Epoxy resins are the most commonly

Epoxy resins are the most commonly employed embedding media, but acrylic resins are also used, particularly where immunohistochemistry is required. Thicker sections (0.35μm to 5μm) of resin-embedded tissue can also be cut for light microscopy. Again, the immiscibility of most epoxy and acrylic resins with water necessitates the use of dehydration, usually with ethanol.

การฝังเนื้อเยื่อ แก้ไข
After the tissues have been dehydrated and infiltrated with the embedding material they are ready for embedding. During this process the tissue samples are placed into moulds along with liquid embedding material which is then hardened. This is achieved by cooling in the case of paraffin wax and heating in the case of the epoxy resins (curing). The acrylic resins are polymerised by heat, ultraviolet light or chemical catalysts. The hardened blocks containing the tissue samples are then ready to be sectioned.

Formalin-fixed, paraffin-embedded (FFPE) tissues may be stored indefinitely at room temperature, and nucleic acids (both DNA and RNA) may be recovered from them decades after fixation, making FFPE tissues an important resource for historical studies in medicine.

Embedding can also be accomplished using frozen, non-fixed tissue in a water-based medium. Pre-frozen tissues are placed into moulds with the liquid embedding material, usually a water-based glycol or resin, which is then frozen to form hardened blocks.

การตัดเซคชั่น แก้ไข
For light microscopy, a glass knife mounted in a microtome is used to cut 10-micrometer-thick tissue sections which are mounted on a glass microscope slide. For transmission electron microscopy, a diamond knife mounted in an ultramicrotome is used to cut 50-nanometer-thick tissue sections which are mounted on a 3-millimeter-diameter copper grid. Then the mounted sections are treated with the appropriate stain.

Frozen tissue embedded in a freezing medium is cut on a microtome in a cooled machine called a cryostat.

Staining แก้ไข
Biological tissue has little inherent contrast in either the light or electron microscope. Staining is employed to give both contrast to the tissue as well as highlighting particular features of interest. Where the underlying mechanistic chemistry of staining is understood, the term histochemistry is used. Hematoxylin and eosin (H&E) is the most commonly used light microscopical stain in histology and histopathology. Hematoxylin stains nuclei blue; eosin stains the cytoplasm pink. Uranyl acetate and lead citrate are commonly used to impart contrast to tissue in the electron microscope.

Special staining: There are hundreds of various other techniques that have been used to selectively stain cells and cellular components. Other compounds used to color tissue sections include safranin, oil red o, Congo red, fast green FCF, silver salts, and numerous natural and artificial dyes that were usually originated from the development dyes for the textile industry.

Histochemistry refers to the science of using chemical reactions between laboratory chemicals and components within tissue. A commonly performed histochemical technique is the Perls Prussian blue reaction, used to demonstrate iron deposits in diseases like hemochromatosis.

Histology samples have often been examined by radioactive techniques. In historadiography a slide (sometimes stained histochemically) is X-rayed. More commonly, autoradiography is used to visualize the locations to which a radioactive substance has been transported within the body, such as cells in S phase (undergoing DNA replication) which incorporate tritiated thymidine, or sites to which radiolabeled nucleic acid probes bind in in situ hybridization. For autoradiography on a microscopic level, the slide is typically dipped into liquid nuclear tract emulsion, which dries to form the exposure film. Individual silver grains in the film are visualized with dark field microscopy.

