Gram-staining was performed as described by Gerhardt et al. (1994) and poly-β-hydroxybutyrate granules were observed after staining the cells with Sudan black. Cell morphology and the presence of flagella were observed by light microscopy (model A3000, ×1000; Zeiss) and transmission electron microscopy (1200EX; Jeol) by using cells grown for 48 h at 30 °C on NA. For the latter technique, cells from exponentially growing cultures were negatively stained with 2 % (w/v) uranyl acetate and the grids were examined after being air-dried (see Supplementary Fig. S1 in IJSEM Online). The pH range for growth was determined in NB at 30 °C, which was adjusted prior to sterilization to pH 3–11 (at 0.5 pH unit intervals) by using appropriate biological buffers (Chung et al., 1995). Growth at 15, 20, 25, 30, 35 and 40 °C was measured in NB. The NaCl requirement for growth was determined by using nutrient broth (BD Difco) containing 0, 0.5 and 1.0–20.0 % (w/v) NaCl (at 1.0 % intervals). Anaerobic growth was assessed in NB and NA supplemented with potassium nitrate after incubation in an Oxoid AnaeroGen system (Miller et al., 1995). Growth under these conditions was recorded by measuring the OD595 of the cultures after 24, 48 and 72 h. Catalase and oxidase activities and hydrolysis of casein, starch, aesculin, gelatin, urea and Tweens 40, 60 and 80, nitrate reduction, H2S production and indole production were assessed as described by Cowan & Steel (1965). Other biochemical characteristics were investigated by using the GN2 (Biolog), API ZYM, API 20E, API 20NE and ATB-PSE5 (bioMérieux) systems following the manufacturers’ recommendations. The morphological, physiological and biochemical characteristics of strain CC-SBABM117T are given in the genus and species descriptions and in Table 1⇓. Detection of photosynthetic pigments was carried out as described by Biebl
การย้อมสีแกรมได้ดำเนินการตามที่อธิบาย Gerhardt ตอัล (1994) และβ-ไฮดรอกซีโพลีแกรนูลที่ถูกตั้งข้อสังเกตหลังจากการย้อมสีเซลล์ที่มีสีดำซูดาน ลักษณะทางสัณฐานวิทยาของเซลล์และการแสดงตนของ flagella ถูกสังเกตเห็นโดยการใช้กล้องจุลทรรศน์แสง (รุ่น A3000, × 1000; Zeiss) และกล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอน (1200ex; JEOL) โดยใช้เซลล์ที่ปลูกเป็นเวลา 48 ชั่วโมงที่ 30 องศาเซลเซียสใน na สำหรับเทคนิคหลังเซลล์จากวัฒนธรรมที่เติบโตชี้แจงมีการย้อมลบกับ 2% (w / v) อะซีเตทกริด uranyl และมีการตรวจสอบหลังจากที่อากาศแห้ง (ดูมะเดื่อเสริม s1. ใน ijsem ออนไลน์) ช่วง ph สำหรับการเจริญเติบโตถูกกำหนดใน nb ที่ 30 ° C, ที่มีการปรับก่อนที่จะฆ่าเชื้อที่มีค่า pH 3-11 (ที่ 0.5 ช่วงเวลาหน่วย ph) โดยใช้บัฟเฟอร์ชีวภาพที่เหมาะสม (Chung et al,., 1995)การเจริญเติบโตที่ 15, 20, 25, 30, 35 และ 40 องศาเซลเซียสเป็นวัดใน nb ความต้องการโซเดียมคลอไรด์สำหรับการเจริญเติบโตถูกกำหนดโดยการใช้น้ำซุปสารอาหาร (bd difco) ที่มี 0, 0.5 และ 1.0-20.0% (w / v) โซเดียมคลอไรด์ (ในช่วง 1.0%) การเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ได้รับการประเมินใน nb na และเสริมด้วยโพแทสเซียมไนเตรตหลังจากการบ่มในระบบ anaerogen oxoid (มิลเลอร์และคณะ. 1995)การเจริญเติบโตภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ถูกบันทึกไว้โดยการวัด od595 ของวัฒนธรรมหลังจากที่ 24, 48 และ 72 ชั่วโมง catalase และกิจกรรม oxidase และการย่อยสลายของเคซีนแป้ง aesculin, เจลาตินยูเรียและ tweens 40, 60 และ 80 ลดไนเตรตในการผลิต H2S และการผลิตอินโดลมีการประเมินตามที่อธิบายแวนส์&เหล็ก (1965)ลักษณะทางชีวเคมีอื่น ๆ ที่ได้รับการตรวจสอบโดยใช้ขนาดถาด GN 2 (Biolog) API žym, API 20E, API 20ne และ ATB-pse5 (BIOMERIEUX) ระบบตามคำแนะนำของผู้ผลิต ลักษณะทางสัณฐานวิทยาสรีรวิทยาและชีวเคมีของสายพันธุ์ cc-sbabm117t จะได้รับในรายละเอียดประเภทและชนิดและในตารางที่ 1 ⇓ตรวจสอบการสังเคราะห์เม็ดสีถูกหามออกตามที่อธิบาย Biebl
การแปล กรุณารอสักครู่..
