4. DiscussionCichoric acid and rosm

4. Discussion
Cichoric acid and rosmaric acid exist naturally as major
phenolic compounds in lettuce (Rajashekar et al., 2012; Becker
et al., 2013) and basil (Lee and Scagel, 2009; Taulavuori et al., 2013),
respectively. In accordance with previous studies, cichoric acid was
the most abundant phenolic compound found in red leaf lettuce
(Table 2) and similarly rosmaric acid in basil (Table 3). In
accordance with our previous study (Taulavuori et al., 2013), the
enhanced blue light increased only few of the
flavonoid
compounds in basil. This may indicate that the phenolic pool is
not the most responsive to changes in light quality in this plant
species. This is supported by the fact that terpenoid biosynthesis
may be highly increased under environmental stress in basil (Misra
et al., 2014). And indeed, the blue light has induced essential oil
production in basil, especially under blue light exposure (Amaki
et al., 2011). However, the supplemental blue light has increased
rosmaric acid concentration up to 4 fold compared to plants grown
under high sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). In the
present work, the rosmaric acid in basil was relatively high in all
treatments, but marginally decreased during the experiment in
response to the extension of the blue light period.
It has been shown that specifically red light increases the
rosmaric acid concentration in basil (Shiga et al., 2009). This
indicates that rosmaric acid biosynthesis is reactive to both blue
and red wavelengths. However, cichoric acid production was
boosted clearly by supplemental blue light in both species
(Tables 2 and 3). When compared to our previous study (Taulavuori
et al., 2013) analogous
findings may be observed in concentrationsof chlorogenic acid, p-OH cinnamic acid derivative and feruloyl-
tartaric acid in basil. There were no differences in concentrations of
these compounds between blue and red light treatments in this
study (Table 3), while supplemental blue increased these
compounds significantly compared to basil plants grown under
high sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). This indicates
that biosynthetic accumulation of these phenolic acids may be
increased both blue- and red- weighted spectra, similarly rosmaric
acid in basil.
The red leaf lettuce is known to be rich in quercetins and
chlorogenic acid (Crozier et al., 2000; Arabbi et al., 2004; Becker
et al., 2013). Total phenols, chlorogenic acid and anthocyanin
concentrations in the seedlings of this cultivar were found to be
significantly higher under blue-containing LEDs (Johkan et al.,
2010). There may exist a direct link between blue light biosynthesis
of certain phenylpropanoids through photosynthesis. Becker et al.
(2013) showed a close correlation between quercetin-glycosides
concentrations with the reducing sugar concentration indicating
that glucose might directly increase glucosylation of certain
flavonoid aglycones to their glucosides. Accordingly, concentra-
tions of two quercetin-glucosides increased in red leaf lettuce
under supplemental blue light (Table 2).
The two species investigated responded differentially in terms
of phytochemical accumulation, in accordance with the
first
hypothesis and previous literature (e.g., Julkunen-Tiitto, 1989;
Crozier et al., 1997; Pichersky et al., 2006; Cheynier et al., 2013).
Taken together, supplemental blue light increased many bioactive
compounds in red leaf lettuce, while in basil only two compounds
show this response. In addition, although cichoric acid increased
under supplemental blue light in basil, its concentration was also
relatively high under the red-weighted light. Finally, lettuce and
basil yielded a different mixture of substances. Thus, these
findings
support the hypothesis that possible responses are speciesspecific.
Consequently, the hypothesis that blue light rather than
red is behind the phenolic acid and
flavonoid biosynthesis, is only
partially supported. The species-specific difference was evident in
relation to hypothesis 3: certain
flavonoids accumulated over time
in red leaf lettuce while not in basil. However, hypothesis 4 –
according to which the developmental stage may affect the
response – can be neither supported nor rejected by the data.
In addition to the light spectrum, the species-specific responses
may also be modified by other aspects of light. For example, light
intensity may be a factor behind the regulation of these responses.
