Thin Layer Chromatography (TLC)orgchem.colorado.eduFlask LogoThin Laye การแปล - Thin Layer Chromatography (TLC)orgchem.colorado.eduFlask LogoThin Laye ไทย วิธีการพูด

Thin Layer Chromatography (TLC)orgc

Thin Layer Chromatography (TLC)
orgchem.colorado.edu
Flask Logo
Thin Layer Chromatography (TLC)

TLC is a simple, quick, and inexpensive procedure that gives the chemist a quick answer as to how many components are in a mixture. TLC is also used to support the identity of a compound in a mixture when the Rf of a compound is compared with the Rf of a known compound (preferably both run on the same TLC plate).

A TLC plate is a sheet of glass, metal, or plastic which is coated with a thin layer of a solid adsorbent (usually silica or alumina). A small amount of the mixture to be analyzed is spotted near the bottom of this plate. The TLC plate is then placed in a shallow pool of a solvent in a developing chamber so that only the very bottom of the plate is in the liquid. This liquid, or the eluent, is the mobile phase, and it slowly rises up the TLC plate by capillary action.

As the solvent moves past the spot that was applied, an equilibrium is established for each component of the mixture between the molecules of that component which are adsorbed on the solid and the molecules which are in solution. In principle, the components will differ in solubility and in the strength of their adsorption to the adsorbent and some components will be carried farther up the plate than others. When the solvent has reached the top of the plate, the plate is removed from the developing chamber, dried, and the separated components of the mixture are visualized. If the compounds are colored, visualization is straightforward. Usually the compounds are not colored, so a UV lamp is used to visualize the plates. (The plate itself contains a fluorescent dye which glows everywhere except where an organic compound is on the plate.)

How To Run a TLC Plate


Step 1: Prepare the developing container

The developing container for TLC can be a specially designed chamber, a jar with a lid, or a beaker with a watch glass on the top (the latter is used in the undergrad labs at CU). Pour solvent into the chamber to a depth of just less than 0.5 cm. To aid in the saturation of the TLC chamber with solvent vapors, you can line part of the inside of the beaker with filter paper. Cover the beaker with a watch glass, swirl it gently, and allow it to stand while you prepare your TLC plate.

Step 2: Prepare the TLC plate

TLC plates used in the organic chem teaching labs are purchased as 5 cm x 20 cm sheets. Each large sheet is cut horizontally into plates which are 5 cm tall by various widths; the more samples you plan to run on a plate, the wider it needs to be. Shown in the photo to the left is a box of TLC plates, a large un-cut TLC sheet, and a small TLC plate which has been cut to a convenient size. Handle the plates carefully so that you do not disturb the coating of adsorbent or get them dirty.
Measure 0.5 cm from the bottom of the plate. Using a pencil, draw a line across the plate at the 0.5 cm mark. This is the origin: the line on which you will spot the plate. Take care not to press so hard with the pencil that you disturb the adsorbent. Under the line, mark lightly the name of the samples you will spot on the plate, or mark numbers for time points. Leave enough space between the samples so that they do not run together; about 4 samples on a 5 cm wide plate is advised.

Step 3: Spot the TLC plate

If the sample is not already in solution, dissolve about 1 mg in 1 mL of a volatile solvent such as hexanes, ethyl acetate, or methylene chloride. As a rule of thumb, a concentration of 1% usually works well for TLC analysis. If the sample is too concentrated, it will run as a smear or streak (see troubleshooting section below); if it is not concentrated enough, you will see nothing on the plate. Sometimes you will need to use trial and error to get well-sized, easy to read spots.
Obtain a a microcapillary. In the organic teaching labs, we use 10µL microcaps - they are easier to handle than the smaller ones used in research labs. Dip the microcap into the solution and then gently touch the end of it onto the proper location on the TLC plate. Don't allow the spot to become too large - if necessary, you can touch it to the plate, lift it off and blow on the spot. If you repeat these steps, the wet area on the plate will stay small.
This example plate has been spotted with three different quantities of the same solution and is ready to develop. If you are unsure of how much sample to spot, you can always spot multiple quantities and see which looks best.

Step 4: Develop the plate

Place the prepared TLC plate in the developing beaker, cover the beaker with the watch glass, and leave it undisturbed on your bench top. The solvent will rise up the TLC plate by capillary action. Make sure the solvent does not cover the spot.
Allow the plate to develop until the solvent is about half a centimeter below the top of the plate. Remove the plate from the beaker and immediately mark the solvent front with a pencil. Allow the plate to dry.