Recently, antibodies are used to specifically visualize proteins, carbohydrates, and lipids: this is called immunohistochemistry, or when the stain is a fluorescent molecule, immunofluorescence. This technique has greatly increased the ability to identify categories of cells under a microscope. Other advanced techniques, such as nonradioactive in situ hybridization, can be combined with immunochemistry to identify specific DNA or RNA molecules with fluorescent probes or tags that can be used for immunofluorescence and enzyme-linked fluorescence amplification (especially alkaline phosphatase and tyramide signal amplification). Fluorescence microscopy and confocal microscopy are used to detect fluorescent signals with good intracellular detail. Digital cameras are increasingly used to capture histological and histopathological image

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

อีพ๊อกซี่เรซิ่นจะสื่อ embedding มักเจ้า แต่เรซิ่นอะครีลิคยัง ใช้ โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่ immunohistochemistry จำเป็น นอกจากนี้ยังสามารถตัด (0.35μm กับ 5μm) ส่วนหนาของเนื้อเยื่อที่ฝังตัวเรซิ่นสำหรับ microscopy แสง อีก immiscibility อีพ็อกซี่และอะครีลิคเรซิ่นน้ำ necessitates ใช้คายน้ำ มักจะมีเอทานอลสิทธิการได้การฝังเนื้อเยื่อหลังจากที่เนื้อเยื่อมีการอบแห้ง และถูกแทรกซึม ด้วยวัสดุ embedding พวกเขาจะพร้อมสำหรับการฝังตัว ในระหว่างกระบวนการนี้ ตัวอย่างเนื้อเยื่ออยู่ในแม่พิมพ์ด้วยของเหลวที่ฝังวัสดุที่แข็งอยู่แล้ว นี้จะกระทำ โดยการทำความเย็นในกรณีของขี้ผึ้งพาราฟิน และความร้อนในกรณีเรซิ่นอีพ๊อกซี่ที่ (บ่ม) เรซิ่นอะครีลิคเป็น polymerised โดยความร้อน แสงอัลตราไวโอเลต หรือสิ่งที่ส่งเสริมเคมี แล้วบล็อกชุบแข็งที่ประกอบด้วยตัวอย่างเนื้อเยื่อพร้อมที่จะถูกจัดแบ่งเป็นส่วน ๆFormalin-ถาวร พาราฟินฝังเนื้อเยื่อ (FFPE) สามารถจัดเก็บได้อย่างไม่มีกำหนดที่อุณหภูมิห้อง และกรดนิวคลีอิก (ดีเอ็นเอและอาร์เอ็นเอ) อาจสามารถกู้คืนจากทศวรรษหลังเบี ทำเนื้อเยื่อ FFPE เป็นทรัพยากรที่สำคัญสำหรับการศึกษาประวัติศาสตร์การแพทย์ฝังตัวยังมีดำเนินการโดยใช้เนื้อเยื่อแช่แข็ง ไม่ถาวรในการใช้น้ำ เนื้อเยื่อแช่แข็งก่อนจะวางลงในแม่พิมพ์ด้วยของเหลว embedding วัสดุ มักจะเป็นน้ำ glycol หรือเรซิ แล้วการแช่แข็งแบบฟอร์มแข็งบล็อกสิทธิการได้การตัดเซคชั่นสำหรับแสง microscopy มีดแก้วติดใน microtome จะใช้ตัดส่วนเนื้อเยื่อหนา 10 ไมโครมิเตอร์ที่ติดตั้งอยู่บนภาพนิ่งกล้องจุลทรรศน์แก้ว สำหรับส่งอิเล็กตรอน microscopy มีดเพชรติดใน ultramicrotome จะใช้ในการตัด 50-nanometer-หนาเนื้อเยื่อส่วนที่ติดตั้งอยู่บนเส้นตารางทองแดงขนาด 3 มิลลิเมตร ส่วนเมาท์แล้ว