Especially dihydroxy-B ring-substituted
flavonoids (e.g., quercetin
glycosides) have been found to be up-regulated by high irradiance
(Agati et al., 2013). As the light saturation level of basil is much
higher, exceeding >1000 mmol m2 s1, compared to the respective
level (

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

4. DiscussionCichoric acid and rosmaric acid exist naturally as majorphenolic compounds in lettuce (Rajashekar et al., 2012; Beckeret al., 2013) and basil (Lee and Scagel, 2009; Taulavuori et al., 2013),respectively. In accordance with previous studies, cichoric acid wasthe most abundant phenolic compound found in red leaf lettuce(Table 2) and similarly rosmaric acid in basil (Table 3). Inaccordance with our previous study (Taulavuori et al., 2013), theenhanced blue light increased only few of theflavonoidcompounds in basil. This may indicate that the phenolic pool isnot the most responsive to changes in light quality in this plantspecies. This is supported by the fact that terpenoid biosynthesismay be highly increased under environmental stress in basil (Misraet al., 2014). And indeed, the blue light has induced essential oilproduction in basil, especially under blue light exposure (Amakiet al., 2011). However, the supplemental blue light has increasedrosmaric acid concentration up to 4 fold compared to plants grownunder high sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). In thepresent work, the rosmaric acid in basil was relatively high in alltreatments, but marginally decreased during the experiment inresponse to the extension of the blue light period.It has been shown that specifically red light increases therosmaric acid concentration in basil (Shiga et al., 2009). Thisindicates that rosmaric acid biosynthesis is reactive to both blueand red wavelengths. However, cichoric acid production wasboosted clearly by supplemental blue light in both species(Tables 2 and 3). When compared to our previous study (Taulavuoriet al., 2013) analogousfindings may be observed in concentrationsof chlorogenic acid, p-OH cinnamic acid derivative and feruloyl-tartaric acid in basil. There were no differences in concentrations ofthese compounds between blue and red light treatments in thisstudy (Table 3), while supplemental blue increased thesecompounds significantly compared to basil plants grown underhigh sodium pressure lamps (Taulavuori et al., 2013). This indicatesthat biosynthetic accumulation of these phenolic acids may beincreased both blue- and red- weighted spectra, similarly rosmaricacid in basil.The red leaf lettuce is known to be rich in quercetins andchlorogenic acid (Crozier et al., 2000; Arabbi et al., 2004; Beckeret al., 2013). Total phenols, chlorogenic acid and anthocyaninconcentrations in the seedlings of this cultivar were found to besignificantly higher under blue-containing LEDs (Johkan et al.,2010). There may exist a direct link between blue light biosynthesisof certain phenylpropanoids through photosynthesis. Becker et al.(2013) showed a close correlation between quercetin-glycosidesconcentrations with the reducing sugar concentration indicatingthat glucose might directly increase glucosylation of certainflavonoid aglycones to their glucosides. Accordingly, concentra-tions of two quercetin-glucosides increased in red leaf lettuceunder supplemental blue light (Table 2).The two species investigated responded differentially in termsof phytochemical accumulation, in accordance with thefirsthypothesis and previous literature (e.g., Julkunen-Tiitto, 1989;Crozier et al., 1997; Pichersky et al., 2006; Cheynier et al., 2013).Taken together, supplemental blue light increased many bioactivecompounds in red leaf lettuce, while in basil only two compoundsshow this response. In addition, although cichoric acid increasedunder supplemental blue light in basil, its concentration was alsorelatively high under the red-weighted light. Finally, lettuce andbasil yielded a different mixture of substances. Thus, thesefindingssupport the hypothesis that possible responses are speciesspecific.Consequently, the hypothesis that blue light rather thanred is behind the phenolic acid andflavonoid biosynthesis, is onlypartially supported. The species-specific difference was evident inrelation to hypothesis 3: certainflavonoids accumulated over timein red leaf lettuce while not in basil. However, hypothesis 4 –according to which the