The environment is the likely source of most nontuberculous mycobacteria (NTM) involved in human
infections, especially pulmonary, skin, and soft tissue infections. In order to measure the prevalence of NTM
in different aquatic ecosystems, we tried to standardize the culture methods used for surface water testing since
many procedures have been described previously. Cultivation of mycobacteria requires long-term incubation
in rich media and inactivation of rapidly growing microorganisms whose growth impedes observation of
mycobacterial colonies. Consequently, the two criteria used for evaluation of the methods examined were (i) the
rate of inhibition of nontarget microorganisms and (ii) the efficiency of recovery of mycobacteria. We compared
the competitive growth of Mycobacterium chelonae and M. avium with nontarget microorganisms on rich
Middlebrook 7H11-mycobactin medium after treatment by several chemical decontamination methods that
included acids, bases, detergent, or cetylpyridinium chloride (CPC) with and without an antibiotic cocktail,
either PANTA (40 U/ml polymyxin, 4 g/ml amphotericin B, 16 g/ml nalidixic acid, 4 g/ml trimethoprim,
and 4 g/ml azlocillin) or PANTAV (PANTA plus 10 g/ml vancomycin). Our results showed that treatment
for 30 min with CPC (final concentration, 0.05%) of water concentrated by centrifugation, followed by culture
on a rich medium supplemented with PANTA, significantly decreased the growth of nontarget microorganisms
(the concentrations were 6.2 0.4 log10 CFU/liter on Middlebrook 7H11j medium and 4.2 0.2 log10 CFU/liter
on Middlebrook 7H11j medium containing PANTA [P < 0.001]), while the effect of this procedure on NTM was
not as great (the concentrations of M. chelonae on the two media were 7.0 0.0 log10 CFU/liter and 6.9 0.0
log10 CFU/liter, respectively, and the concentrations of M. avium were 9.1 0.0 log10 CFU/liter and 8.9 0.0
log10 CFU/liter, respectively). We propose that this standardized culture procedure could be used for detection
of NTM in aquatic samples.
สภาพแวดล้อมที่เป็นแหล่งที่มีแนวโน้มมากที่สุดของ nontuberculous เชื้อมัยโคแบคทีเรีย (NTM) ที่เกี่ยวข้องกับการติดเชื้อในมนุษย์
, ผิวหนังปอดโดยเฉพาะอย่างยิ่งการติดเชื้อและเนื้อเยื่ออ่อน เพื่อวัดความชุกของ
NTM ในระบบนิเวศน้ำที่แตกต่างกันเราพยายามที่จะสร้างมาตรฐานวิธีการวัฒนธรรมใช้สำหรับการทดสอบน้ำผิวดินตั้งแต่หลายขั้นตอน
ได้รับการอธิบายก่อนหน้านี้การเพาะปลูกของเชื้อมัยโคแบคทีเรียต้อง
บ่มระยะยาวในสื่อที่หลากหลายและพลังของจุลินทรีย์ที่เติบโตอย่างรวดเร็วที่มีการเจริญเติบโตขัดขวางการสังเกตของโคโลนีของเชื้อ
ดังนั้นทั้งสองเกณฑ์ที่ใช้สำหรับการประเมินผลของวิธีการตรวจสอบเป็น (i)
อัตราการยับยั้งจุลินทรีย์ nontarget (ii) และประสิทธิภาพของการฟื้นตัวของเชื้อมัยโคแบคทีเรีย เราเปรียบเทียบ
การเจริญเติบโตในการแข่งขันของเชื้อ chelonae และเมตร avium กับจุลินทรีย์ nontarget ที่อุดมไปด้วย
กลาง Middlebrook 7h11-mycobactin หลังการรักษาโดยวิธีการปนเปื้อนสารเคมีหลายอย่างที่รวม
กรด, เบส, ผงซักฟอกหรือคลอไรด์ cetylpyridinium (CPC) ที่มีและไม่มียาปฏิชีวนะค๊อกเทล,
ทั้งพันตา (40 U / ml ยาชนิดนี้ , 4 g / ml amphotericin B, 16 g / ml กรด nalidixic,4
g / ml trimethoprim และ 4 กรัม / มล. azlocillin) หรือ pantav (พันตาบวก 10 g / ml vancomycin) ผลของเราแสดงให้เห็นว่า
รักษาเป็นเวลา 30 นาทีกับ CPC (ความเข้มข้นสุดท้าย 0.05%) น้ำเข้มข้นโดยการหมุนเหวี่ยงตามด้วย
วัฒนธรรมในสื่อที่อุดมไปด้วยการเสริมด้วยพันตามีผลลดการเจริญเติบโตของเชื้อจุลินทรีย์ nontarget
(ความเข้มข้นเป็น 6.2 0 .4 log10 CFU / ลิตรในสื่อ Middlebrook 7h11j 0.2 และ 4.2 log 10 CFU /
ลิตรในสื่อ Middlebrook 7h11j มีพันตา [p <0.001]) ในขณะที่ผลของขั้นตอนนี้เมื่อ NTM เป็น
ไม่ได้เป็นใหญ่ (ความเข้มข้นของ m. chelonae เมื่อทั้งสองสื่อ 7.0 0.0 log10 CFU / ลิตรและ 6.9 0.0
log10 CFU / ลิตรตามลำดับและความเข้มข้นของ m มี. avium เป็น 9.1 ลิตร 0.0 log10 CFU / และ 89
0.0 log10 CFU / ลิตรตามลำดับ) เราเสนอว่าขั้นตอนการเพาะเลี้ยงที่ได้มาตรฐานนี้สามารถนำมาใช้สำหรับการตรวจสอบของ
NTM ในตัวอย่างน้ำ
การแปล กรุณารอสักครู่..