Step 5: Visualize the spots

If there are any colored spots, circle them lightly with a pencil. Most samples are not colored and need to be visualized with a UV lamp. Hold a UV lamp over the plate and circle any spots you see. Beware! UV light is damaging both to your eyes and to your skin! Make sure you are wearing your goggles and do not look directly into the lamp. Protect your skin by wearing gloves.
If the TLC plate runs samples which are too concentrated, the spots will be streaked and/or run together. If this happens, you will have to start over with a more dilute sample to spot and run on a TLC plate.
Here's what overloaded plates look like compared to well-spotted plates. The plate on the left has a large yellow smear; this smear contains the same two compounds which are nicely resolved on the plate next to it.
TLC Solvents Choice

When you need to determine the best solvent or mixture of solvents (a "solvent system") to develop a TLC plate or chromatography column loaded with an unknown mixture, vary the polarity of the solvent in several trial runs: a process of trial and error. Carefully observe and record the results of the chromatography in each solvent system. You will find that as you increase the polarity of the solvent system, all the components of the mixture move faster (and vice versa with lowering the polarity). The ideal solvent system is simply the system that gives the best separation.

TLC elution patterns usually carry over to column chromatography elution patterns. Since TLC is a much faster procedure than column chromatography, TLC is often used to determine the best solvent system for column chromatography. For instance, in determining the solvent system for a flash chromatography procedure, the ideal system is the one that moves the desired component of the mixture to a TLC Rf of 0.25-0.35 and will separate this component from its nearest neighbor by difference in TLC Rf values of at least 0.20. Therefore a mixture is analyzed by TLC to determine the ideal solvent(s) for a flash chromatography procedure.

Beginners often do not know where to start: What solvents should they pull off the shelf to use to elute a TLC plate? Because of toxicity, cost, and flammability concerns, the common solvents are hexanes (or petroleum ethers/ligroin) and ethyl acetate (an ester). Diethyl ether can be used, but it is very flammable and volatile. Alcohols (methanol, ethanol) can be used. Acetic acid (a carboxylic acid) can be used, usually as a small percentage component of the system, since it is corrosive, non-volatile, very polar, and has irritating vapors. Acetone (a ketone) can be used. Methylene chloride or and chloroform (halogenated hydrocarbons) are good solvents, but are toxic and should be avoided whenever possible. If two solvents are equal in performance and toxicity, the more volatile solvent is preferred in chromatography because it will be easier to remove from the desired compound after isolation from a column chromatography procedure.

Ask the lab instructor what solvents are available and advisable. Then, mix a non-polar solvent (hexanes, a mixture of 6-carbon alkanes) with a polar solvent (ethyl acetate or acetone) in varying percent combinations to make solvent systems of greater and lesser polarity. The charts below should help you in your solvent selection. You can also download this pdf chart of elution order.
Interactions Between the Compound and the Adsorbent

The strength with which an organic compound binds to an adsorbent depends on the strength of the following types of interactions: ion-dipole, dipole-dipole, hydrogen bonding, dipole induced dipole, and van der Waals forces. With silica gel, the dominant interactive forces between the adsorbent and the materials to be separated are of the dipole-dipole type. Highly polar molecules interact fairly strongly with the polar SiOH groups at the surface of these adsorbents, and will tend to stick or adsorb onto the fine particles of the adsorbent while weakly polar molecules are held less tightly. Weakly polar molecules generally tend to move through the adsorbent more rapidly than the polar species. Roughly, the compounds follow the elution order given above.

The Rf value

The retention factor, or Rf, is defined as the distance traveled by the compound divided by the distance traveled by the solvent.


For example, if a compound travels 2.1 cm and the solvent front travels 2.8 cm, the Rf is 0.75:


The Rf for a compound is a constant from one experiment to the next only if the chromatography conditions below are also constant:

solvent system
adsorbent
thickness of the adsorbent
amount of material spotted
temperature
Since these factors are difficult to keep constant from experiment to experiment, relative Rf values are generally considered. "Relative Rf" means that the values are reported relative to a standard, or it means that you compare the Rf values of compounds run on the same plate at the same time.