developmental stage may affect theresponse – can be neither supported nor rejected by the data.In addition to the light spectrum, the species-specific responsesmay also be modified by other aspects of light. For example, lightintensity may be a factor behind the regulation of these responses.Especially dihydroxy-B ring-substitutedflavonoids (e.g., quercetinglycosides) have been found to be up-regulated by high irradiance(Agati et al., 2013). As the light saturation level of basil is muchhigher, exceeding >1000 mmol m2 s1, compared to the respectivelevel (<300–400 mmol m2 s1) of lettuce (e.g., Kitaya et al., 1998;Chang et al., 2008), it is understandable that basil was not asresponsive to the experimental treatments as lettuce under thelight intensity supplied (300 mmol m2 s1). It should be rememberedthat red leaf lettuce is bred for production of highanthocyanins, the pigments causing the red color, and givingfurther protection against high light intensity.There were practically no differences in shoot elongation ofbasil grown under either red-weighted or blue dominating light(Fig. 4). This result is in accordance with the growth suppressingeffect of red light found by (Ballar
e, 2014, and references therein),and the conclusion that removal of blue light increased elongationof many species (Sarala et al., 2011). In Scots pine seedlings theobserved stem elongation is thought to be a photomorphogenicresponse, which is not dependent on gas exchange or accumulationof growth resources (Sarala et al., 2009). These reactions maybe explained byflavonoids through altered p-coumaroyl CoAmetabolism mediating photomorphogenic responses (e.g., Briggsand Huala, 1999; Folta and Spalding, 2001; Parks et al., 2001).Flavonoids and monolignols are synthesized by two differentroutes: if synthesis of quercetin and otherflavonoids is enhancedunder blue light it may lead to a decrease in the monolignolsneeded in lignin biosynthesis. This may cause decreased growththrough affecting chalcone synthase activity and auxin transport.In fact, Besseau et al. (2007) showed that repression of ligninsynthesis in Arabidopsis thaliana leads to the light-controlledredirection of the metabolicflux intoflavonoids and theyconcluded that the reduced size phenotype of the plants is dueto the presence offlavonoids. Moreover, inhibition of thecondensed tannin pathway leads to the accumulation of thecompounds preceding the phenylpropanoid pathways (Kosonenet al., 2015). The increase is especially strong inflavonolderivatives, for example quercetins which are known to be amongthe most active phenolic compounds in perturbing auxintransport. Moreover,flavonoids have been shown to be locatedin the nucleus where they may control the transcription of genesinvolved in growth and development (e.g., Saslowsky et al., 2005).For future prospects, it is interesting to identify in more details,which range or peak of the blue light is inducible for thebiosynthesis of a given specificflavonoid or phenolic acid. Indeed,the question concerns the UV radiation as well, since both UV-A(e.g., Wilson et al., 2001) and UV-B radiation (e.g., Gerhardt et al.,
2008) modify
flavonoid composition. The enzyme behind
flavo-
noid biosynthesis is chalcone synthase (CHS), and it is shown that
UV-A radiation and blue light inductions in CHS expression are
mediated by cryptochrome (cry1) (Wade et al., 2001). Phenylala-
nine, a precursor in
flavonoid biosynthesis, is required for specific
developmental responses mediated by UV radiation (Sullivan et al.,
2014). It is also well-known, that UV-B radiation limits growth and
alters plant morphology (e.g., Teramura and Sullivan,1994), i.e., the
changes also responsive to blue light (e.g., Sarala et al., 2011).
In conclusion, this study supports earlier work, according to
which the
flavonoid and phenolic acid biosynthesis in plants are
species (genetic) dependent. However, manipulation of the
environmental light spectrum may boost the synthesis of certain
products. Of the species studied, red leaf lettuce was much more
responsive to supplemental blue light. Supplemental blue light
increases production of these compounds especially in red leaf
lettuce, while both blue and red light may regulate their
production in basil. Some of the compounds detected accumulated
continuously as a function of the time spent under supplemental
blue light in red leaf lettuce, but not in basil.