จะถือว่า มีคราบที่เหมาะสมเนื้อเยื่อแช่แข็งที่ฝังอยู่ในตัวกลางที่ตรึงอยู่ตัดบน microtome ในเครื่องเย็น ๆ เรียกว่า cryostat เป็นสิทธิการย้อมสีได้เนื้อเยื่อชีวภาพมีน้อยแต่กำเนิดความแตกต่างของแสงหรือกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน ย้อมสีเป็นลูกจ้างให้ความคมชัดทั้งเนื้อเยื่อรวมทั้งคุณลักษณะเน้นเฉพาะที่น่าสนใจ ที่เข้าใจวิชาเคมีกลไกการทำต้นแบบของการย้อมสี histochemistry ระยะใช้ Hematoxylin และ eosin (H & E) เป็นคราบไฟ microscopical ที่ใช้บ่อยที่สุดในลักษณะทางเนื้อเยื่อและจุลพยาธิวิทยา Hematoxylin คราบสกปรกแอลฟาสีฟ้า eosin คราบสกปรกไซโทพลาซึมเป็นสีชมพู ซิเตรต uranyl acetate และตะกั่วโดยทั่วไปใช้เพื่อสอนความแตกต่างในเนื้อเยื่อในกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนการย้อมสีพิเศษ: มีหลายร้อยอื่น ๆ เทคนิคต่าง ๆ ที่ได้ใช้ไปเลือกติดเซลล์และส่วนประกอบโทรศัพท์มือถือ สารประกอบอื่น ๆ ใช้ส่วนเนื้อเยื่อสีรวม safranin, o น้ำมันแดง คองโกแดง เขียวเร็ว FCF เกลือเงิน และแห่งธรรมชาติ และประดิษฐ์สีที่ได้มักจะมาจากสีย้อมพัฒนาสำหรับอุตสาหกรรมสิ่งทอHistochemistry หมายถึงศาสตร์ของการใช้ปฏิกิริยาทางเคมีระหว่างสารเคมีที่ห้องปฏิบัติการและส่วนประกอบภายในเนื้อเยื่อ เทคนิค histochemical ดำเนินการโดยทั่วไปคือ Perls Prussian น้ำเงินปฏิกิริยา หมายฝากเหล็กในโรคเช่น hemochromatosisมิญชวิทยาตัวอย่างได้มักจะถูกตรวจสอบ โดยเทคนิคกัมมันตรังสี ใน historadiography เป็น X-rayed ภาพนิ่ง (บางครั้งสี histochemically) มากกว่าปกติ autoradiography ใช้เห็นภาพสถานที่ที่ได้มีการส่งสารกัมมันตรังสีภายในร่างกาย เช่นเซลล์ในระยะ S (อยู่ในระหว่างการจำลองดีเอ็นเอ) ที่ tritiated thymidine หรือไซต์ที่ผูกคลิปปากตะเข้ radiolabeled กรดนิวคลีอิกในใน situ hybridization โดยทั่วไปจุ่มลงภาพนิ่งสำหรับ autoradiography ในระดับกล้องจุลทรรศน์ เป็นทางเดินนิวเคลียร์เหลวอิมัลชัน ซึ่งแห้งแบบฟิล์มรับแสง เกรนแต่ละเงินที่ฟิล์มมี visualized กับฟิลด์เข้ม microscopyเมื่อเร็ว ๆ นี้ ใช้แอนตี้เห็นภาพโดยเฉพาะโปรตีน คาร์โบไฮเดรต และโครงการ: คือ immunohistochemistry หรือเมื่อคราบ โมเลกุลเรืองแสง immunofluorescence เทคนิคนี้ได้อย่างมากเพิ่มความสามารถในการระบุประเภทของเซลล์ภายใต้กล้องจุลทรรศน์ ขั้นสูงเทคนิค เช่น nonradioactive ใน situ hybridization สามารถใช้ร่วมกับ immunochemistry เพื่อระบุเฉพาะโมเลกุลดีเอ็นเอหรืออาร์เอ็นเอเรืองแสงคลิปปากตะเข้หรือแท็กที่ใช้ immunofluorescence และขยายเชื่อมโยงเอนไซม์ fluorescence (โดยเฉพาะอย่างยิ่งอัลคาไลน์ฟอสฟาเตสและขยายสัญญาณ tyramide) Fluorescence microscopy และ confocal microscopy จะใช้เพื่อตรวจหาสัญญาณฟลูออเรสกับรายละเอียด intracellular ดี กล้องดิจิตอลมากขึ้นใช้ในการจับภาพสรีรวิทยา และ histopathological