The larger an
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
บางชั้น Chromatography (TLC)orgchem.colorado.eduโลโก้หนาวบางชั้น Chromatography (TLC)TLC เป็นง่าย รวดเร็ว และขั้นตอนราคาไม่แพงที่ช่วยให้นักเคมีคำตอบที่รวดเร็วเป็นจำนวนประกอบอยู่ในส่วนผสม นอกจากนี้ยังใช้ TLC เพื่อสนับสนุนลักษณะเฉพาะของสารประกอบในส่วนผสมเมื่อเปรียบเทียบกับ Rf ของสารประกอบชื่อดัง (เด่นกว่าทั้งรันบนแผ่น TLC เดียว) Rf ของสารประกอบแผ่น TLC เป็นแผ่นแก้ว โลหะ หรือพลาสติกที่ถูกเคลือบ ด้วยชั้นบาง ๆ ของ adsorbent แข็ง (โดยปกติซิลิก้าหรืออลูมินา) จำนวนเล็กน้อยผสมจะวิเคราะห์เป็นด่างใกล้ด้านล่างของแผ่นนี้ แล้วจะวางแผ่น TLC สระตื้นของตัวทำละลายในห้องพัฒนาให้เฉพาะส่วนล่างสุดของแผ่นอยู่ในของเหลว ของเหลวนี้ หรือ eluent ระยะเคลื่อน และมันช้าขึ้นค่าแผ่น TLC โดยแรงยกเป็นตัวทำละลายจะเคลื่อนผ่านจุดที่ใช้ ความสมดุลถูกก่อตั้งขึ้นในแต่ละส่วนของส่วนผสมระหว่างโมเลกุลที่ประกอบที่ adsorbed บนของแข็งและโมเลกุลที่มีอยู่ในโซลูชัน หลัก ส่วนประกอบจะแตกต่าง ในการละลาย และความแข็งแรงของการดูดซับการ adsorbent และบางคอมโพเนนต์จะทำอยู่ห่างค่าจานอื่น ๆ เมื่อตัวทำละลายมีถึงด้านบนของจาน จานจะถูกเอาออกจากการพัฒนาหอการค้า แห้ง และแยกส่วนประกอบของส่วนผสมมี visualized ถ้าสารมีสี แสดงภาพประกอบเพลงจะตรงไปตรงมา ปกติสารประกอบจะไม่สี เพื่อใช้หลอด UV แผ่นเห็นภาพ (จานตัวเองประกอบด้วยสีเรืองแสงที่ glows ทุกยกเว้นสารประกอบอินทรีย์อยู่ในจาน)วิธีการรันแผ่น TLC ขั้นตอนที่ 1: จัดเตรียมภาชนะพัฒนาคอนเทนเนอร์ที่พัฒนาสำหรับ TLC ได้ห้องที่ออกแบบมาเป็นพิเศษ ขวดพร้อมฝาปิด หรือบีกเกอร์ ด้วยกระจกนาฬิกาอยู่ด้านบน (หลังใช้ในห้องปฏิบัติการปริญญาตรีที่ CU) เทตัวทำละลายลงในหอได้ลึกเพียงน้อยกว่า 0.5 เซนติเมตร เพื่อช่วยในความเข้มของหอ TLC ด้วยไอระเหยตัวทำละลาย คุณสามารถบรรทัดหนึ่งภายในบีกเกอร์ด้วยกระดาษกรอง ปกบีกเกอร์ ด้วยกระจกนาฬิกา swirl เบา ๆ และอนุญาตให้ยืนในขณะที่คุณเตรียมของแผ่น TLC ขั้นตอนที่ 2: เตรียมแผ่น TLCซื้อแผ่น TLC ที่ใช้ในห้องปฏิบัติการสอนเคมีอินทรีย์เป็นแผ่น 5 ซม. x 20 ซม. กระดาษขนาดใหญ่ถูกตัดตามแนวนอนเป็นแผ่นซึ่งมีความสูง 5 ซ.ม. โดยความกว้างต่าง ๆ ตัวอย่างเพิ่มเติมที่คุณวางแผนที่จะรันบนจาน ที่กว้างขึ้นจึงจำเป็นต้อง แสดงในรูปด้านซ้ายเป็นกล่องของแผ่น TLC แผ่น TLC ไม่ตัดขนาดใหญ่ และแผ่น TLC ขนาดเล็กที่มีการตัดให้มีขนาดที่สะดวก จัดการแผ่นอย่างระมัดระวังเพื่อให้คุณไม่รบกวนเคลือบของ adsorbent หรือดูสกปรก วัด 0.5 ซม.