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

4. อภิปราย
Cichoric กรดและกรด rosmaric
มีอยู่ตามธรรมชาติที่สำคัญเป็นสารประกอบฟีนอลในผักกาดหอม(Rajashekar et al, 2012;. เบกเกอร์
et al, 2013.) และใบโหระพา (ลีและ Scagel 2009;. Taulavuori et al, 2013)
ตามลำดับ สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้ากรด cichoric
เป็นสารประกอบฟีนอลที่มีมากที่สุดที่พบในผักกาดหอมใบสีแดง
(ตารางที่ 2) และกรด rosmaric ในทำนองเดียวกันในโหระพา (ตารางที่ 3) ในสอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา (Taulavuori et al., 2013) ซึ่งเป็นแสงสีฟ้าที่เพิ่มขึ้นเพิ่มขึ้นไม่กี่เท่านั้นflavonoid สารในใบโหระพา นี้อาจบ่งชี้ว่าสระว่ายน้ำฟีนอลคือไม่ตอบสนองมากที่สุดต่อการเปลี่ยนแปลงในคุณภาพแสงในพืชชนิดนี้สายพันธุ์ นี้ได้รับการสนับสนุนจากข้อเท็จจริงที่ว่าการสังเคราะห์ terpenoid อาจจะเพิ่มขึ้นอย่างมากภายใต้ความเครียดสิ่งแวดล้อมในโหระพา (Misra et al., 2014) และแน่นอนแสงสีฟ้าที่มีการเหนี่ยวนำน้ำมันหอมระเหยการผลิตในโหระพาโดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้แสงสีฟ้า (Amaki et al., 2011) แต่แสงสีฟ้าเสริมได้เพิ่มความเข้มข้นของกรด rosmaric ถึง 4 เท่าเมื่อเทียบกับพืชที่ปลูกภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง(Taulavuori et al., 2013) ในการทำงานปัจจุบันกรด rosmaric ในโหระพาค่อนข้างสูงในทุกการรักษาแต่ลดลงเล็กน้อยในช่วงการทดลองในการตอบสนองต่อการขยายระยะเวลาแสงสีฟ้า. จะได้รับการแสดงให้เห็นว่าแสงสีแดงโดยเฉพาะเพิ่มความเข้มข้นของกรด rosmaric ในโหระพา ( Shiga et al., 2009) นี้แสดงให้เห็นว่าการสังเคราะห์กรด rosmaric เป็นปฏิกิริยาทั้งสีฟ้าความยาวคลื่นและสีแดง อย่างไรก็ตามการผลิตกรด cichoric ได้เพิ่มขึ้นอย่างเห็นได้ชัดด้วยแสงสีฟ้าเสริมในทั้งสองชนิด(ตารางที่ 2 และ 3) เมื่อเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา (Taulavuori et al., 2013) คล้ายการค้นพบอาจจะสังเกตเห็นในกรดchlorogenic concentrationsof, p-OH อนุพันธ์กรดซินนามิกและ feruloyl- กรดทาร์ทาริกในใบโหระพา ไม่มีความแตกต่างในระดับความเข้มข้นของการมีสารเหล่านี้ระหว่างการรักษาแสงสีฟ้าและสีแดงในการศึกษา(ตารางที่ 3) ในขณะที่สีฟ้าเสริมที่เพิ่มขึ้นเหล่านี้สารประกอบอย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับพืชที่ปลูกโหระพาภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง(Taulavuori et al., 2013) นี้แสดงให้เห็นว่าการสะสมชีวสังเคราะห์ของกรดฟีนอลเหล่านี้อาจจะเพิ่มขึ้นทั้งสีฟ้าและสีแดงสเปกตรัมถ่วงน้ำหนักrosmaric