ย้อมสีกรัมถูกดำเนินการตามที่อธิบายไว้โดย Gerhardt et al. (1994) และเม็ดโพลี-β-hydroxybutyrate ได้สังเกตหลังจากการย้อมสีเซลล์ซูดานสีดำ สัณฐานวิทยาของเซลล์และของ flagella ถูกตรวจสอบ โดยแสง microscopy (รุ่น A3000, × 1000 Zeiss) และส่งอิเล็กตรอน microscopy (1200EX Jeol) โดยเซลล์ที่โตในเรี่ยม h 48 ที่ 30 ° C เทคนิคหลัง เซลล์จากวัฒนธรรมการเจริญเติบโตเป็นทวีคูณเมื่อได้ส่งสีกับ 2% (w/v) uranyl acetate และกริดถูกตรวจสอบถูก air-dried (ดูฟิกเสริม S1 ใน IJSEM ออนไลน์) ช่วงการวัดการเจริญเติบโตถูกกำหนดใน NB ที่ 30 ° C ซึ่งมีการปรับปรุงก่อนการฆ่าเชื้อการ 3–11 ค่า pH (ในช่วง 0.5 ในหน่วย pH) โดยใช้ข้อมูลทางชีวภาพที่เหมาะสม (Chung et al., 1995) เจริญเติบโตที่ 15, 20, 25, 30, 35 และ 40 ° C ถูกวัดในจำนวนผู้เข้า NaCl ข้อกำหนดสำหรับการเจริญเติบโตที่ถูกกำหนด โดยการใช้ธาตุอาหารซุป (BD Difco) ประกอบด้วย 0, 0.5 และ 1.0–20.0% (w/v) NaCl (ในช่วง 1.0%) ไม่ใช้ออกซิเจนในการเจริญเติบโตถูกประเมินใน NB และ NA ที่เสริม ด้วยดินประสิวหลังจากฟักตัวใน Oxoid AnaeroGen ระบบ (มิลเลอร์และ al., 1995) เจริญเติบโตภายใต้เงื่อนไขเหล่านี้ได้ถูกบันทึก โดยวัด OD595 วัฒนธรรมหลัง 24, 48 และ 72 กิจกรรม Catalase และ oxidase h. และไฮโตรไลซ์ของเคซีน แป้ง aesculin ตุ๋น ยูเรีย และ Tweens 40, 60 และ 80 ลดไนเตรต ไข่เน่า และผลิตอินโดลถูกประเมินตามที่อธิบายไว้ โดย Cowan &เหล็ก (1965) ลักษณะอื่น ๆ ชีวเคมีถูกตรวจสอบ โดยใช้การ GN2 (Biolog), API ZYM, API 20E, API 20NE และระบบ ATB-PSE5 (bioMérieux) ตามคำแนะนำของผู้ผลิต ลักษณะสัณฐาน สรีรวิทยา และชีวเคมี ของต้องใช้ CC SBABM117T จะได้รับ ในคำอธิบายของสกุลและชนิด และ ในตาราง 1⇓ ตรวจสอบสี photosynthetic ถูกดำเนินการตามที่อธิบายไว้ โดย Biebl
การแปล กรุณารอสักครู่..