The variable V3 region of the 16S rRNA gene (200 bp)
for each isolate and reference strains were amplified using
the universal primer R518 (5-ATTACCGCGGCTGCTGG-
3) and F357-GC (5-CGCCCGCCGCGCGCGGC
GGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3)
(Muyzer et al. 1993). The 50 L PCR mixtures contained 100 ng
DNA template, 0.2 mM dNTPs (TaKaRa), 5 L Taq DNA buffer,
2 mM MgCl2 (TaKaRa), 2.5 U Taq DNA polymerase (TaKaRa), and
10 pmol of each primer. Amplification was performed in PTC-200
Peltier Thermal Cycler (MJ Research, USA) with a touchdown PCR.
The reaction procedure was as follows: initial denaturation of
template DNA was performed at 94 ◦C for 5 min, followed by 20
touchdown cycles in which the procedure was denatured at 94 ◦C
for 1 min, annealing at 65 ◦C for 1 min and decreased at a rate of
0.5 ◦C per cycle, extension at 72 ◦C for 1 min, then performed 10
cycles of 94 ◦C for 1 min; 55 ◦C for 1 min, 72 ◦C for 1 min, and a
final elongation at 72 ◦C for 5 min. The size and quantity of PCR
products were checked by 1.5% agarose gel electrophoresis, stained
in ethidium bromide solution for 30 min, and visualized by UVP
Biolmaying Systems (GDS-8000 System, Ultra-Violet Products Ltd.,
Cambridge, UK).
2.4.2. Construction of ladder marker
The variable V3 region of the 16S rRNA gene (200 bp)for each isolate and reference strains were amplified usingthe universal primer R518 (5-ATTACCGCGGCTGCTGG-3) and F357-GC (5-CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCACGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3)(Muyzer et al. 1993). The 50 L PCR mixtures contained 100 ngDNA template, 0.2 mM dNTPs (TaKaRa), 5 L Taq DNA buffer,2 mM MgCl2 (TaKaRa), 2.5 U Taq DNA polymerase (TaKaRa), and10 pmol of each primer. Amplification was performed in PTC-200Peltier Thermal Cycler (MJ Research, USA) with a touchdown PCR.The reaction procedure was as follows: initial denaturation oftemplate DNA was performed at 94 ◦C for 5 min, followed by 20touchdown cycles in which the procedure was denatured at 94 ◦Cfor 1 min, annealing at 65 ◦C for 1 min and decreased at a rate of0.5 ◦C per cycle, extension at 72 ◦C for 1 min, then performed 10cycles of 94 ◦C for 1 min; 55 ◦C for 1 min, 72 ◦C for 1 min, and afinal elongation at 72 ◦C for 5 min. The size and quantity of PCRproducts were checked by 1.5% agarose gel electrophoresis, stainedin ethidium bromide solution for 30 min, and visualized by UVPBiolmaying Systems (GDS-8000 System, Ultra-Violet Products Ltd.,Cambridge, UK).2.4.2. Construction of ladder marker
การแปล กรุณารอสักครู่..

ตัวแปรเขตของยีน 16S rRNA V3 ( 200 BP )
สำหรับแต่ละแยกและสายพันธุ์อ้างอิงถูกขยายด้วย
r518 รองพื้นสากล ( 5 - attaccgcggctgctgg -
3 ) และ f357-gc ( 5 - cgcccgccgcgcgcggc
gggcggggcgggggcacggggggcctacgggaggcagcag-3 )
( muyzer et al . 1993 ) 50 ผม PCR ผสมที่มีอยู่ 100 ng
ดีเอ็นเอแม่แบบ , 0.2 มม. dntps ( ทาการะ ) , 5 ผมแทคดีเอ็นเอ บัฟเฟอร์ ,
2 มม. ชุด ( ทาการะ ) , 2 .5 U แท็ค DNA polymerase ( ทาการะ ) และ
10 pmol แต่ละรองพื้น การสื่อสารในการปฏิบัติ ptc-200 Peltier Thermal cycler
( สหรัฐอเมริกาการวิจัย MJ ) กับทัชดาวน์ ) .
กระบวนการปฏิกิริยาดังนี้ ( เริ่มต้นของดีเอ็นเอแม่แบบ
ดำเนินการโดย◦ 94 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที ตามด้วย 20
เทพนิรมิตรอบซึ่งในกระบวนการเกิดที่ 94 ◦ C
1 นาที ,อบอ่อนที่อุณหภูมิ 65 องศาเซลเซียสนาน 1 นาที◦และลดลงในอัตรา 0.5 ◦
c ต่อวงจรขยายที่ 72 ◦องศาเซลเซียสนาน 1 นาที แล้วทำการ 10
รอบ 94 ◦องศาเซลเซียสนาน 1 นาที ; 55 ◦องศาเซลเซียสนาน 1 นาที 72 ◦ C เป็นเวลา 1 นาทีและ
ยืดตัวสุดท้ายที่ 72 ◦องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที ขนาดและปริมาณของผลิตภัณฑ์ PCR
ดู 1.5% เจลอิเล็กเปื้อน
ในสารละลายโบรไมด์คู่ 30 นาที และมองเห็น uvp
โดยbiolmaying ระบบ ( gds-8000 ระบบอัลตร้าไวโอเลตผลิตภัณฑ์ Ltd .
Cambridge , UK ) .
2.4.2 . บันไดเครื่องหมายการก่อสร้าง
การแปล กรุณารอสักครู่..