ในทำนองเดียวกันกรดในกระเพรา. ผักกาดหอมใบสีแดงเป็นที่รู้จักกันจะอุดมไปด้วย quercetins และกรดchlorogenic (Crozier et al, 2000;. Arabbi et al, 2004;. Becker. et al, 2013) ฟีนอลรวม, กรด chlorogenic และ anthocyanin ความเข้มข้นในต้นกล้าพันธุ์นี้พบว่ามีนัยสำคัญสูงภายใต้ไฟ LED สีฟ้าที่มี (Johkan et al., 2010) อาจมีการเชื่อมโยงโดยตรงระหว่างการสังเคราะห์แสงสีฟ้าของ phenylpropanoids บางอย่างผ่านการสังเคราะห์ Becker et al. (2013) พบว่ามีความสัมพันธ์ที่ใกล้ชิดระหว่าง quercetin-ไกลโคไซด์ที่ความเข้มข้นที่มีความเข้มข้นน้ำตาลลดการแสดงให้เห็นว่าระดับน้ำตาลโดยตรงอาจเพิ่มglucosylation ของบางaglycones flavonoid เพื่อ glucosides ของพวกเขา ดังนั้นความเข้มข้นtions สอง quercetin-glucosides ที่เพิ่มขึ้นในผักกาดหอมใบสีแดงภายใต้แสงสีฟ้าเสริม(ตารางที่ 2). ทั้งสองสายพันธุ์ที่ตรวจสอบการตอบสนองแตกต่างกันในแง่ของการสะสมสารพฤกษเคมีในสอดคล้องกับครั้งแรกสมมติฐานและวรรณกรรมก่อนหน้า(เช่น Julkunen- Tiitto 1989; Crozier, et al, 1997;. Pichersky et al, 2006;... Cheynier et al, 2013) ที่ร่วมกันแสงสีฟ้าเสริมเพิ่มขึ้นออกฤทธิ์ทางชีวภาพหลายสารประกอบในผักกาดหอมใบสีแดงในขณะที่ในใบโหระพาเพียงสองสารแสดงการตอบสนองนี้. นอกจากนี้แม้ว่ากรด cichoric เพิ่มขึ้นภายใต้แสงสีฟ้าในเสริมโหระพาความเข้มข้นก็ยังค่อนข้างสูงภายใต้แสงสีแดงน้ำหนัก สุดท้ายผักกาดหอมและใบโหระพาให้ผลที่แตกต่างกันมีส่วนผสมของสาร ดังนั้นเหล่านี้ผลการวิจัยสนับสนุนสมมติฐานที่ว่าการตอบสนองที่เป็นไปได้speciesspecific. ดังนั้นสมมติฐานที่ว่าแสงสีฟ้ามากกว่าสีแดงเป็นผู้อยู่เบื้องหลังกรดฟีนอลและการสังเคราะห์flavonoid, เป็นเพียงการได้รับการสนับสนุนบางส่วน ความแตกต่างชนิดที่เฉพาะเจาะจงได้ชัดในความสัมพันธ์กับสมมติฐานที่ 3: บาง flavonoids สะสมในช่วงเวลาในผักกาดหอมใบสีแดงในขณะที่ไม่ได้อยู่ในใบโหระพา อย่างไรก็ตามสมมติฐานที่ 4 - ตามที่ขั้นตอนการพัฒนาอาจมีผลต่อการตอบสนอง -. สามารถไม่ได้รับการสนับสนุนหรือปฏิเสธโดยข้อมูลนอกเหนือจากคลื่นแสงที่ตอบสนองชนิดเฉพาะนอกจากนี้ยังอาจมีการเปลี่ยนแปลงโดยด้านอื่นๆ ของแสง ยกตัวอย่างเช่นแสงความเข้มอาจจะเป็นปัจจัยที่อยู่เบื้องหลังการควบคุมการตอบสนองเหล่านี้. โดยเฉพาะอย่างยิ่งแหวนแทน dihydroxy-B flavonoids (เช่น quercetin ไกลโคไซด์) ได้รับพบว่าจะขึ้นควบคุมโดยรังสีสูง(Agati et al., 2013) ในฐานะที่เป็นระดับความอิ่มตัวของสีแสงของใบโหระพาเป็นอย่างมากที่สูงขึ้นเกิน> 1,000 มิลลิโม m? 2 วินาที 1 เมื่อเทียบกับแต่ละระดับ(<300-400 มิลลิโมลม. 2 หรือไม่? 