับองค์ประกอบอื่น ๆ กฎระเบียบที่ไม่รู้จัก ในแบบคู่ขนาน ramonell et al . [ 91 ] พบว่าลดลงในบันทึกความอุดมสมบูรณ์ของยีนและโปรตีนเสริมสร้างเซลล์ผนังผนังฝากการเข้ารหัสยีนซึ่งเป็นปลายน้ำที่ chalcone และโปรโมเตอร์ แสดงศักยภาพในการปราบปรามเชื้อโรคพืช x การมีปฏิสัมพันธ์ ผู้เขียนได้ศึกษายีนตามการควบคุมเส้นทาง . พวกเขาพบว่า ยีนของคาในการตอบสนองการรักษาด้วยไคติน มี 43 % ที่ถูกกระตุ้นด้วยกรด salicylic ,39 % กับ jasmonate เมทิล และอีก 36 % กับเอทธิลีน ระหว่างลงควบคุมยีนที่ตอบสนองต่อไค 7% ใช้ down-regulation ด้วย salicylic acid , 9% กับ jasmonate เมทิลและ 14% กับเอทธิลีน
ฉันใด อากิโมโตะ tomiyama et al . [ 92 ] การตรวจสอบการแสดงออกของยีนที่เกี่ยวข้องกับการป้องกันในข้าวที่ได้รับการรักษาด้วย n-acetylchitooctaose โดยใช้ microarray วิเคราะห์ประกอบด้วย 8แล้วสุ่มแสดงลำดับแท็ก ในการทดลองของพวกเขา ผู้เขียนรายงานที่สำคัญของ down-regulation 93 166 ยีนและยีน ออกจากฐานข้อมูล เพื่อ n-acetylchytooctaose 259 ตอบระบุ ผู้เขียนเน้น 18 ซึ่งยีนที่เกี่ยวข้องกับการส่งสัญญาณ รวมถึงห้าแคลเซียมขึ้นอยู่กับโปรตีนไคเนส ( cdpks ) .
4.6 .ไคโตซานและทั่วไปเชื้อโรคที่เกี่ยวข้องรูปแบบโมเลกุล
พืชมีกลไกที่พวกเขารับรู้พวกเขาเป็นผู้บุกรุก พวกเขาจะคิดว่ามีทรานส์เมมเบรนลวดลายตัวรับ ( prrs ) สามารถโต้ตอบกับเชื้อจุลินทรีย์ที่เกี่ยวข้อง / โมเลกุลรูปแบบ pamps / mamps [ 93 ]pamps / mamps สามารถใด ๆอีกครั้งหนึ่งหลั่งโดยเชื้อโรค หรือปล่อยออกมาจากเซลล์ที่ผนังของโฮสต์เมื่อโจมตีติดเว็บไซต์ ผนังเซลล์ polysaccharides เช่น กลูแคนและไคโตซาน ถูกรายงานว่าเป็น pamps / mamps ในหลาย pathosystems . ไคโตซาน กล่าวถึงประโยชน์ของการได้รับการยอมรับจาก prrs พืชและทริกเกอร์แผงของการตอบสนองการป้องกันและ iriti faoro [ 94 ] รายงานว่า ไคโตแซนที่ทำตัวเหมือน pamps / mamps หรือ elicitor ทั่วไป , กระตุ้นภูมิคุ้มกันต้านทานโฮสต์ไม่ปั๊มระบบ การป้องกันการตอบสนองเพิ่มโดยไคโตซานโปรแกรมรวมถึงเพิ่มแคลเซียมในไซโตซอล H และการใช้ยา , แผนที่ , องก์แคลโลิออกมาซี่ , การตอบสนอง , การสังเคราะห์กรด abscisicjasmonates phytoalexins PR , และโปรตีน [ 82 ] .
มันเชื่อมานานว่า elicitor กิจกรรมของไคโตซานโดยผ่านการปฏิสัมพันธ์ของโมเลกุลซึ่งมีประจุลบ polycationic ด้วยกลุ่มเป้าหมายมากกว่าปฏิสัมพันธ์ที่เฉพาะเจาะจงกับตัวรับเช่นโมเลกุล [ 95 ] อย่างไรก็ตาม วัน et al . [ 96 ] , การตรวจสอบการแสดงออกของยีนที่ตอบสนองต่อรูปแบบสองราส์ครอบครัวกับไคโตซานได้ชี้ให้เห็นว่าสองยีนเหล่านี้ถูกควบคุมอย่างน้อยบางส่วนโดยไคตินตะบอยผูกพันโปรตีนถิ่นในเยื่อหุ้มเซลล์ของข้าว [ 97,98 ] เมื่อเร็ว ๆนี้ , โปรตีนผูกพันไคหลายได้แยกอธิบายเป็นผู้รับซึ่งสำหรับไคโตซาน โปรตีนเหล่านี้มีความคิดที่จะผูกมัดกับไคตินและได้รับการเรียกว่าไคติน elicitor โปรตีน ( cebip ) [ 99 ]อย่างไรก็ตาม กิจกรรมทางชีวภาพของไคโตซาน เป็น elicitor ทั่วไป ยังเชื่อมโยงกับคุณสมบัติทางกายภาพและทางเคมีของมัน เช่น ระดับดีอะเซทิลเลชันน้ำหนักโมเลกุลและความหนืด คุณสมบัติเหล่านี้สามารถสร้างความแตกต่างระหว่างความเป็นพิษเนื่องจากความเข้มข้นสูงและต้านทานการใช้รองพื้นของน้ำหนักโมเลกุลที่เหมาะสมตลอดระดับความหนืด และสมาธิ
การแปล กรุณารอสักครู่..
