After 24 h, animals were retrieved

After 24 h, animals were retrieved from the chambers. Surviving
animals from each of the four chambers holding groups of 20
individuals were pooled in four eppendorf tubes and immediately
frozen in liquid N2 and kept at −80 ◦C until further enzyme analysis.
Within 1 h of exposure five surviving juveniles from chambers
holding groups of 10 animalswere placed into 60ml screw-capped
glass jars containing 50 ml of ASTM hard water, with Chlorella
vulgaris (Beijerink, strain CCAP C211/12) at a concentration of
5×105 cells/ml, and allowed to feed for 4 h (Mc William and Baird,
2002b). Three jars containing no animals were used to establish
initial algal densities. Post-feeding experiments were conducted
in darkness to avoid algal growth and under relatively constant
temperature conditions (20±2 ◦C) provided by a thermostatted
chamber transported inside the sampling vehicle. Individual feeding
rates (cells individual−1 h−1) were determined as the change in
cell density during 4 h according to themethod given byMcWilliam
and Baird (2002b). Cell density was estimated from absorbance
measurements at  = 650nm in a dual-beam spectrophotometer
(Uvikon 941) using standard calibration curves based on at least
20 data points, with an r2 > 0.98.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

หลังจาก 24 ชม สัตว์ถูกเรียกจากหอ รอดสัตว์จากหอสี่ถือกลุ่ม 20บุคคลที่ถูกทางถูกพู ใน eppendorf สี่หลอด และทันทีแช่แข็งในเหลว N2 และเก็บไว้ที่ −80 ◦C จนวิเคราะห์เอนไซม์ภายใน 1 h ของ juveniles รอดตายห้าแสงจากหอถืออยู่ใน 60ml ปรบมือสกรู animalswere 10 กลุ่มขวดแก้วประกอบด้วย 50 ml ของ ASTM ยากน้ำ Chlorellavulgaris (Beijerink ต้องใช้ CCAP C211/12) ที่ความเข้มข้นของ5 × 105 เซลล์/มล. และอนุญาตให้อาหารสำหรับ 4 h (William Mc และ Baird2002b) 3 ขวดประกอบด้วยสัตว์ไม่เคยสร้างเริ่มต้นความหนาแน่น algal ได้ดำเนินการทดลองให้อาหารภายหลังในความมืดเพื่อหลีกเลี่ยงสาหร่าย และภายใต้ค่อนข้างคงเงื่อนไขอุณหภูมิ (20±2 ◦C) โดยมี thermostattedท่อลำเลียงภายในรถสุ่มตัวอย่าง บุคคลที่ให้อาหารมีกำหนดราคา (เซลล์ individual−1 h−1) เป็นการเปลี่ยนแปลงในความหนาแน่นของเซลล์ระหว่าง h 4 ตาม themethod รับ byMcWilliamและ Baird (2002b) ความหนาแน่นของเซลล์ถูกประเมินจาก absorbanceวัดที่ = 650nm ในเครื่องทดสอบกรดด่างลำแสงคู่(Uvikon 941) โดยใช้เส้นโค้งมาตรฐานเทียบตามข้อมูลน้อยจุดข้อมูล 20 กับ r2 > 0.98

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

หลังจาก 24 ชั่วโมง สัตว์ถูกดึงมาจากห้อง รอดตาย
สัตว์จากแต่ละสี่ห้องถือกลุ่มจาก 20
บุคคลได้รวม 4 หลอดเพนดอร์ฟ และทันที
แช่แข็งในไนโตรเจนเหลวและเก็บที่− 80 ◦ C จนถึงการวิเคราะห์เอนไซม์เพิ่มเติม ภายใน 1 ชั่วโมงของแสงห้า

และเยาวชนที่รอดตายจากห้องถืออยู่ในกลุ่ม 10 animalswere ปกคลุม
60ml สกรูขวดแก้วบรรจุ 50 ml ของ ASTM น้ำอย่างหนักกับสาหร่าย Chlorella vulgaris
( beijerink ความเครียด ccap c211 / 12 ) ที่ระดับความเข้มข้น
5 × 105 เซลล์ / มิลลิลิตร และอนุญาติให้เลี้ยง 4 H ( พิธีกร วิลเลี่ยม และ แบรด
2002b ) สามขวดที่ไม่มีสัตว์ถูกใช้เพื่อสร้างความหนาแน่นเริ่มต้นของสาหร่าย
. ภายหลังการให้การทดลอง
ในความมืดเพื่อหลีกเลี่ยงการเจริญเติบโตของสาหร่ายและค่อนข้างคงที่
ภายใต้อุณหภูมิ ( 20 ± 2 ◦ C ) โดย thermostatted
ห้องขนส่งภายในตัวอย่างรถ แต่ละอาหาร
อัตรา ( เซลล์แต่ละเซลล์− 1 H − 1 ) ซึ่งเป็นการเปลี่ยนแปลงความหนาแน่นเซลล์ในระหว่าง
4 H ตามวิธีการและให้ bymcwilliam
แบร์ด ( 2002b ) ความหนาแน่นของเซลล์ประมาณจากการวัดการดูดกลืนแสง
ที่  = 650nm ในคู่ คานเตอร์
( uvikon 941 ) โดยใช้เส้นโค้งสอบเทียบตามมาตรฐานอย่างน้อย
20 จุดข้อมูลกับ R2 > 0.98 .