1) ของผักกาดหอม (เช่น Kitaya et al., 1998; ช้าง, et al, 2008) เป็นที่เข้าใจว่าใบโหระพาไม่ได้เป็น. ตอบสนองต่อการรักษาเป็นผักกาดหอมทดลองภายใต้ความเข้มของแสงที่จัด (300 มิลลิโมลม. 2 วินาที 1)? มันควรจะจำได้ว่าผักกาดหอมใบสีแดงเป็นพันธุ์สำหรับการผลิตสูงanthocyanins สีที่ทำให้เกิดสีแดงและการให้ความคุ้มครองต่อไปกับความเข้มของแสงสูง. มีความแตกต่างกันในทางปฏิบัติในการยืดตัวยิงของโหระพาปลูกภายใต้สีแดงน้ำหนักหรือสีฟ้าแสงเหนือ(รูปที่. 4) ผลที่ได้นี้เป็นไปตามการเติบโตของการยับยั้งผลกระทบของแสงสีแดงพบโดย (Ballar? อีปี 2014 และการอ้างอิงนั้น) และสรุปว่าการกำจัดของแสงสีฟ้าที่เพิ่มขึ้นการยืดตัวของหลายชนิด (Sarala et al., 2011) ในต้นกล้าสนสก็อตการยืดตัวต้นกำเนิดที่สังเกตเป็นความคิดที่จะเป็น photomorphogenic การตอบสนองที่ไม่ขึ้นอยู่กับการแลกเปลี่ยนก๊าซหรือการสะสมของทรัพยากรการเจริญเติบโต (Sarala et al., 2009) ปฏิกิริยาเหล่านี้อาจจะอธิบายได้ด้วยflavonoids ผ่านการเปลี่ยนแปลงพี coumaroyl CoA การเผาผลาญ mediating การตอบสนอง photomorphogenic (เช่นบริกส์และ Huala 1999; Folta และสปัลดิง 2001 สวนสาธารณะ et al, 2001).. Flavonoids และ monolignols มีการสังเคราะห์โดยแตกต่างกันสองเส้นทาง: ถ้าการสังเคราะห์สาร quercetin และอื่น ๆ ที่flavonoids จะเพิ่มขึ้นภายใต้แสงไฟสีฟ้าอาจนำไปสู่การลดลงของmonolignols ที่จำเป็นต้องใช้ในการสังเคราะห์ลิกนิน ซึ่งอาจทำให้เกิดการเจริญเติบโตลดลงผ่านส่งผลกระทบต่อกิจกรรมเทส chalcone และการขนส่งออกซิน. ในความเป็นจริง Besseau et al, (2007) แสดงให้เห็นว่าการปราบปรามของลิกนินสังเคราะห์ในArabidopsis thaliana นำไปสู่แสงที่ควบคุมการเปลี่ยนเส้นทางของการเผาผลาญของฟลักซ์เข้าflavonoids และพวกเขาได้ข้อสรุปว่าฟีโนไทป์ลดขนาดของพืชที่เกิดจากการปรากฏตัวของflavonoids นอกจากนี้การยับยั้งของทางเดินแทนนินข้นนำไปสู่การสะสมของสารที่ก่อนหน้านี้ทางเดินphenylpropanoid นี้ (Kosonen et al., 2015) เพิ่มขึ้นโดยเฉพาะอย่างยิ่งที่แข็งแกร่งในflavonol อนุพันธ์เช่น quercetins ซึ่งเป็นที่รู้จักกันในหมู่สารประกอบฟีนอลในการใช้งานมากที่สุดออกซินก่อกวนการขนส่ง นอกจากนี้flavonoids ได้รับการแสดงที่จะตั้งอยู่ในนิวเคลียสที่พวกเขาอาจจะควบคุมการถอดรหัสของยีนที่เกี่ยวข้องกับการเจริญเติบโตและการพัฒนา(เช่น Saslowsky et al., 2005). สำหรับแนวโน้มในอนาคตเป็นที่น่าสนใจในการระบุในรายละเอียดเพิ่มเติมได้ที่หรือช่วงจุดสูงสุดของแสงสีฟ้าเป็น inducible สำหรับการสังเคราะห์ของให้เฉพาะกรดflavonoid หรือฟีนอล อันที่จริงคำถามที่เกี่ยวข้องกับรังสียูวีได้เป็นอย่างดีเพราะทั้งสอง UV-A (เช่นวิลสัน et al., 2001) และรังสียูวี-B (เช่น Gerhardt et al., 2008) การปรับเปลี่ยนองค์ประกอบflavonoid