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

อีพ็อกซี่เรซิ่นที่มีการจ้างงานมากที่สุดสื่อฝัง แต่คริลิคเรซินยังใช้โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่จะต้อง immunohistochemistry ส่วนหนา (0.35μmเพื่อ5μm) ของเนื้อเยื่อเรซินฝังตัวนอกจากนี้ยังสามารถตัดแสงกล้องจุลทรรศน์ อีกครั้ง immiscibility อีพ็อกซี่เรซิ่นมากที่สุดและคริลิคที่มีน้ำจำเป็นต้องใช้การคายน้ำมักจะมีเอทานอล. การฝังเนื้อเยื่อแก้ไขหลังจากเนื้อเยื่อที่ได้รับการคายน้ำและแทรกซึมเข้าไปอยู่กับวัสดุที่ฝังพวกเขาจะพร้อมสำหรับการฝัง ในระหว่างกระบวนการนี้ตัวอย่างเนื้อเยื่อจะถูกวางลงในแม่พิมพ์พร้อมกับวัสดุฝังของเหลวซึ่งจะแข็งแล้ว นี้จะทำได้โดยการระบายความร้อนในกรณีของขี้ผึ้งพาราฟินและความร้อนในกรณีของอีพ็อกซี่เรซิน (รักษา) คริลิคเรซินที่มี polymerised ด้วยความร้อนแสงอัลตราไวโอเลตหรือตัวเร่งปฏิกิริยาทางเคมี บล็อกแข็งที่มีตัวอย่างเนื้อเยื่อที่มีแล้วพร้อมที่จะแบ่ง. ฟอร์มาลินคงพาราฟินฝังตัว (FFPE) เนื้อเยื่ออาจถูกเก็บไว้อย่างไม่มีกำหนดที่อุณหภูมิห้องและกรดนิวคลีอิก (ทั้ง DNA และ RNA) อาจจะกู้คืนจากพวกเขาทศวรรษที่ผ่านมาหลังจากการตรึง เนื้อเยื่อทำให้ FFPE เป็นทรัพยากรที่สำคัญสำหรับการศึกษาประวัติศาสตร์ในการแพทย์. ฝังนอกจากนี้ยังสามารถทำได้โดยใช้แช่แข็งเนื้อเยื่อที่ไม่คงที่ในกลางน้ำที่ใช้ เนื้อเยื่อก่อนแช่แข็งที่มีอยู่ลงในแม่พิมพ์ด้วยวัสดุฝังของเหลวมักจะเป็นคอลน้ำตามหรือเรซินซึ่งถูกแช่แข็งแล้วในรูปแบบบล็อกแข็ง. การตัดเซคชั่นแก้ไขสำหรับกล้องจุลทรรศน์แสง, มีดแก้วติดตั้งใน microtome จะใช้ในการตัดเนื้อเยื่อส่วน 10 ไมโครเมตรหนาที่ติดตั้งอยู่บนกล้องจุลทรรศน์กระจกสไลด์ สำหรับกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนมีดเพชรที่ติดตั้งอยู่ใน ultramicrotome ใช้ในการตัดเนื้อเยื่อส่วน 50 นาโนเมตรหนาที่ติดตั้งอยู่บน 3 มิลลิเมตรเส้นผ่าศูนย์กลางตารางทองแดง จากนั้นส่วนที่ติดตั้งได้รับการปฏิบัติที่มีรอยเปื้อนที่เหมาะสม. เนื้อเยื่อแช่แข็งที่ฝังอยู่ในสื่อการแช่แข็งที่ถูกตัดใน microtome ในเครื่องระบายความร้อนที่เรียกว่า cryostat. ย้อมแก้ไขเนื้อเยื่อชีวภาพมีความคมชัดโดยธรรมชาติเล็ก ๆ น้อย ๆ ทั้งในแสงหรือกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน การย้อมสีเป็นลูกจ้างเพื่อให้ตรงกันข้ามกับเนื้อเยื่อทั้งสองเป็นไฮไลท์โดยเฉพาะคุณสมบัติที่น่าสนใจ ในกรณีที่สารเคมีที่กลไกพื้นฐานของการย้อมสีเป็นที่เข้าใจ histochemistry คำที่ใช้ Hematoxylin และ Eosin (H & E) เป็นส่วนใหญ่ที่ใช้กันทั่วไปคราบจุลเบาและจุลพยาธิสภาพ คราบ Hematoxylin นิวเคลียสสีน้ำเงิน Eosin คราบสีชมพูพลาสซึม uranyl acetate และนำซิเตรตเป็นที่นิยมใช้ในการบอกตรงกันข้ามกับเนื้อเยื่อในกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน. การย้อมสีพิเศษ: มีหลายร้อยของเทคนิคอื่น ๆ ที่ได้รับมาใช้ในการคัดเลือกเซลล์เปื้อนและชิ้นส่วนโทรศัพท์มือถือที่มี สารประกอบอื่น ๆ ที่ใช้ส่วนเนื้อเยื่อสีรวม safranin น้ำมันสีแดง o คองโกแดงอย่างรวดเร็วสีเขียว FCF, เกลือเงินและหลายสีย้อมธรรมชาติและประดิษฐ์ที่ได้เกิดขึ้นมักจะมาจากสีย้อมพัฒนาอุตสาหกรรมสิ่งทอ. Histochemistry หมายถึงศาสตร์แห่งการใช้ ปฏิกิริยาทางเคมีระหว่างสารเคมีที่ห้องปฏิบัติการและส่วนประกอบภายในเนื้อเยื่อ เทคนิคการดำเนินการทั่วไปฮีสโตเคมีเป็น Perls ปฏิกิริยาสีฟ้าปรัสเซียนที่ใช้ในการแสดงให้เห็นถึงเงินฝากธาตุเหล็กในโรคเช่น hemochromatosis. ตัวอย่างจุลมักจะถูกตรวจสอบโดยใช้เทคนิคของสารกัมมันตรังสี ใน historadiography สไลด์ (บางครั้งสี histochemically) เป็น X-rayed มากกว่าปกติ autoradiography จะใช้ในการมองเห็นภาพสถานที่ที่เป็นสารกัมมันตรังสีที่ได้รับการเคลื่อนย้ายภายในร่างกายเช่นเซลล์ในระยะ S (ระหว่างการจำลองดีเอ็นเอ) ซึ่งรวม thymidine tritiated หรือเว็บไซต์ที่ยานสำรวจกรดนิวคลีอิก radiolabeled ผูกในในแหล่งกำเนิด การผสมพันธุ์ สำหรับ autoradiography ในระดับกล้องจุลทรรศน์สไลด์มักจะจุ่มลงไปในระบบทางเดินอิมัลชันนิวเคลียร์ของเหลวที่แห้งในรูปแบบภาพยนตร์เรื่องแสง เม็ดเงินส่วนบุคคลในภาพยนตร์เรื่องนี้ได้รับการมองเห็นด้วยกล้องจุลทรรศน์สนามมืด. เมื่อเร็ว ๆ นี้แอนติบอดี้ที่ใช้ในการมองเห็นภาพโดยเฉพาะโปรตีนคาร์โบไฮเดรตและไขมัน: นี้เรียกว่า immunohistochemistry หรือเมื่อคราบเป็นโมเลกุลเรืองแสงอิมมูโน เทคนิคนี้ได้เพิ่มขึ้นอย่างมากในความสามารถในการระบุประเภทของเซลล์ภายใต้กล้องจุลทรรศน์ เทคนิคขั้นสูงอื่น ๆ เช่น nonradioactive ในแหล่งกำเนิดพันธุ์, สามารถใช้ร่วมกับ immunochemistry การระบุดีเอ็นเอที่เฉพาะเจาะจงหรือโมเลกุล RNA กับยานสำรวจเรืองแสงหรือแท็กที่สามารถใช้สำหรับการอิมมูโนและเอนไซม์ที่เชื่อมโยงการขยายการเรืองแสง (โดยเฉพาะด่าง phosphatase และขยายสัญญาณ tyramide) กล้องจุลทรรศน์เรืองแสงและกล้องจุลทรรศน์ confocal จะใช้ในการตรวจจับสัญญาณเรืองแสงที่มีรายละเอียดภายในเซลล์ที่ดี กล้องดิจิตอลที่มีการใช้มากขึ้นในการจับภาพและเนื้อเยื่อทางจุลพยาธิวิทยา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