เอนไซม์หลังflavo- สังเคราะห์หวาดระแวงเป็นเทส chalcone (CHS) และมันแสดงให้เห็นว่าUV-A และรังสี inductions แสงสีฟ้าในการแสดงออกของ CHS มีการไกล่เกลี่ยโดยcryptochrome (cry1) (เวด et al., 2001) Phenylala- เก้าสารตั้งต้นในการสังเคราะห์ flavonoid, เป็นสิ่งจำเป็นสำหรับเฉพาะการตอบสนองการพัฒนาไกล่เกลี่ยโดยรังสียูวี(ซัลลิแวน et al., 2014) นอกจากนี้ยังเป็นที่รู้จักกันดีว่าการเติบโตของข้อ จำกัด ของรังสี UV-B และalters ลักษณะทางสัณฐานวิทยาของพืช (เช่น Teramura และซัลลิแวน, 1994) กล่าวคือการเปลี่ยนแปลงนอกจากนี้ยังตอบสนองต่อแสงสีฟ้า(เช่น Sarala et al., 2011). สรุป การศึกษานี้สนับสนุนการทำงานก่อนหน้านี้ตามที่การสังเคราะห์กรดflavonoid และฟีนอลในพืชที่มีสายพันธุ์(พันธุกรรม) ขึ้นอยู่กับ แต่การจัดการของคลื่นแสงสิ่งแวดล้อมอาจช่วยเพิ่มการสังเคราะห์ของบางผลิตภัณฑ์ ของสายพันธุ์ศึกษาผักกาดหอมใบสีแดงได้มากขึ้นเพื่อตอบสนองแสงสีฟ้าเสริม แสงสีฟ้าเสริมเพิ่มการผลิตของสารเหล่านี้โดยเฉพาะอย่างยิ่งในสีแดงใบผักกาดหอมในขณะที่ทั้งแสงสีฟ้าและสีแดงของพวกเขาอาจจะควบคุมการผลิตในใบโหระพา บางส่วนของการตรวจพบสารสะสมอย่างต่อเนื่องเป็นหน้าที่ของเวลาที่ใช้เสริมภายใต้แสงสีฟ้าในผักกาดหอมใบสีแดงแต่ไม่ได้อยู่ในใบโหระพา

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

4 . การอภิปราย
cichoric กรดและกรด rosmaric โดยธรรมชาติเป็นหลัก
สารประกอบฟีนอลในผักกาดหอม ( rajashekar et al . , 2012 ; Becker
et al . , 2013 ) และโหระพา ( ลี และ scagel , 2009 ; taulavuori et al . , 2013 )
) ตามการศึกษา cichoric กรดคือ
ดาษดื่นมาก สารประกอบฟีนอลิก พบในสีแดงใบผักกาดหอม
( ตารางที่ 2 ) และในทำนองเดียวกัน rosmaric กรดในกะเพรา ( ตารางที่ 3 ) ใน
สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา ( taulavuori et al . , 2013 ) ,
เพิ่มสีฟ้าเพิ่มขึ้นเพียงไม่กี่ของสารประกอบฟลาโวนอยด์

ในใบโหระพา นี้อาจบ่งชี้ว่าเป็นสระ ฟีนอล
ไม่ตอบสนองมากที่สุด เพื่อการเปลี่ยนแปลงคุณภาพแสงในพืช
ชนิดนี้ นี้สนับสนุนโดยข้อเท็จจริงที่ว่า เทอร์ปีนอยด์ใน
อาจจะเพิ่มขึ้นอย่างมากภายใต้ความเครียดสิ่งแวดล้อมในโหระพา ( มิสรา
et al . ,2014 ) และแน่นอน , ฟ้าได้กระตุ้นการผลิตน้ำมัน
จำเป็นในโหระพา โดยเฉพาะอย่างยิ่งภายใต้แสงไฟสีฟ้า ( amaki
et al . , 2011 ) อย่างไรก็ตาม สีฟ้า เสริมเพิ่มขึ้น
rosmaric ความเข้มข้นของกรดได้ถึง 4 เท่า เมื่อเทียบกับพืชที่ปลูก
ภายใต้โคมไฟโซเดียมความดันสูง ( taulavuori et al . , 2013 ) ใน
งานในปัจจุบันกรดในกระเพรา rosmaric ค่อนข้างสูงในทุก
การรักษา แต่เทียบลดลงในระหว่างการทดลอง
การขยายระยะเวลาฟ้า .
มันได้ถูกแสดงว่าสีแดงโดยเฉพาะแสงเพิ่มความเข้มข้นของกรดในกระเพรา rosmaric
( ชิงะ et al . , 2009 ) นี้บ่งชี้ว่า กรดใน rosmaric

มีทั้งสีฟ้าและสีที่มีความยาวคลื่นสีแดง อย่างไรก็ตาม การผลิตกรด cichoric คือ
เพิ่มขึ้นอย่างชัดเจน โดยฟ้าเสริมทั้ง 2 ชนิด
( ตารางที่ 2 และ 3 ) เมื่อเปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้าของเรา ( taulavuori
et al . , 2013 ) ที่คล้ายกัน
ค้นพบอาจจะสังเกตได้ในระดับ p-oh ซินนามิกกรด chlorogenic acid อนุพันธ์ และ feruloyl -
กรด tartaric ในใบโหระพา ไม่มีความแตกต่างในความเข้มข้นของสารประกอบเหล่านี้ระหว่างสีฟ้าและการรักษา

ไฟสีแดงในนี้การศึกษา ( ตารางที่ 3 ) ในขณะที่การเพิ่มสารประกอบเหล่านี้
สีฟ้าอย่างมีนัยสำคัญเมื่อเทียบกับโหระพาที่ปลูกภายใต้
โคมไฟโซเดียมความดันสูง ( taulavuori et al . , 2013 ) นี้บ่งชี้ว่าการสะสมของกรดฟีนอล

เหล่านี้อาจเพิ่มขึ้นทั้งสีน้ำเงินและสีแดง - น้ำหนักแสงเหมือนกับ rosmaric

กรดในกะเพรา ใบผักกาดหอมสีแดงเป็นที่รู้จักกันใน quercetins
รวยและกรดคลอโรเจนิก ( crozier et al . , 2000 ; arabbi et al . , 2004 ; Becker
et al . , 2013 ) ฟีนอลทั้งหมด , chlorogenic acid ความเข้มข้น และแอนโธไซยานิน
ต้นกล้าพันธุ์ พบว่า มีค่าสูงกว่าภายใต้ที่มีไฟ LED สีฟ้า
( johkan et al . ,
2010 ) อาจมีอยู่การเชื่อมโยงโดยตรงระหว่างแสงสีฟ้าใน
บาง phenylpropanoids ผ่านการสังเคราะห์แสง เบคเกอร์ et al .
( 1 ) แสดงความสัมพันธ์ระหว่างปริมาณเควอซิติน ใกล้ไกลโคไซด์ที่มีความเข้มข้นของน้ำตาลรีดิวซ์

ที่แสดงอาจโดยตรงเพิ่มกลูโคส glucosylation บาง
ฟลาโวนอย aglycones เพื่อกลูโคไซด์ของตน ตาม ครุ่นคิด -
ยินดีด้วยสองเควอ กลูโคไซด์ที่เพิ่มขึ้นในสีแดงใบผักกาดหอม
ภายใต้เสริมฟ้า
( ตารางที่ 2 )