อีพ็อกซี่เรซิ่นจะนิยมใช้ผ่านสื่อ แต่กระแสน้ำเชี่ยวจะใช้ โดยเฉพาะอย่างยิ่งที่หลอดต้องการ ความหนาส่วน ( 0.35 μ M 5 μ M ) เม็ดฝังเนื้อเยื่อยังสามารถตัดกล้องจุลทรรศน์แสง อีกครั้ง , immiscibility ของอีพอกซีเรซินกับน้ำมากที่สุด และ อะครีลิก จำเป็นต้องใช้น้ำ ปกติ

กับเอทานอลการฝังเนื้อเยื่อแก้ไข
หลังจากเนื้อเยื่อได้รับการแห้งและแทรกซึมด้วยการฝังวัสดุ พวกเขาจะพร้อมสำหรับการฝัง . ในระหว่างกระบวนการนี้เนื้อเยื่อตัวอย่างจะอยู่ในแม่พิมพ์พร้อมกับของเหลว การฝังวัสดุซึ่งเป็นแล้วแข็งกระด้าง นี่คือความโดยการใช้ในกรณีของขี้ผึ้งพาราฟินและความร้อน ในกรณีของอีพอกซีเรซิน ( curing )อะคริลิกเรซินเป็น polymerised โดยความร้อน แสงอัลตราไวโอเลต หรือ ตัวเร่งปฏิกิริยาทางเคมี แข็งบล็อกที่มีเนื้อเยื่อตัวอย่างแล้วพร้อมที่จะตัด .

ฟอร์มาลินถาวร พาราฟินฝังตัว ( ffpe ) เนื้อเยื่ออาจจะเก็บไปเรื่อย ๆ ที่อุณหภูมิห้อง และ กรดนิวคลีอิก ( DNA และ RNA ) อาจจะหายจากพวกเขาทศวรรษที่ผ่านมาหลังจากการตรึง ,ทำให้เนื้อเยื่อ ffpe เป็นทรัพยากรที่สำคัญสำหรับการศึกษาประวัติศาสตร์การแพทย์

การฝังตัวยังสามารถประสบความสำเร็จใช้แช่แข็ง ไม่ซ่อมเนื้อเยื่อในอาหารสูตรน้ำ . ก่อนแช่แข็งเนื้อเยื่อจะอยู่ในแม่พิมพ์ด้วยของเหลวผ่านวัสดุที่มักจะใช้ตาม หรือ เรซิน ซึ่งเป็นแล้วแช่แข็งแบบแข็งบล็อก


การตัดเซคชั่นแก้ไขกล้องจุลทรรศน์แสง ,มีดกระจกที่ติดตั้งในเครื่องตัดชิ้นเนื้อเพื่อใช้ตัด 10 ไมโครเมตรหนาเนื้อเยื่อส่วนที่ติดกับกระจกแบบสไลด์ ส่งกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน เพชรมีดติดใน ultramicrotome จะใช้ในการตัดเนื้อเยื่อส่วนหนา 50 นาโนเมตร ซึ่งติดตั้งบน 3-millimeter-diameter ทองแดงตาราง แล้วติดส่วนที่เป็นรักษาด้วยคราบ

)