จากด้านล่างของจาน ใช้ดินสอ วาดเส้นในแผ่นที่หมาย 0.5 cm นี่คือจุดเริ่มต้น: เส้นที่คุณจะจุดจาน ดูแลไม่ให้กดยากดังนั้น ด้วยดินสอที่คุณรบกวน adsorbent ที่ ต่ำ ทำเครื่องเบาชื่ออย่างคุณจะจุดบนแผ่น หรือหมายเลขสำหรับเวลาจุด ปล่อยให้ช่องว่างระหว่างตัวอย่างเพื่อให้พวกเขาไม่ทำกัน ขอแนะนำตัวอย่างประมาณ 4 บนจานกว้าง 5 ซม. ขั้นตอนที่ 3: จุดแผ่น TLCถ้าตัวอย่างไม่ได้ในการแก้ปัญหา ละลายประมาณ 1 มิลลิกรัมใน 1 มิลลิลิตรของตัวทำละลายระเหย เช่น hexanes เอทิล acetate เมทิลีนไดคลอไรด์ ตามกฎของหัวแม่มือ ความเข้มข้น 1% จะทำดีสำหรับการวิเคราะห์ TLC ถ้าตัวอย่างเข้มข้นเกินไป มันจะรันเป็นตัวเลอะเปื้อน หรือริ้ว (เห็นปัญหาส่วนด้านล่าง); ถ้ามันไม่ได้เข้มข้นเพียงพอ คุณจะเห็นอะไรในจาน บางครั้งคุณจะต้องใช้ลองผิดลองถูกไปอ่านจุดง่าย ขนาดห้องพัก ได้รับการ microcapillary เป็นการ ในแบบอินทรีย์สอนแล็บ เราใช้ 10µL microcaps - พวกเขาจะง่ายต่อการจัดการกว่าคนเล็กที่ใช้ในห้องปฏิบัติการวิจัย จุ่มใน microcap เป็นการแก้ปัญหา และค่อย ๆ สัมผัสจุดสิ้นสุดของมันลงในตำแหน่งเหมาะสมบนแผ่น TLC ไม่อนุญาตให้จุดเป็นเกิน - ถ้าจำเป็น คุณสามารถสัมผัสกับจาน ยกออก และระเบิดในจุดนั้น ถ้าคุณทำซ้ำขั้นตอนเหล่านี้ พื้นที่เปียกในจานจะอยู่เล็ก อย่างจานนี้มีไอ้ด่าง มีปริมาณแตกต่างกันสามของโซลูชันเดียวกัน และพร้อมที่จะพัฒนา ถ้าคุณไม่แน่ใจจำนวนตัวอย่างให้มองเห็น คุณสามารถปริมาณหลายจุด และดูที่ดูดีที่สุด ขั้นตอนที่ 4: พัฒนาแผ่นวางแผ่น TLC เตรียมไว้ในบีกเกอร์พัฒนา ครอบคลุมบีกเกอร์ ด้วยกระจกนาฬิกา และปล่อยให้มันอย่างมากบนม้านั่งของคุณ ตัวทำละลายจะขึ้นค่าแผ่น TLC ด้วยแรงยกตัว ตรวจสอบให้แน่ใจว่า ตัวทำละลายไม่ครอบคลุมจุด ให้จานพัฒนาจนตัวทำละลายประมาณครึ่งเซนติเมตรด้านล่างด้านบนของจาน เอาแผ่นออกจากบีกเกอร์ และทำเครื่องหมายหน้าตัวทำละลายทันที ด้วยดินสอ ทำให้แผ่นแห้ง ขั้นตอนที่ 5: เห็นภาพจุดถ้ามีจุดมีสี วงกลมนั้นเบา ๆ ด้วยดินสอ ตัวอย่างส่วนใหญ่มีสี และต้องมี visualized มีหลอด UV หลอด UV เหนี่ยวแผ่น และวงกลมจุดใด ๆ ที่คุณเห็น ระวัง แสง UV ทำลายทั้งตา และผิวหนังของคุณ ตรวจสอบให้แน่ใจว่า คุณจะสวมแว่นตาของคุณ และไม่มีลักษณะเป็นโคมไฟโดยตรง ปกป้องผิว โดยสวมถุงมือ ถ้าแผ่น TLC ตัวอย่างที่เข้มข้นเกินไป จุดจะมีลาย หรือเรียกใช้ร่วมกัน ถ้าเกิดเหตุการณ์นี้ คุณจะต้องเริ่มต้น ด้วยตัวอย่าง dilute มากขึ้นจุด และรันบนแผ่น TLC นี่คือ อะไรโอเวอร์โหลดแผ่นสวยงามเมื่อเทียบกับแผ่นด่างดี จานบนซ้ายมีตัวขนาดใหญ่สีเหลืองการเลอะเปื้อน เลอะเปื้อนนี้ประกอบด้วยสารสองเดียวที่ดีได้รับการแก้ไขบนแผ่นอยู่ด้านข้างเลือก TLC หรือสารทำละลายเมื่อต้องการตัวทำละลายหรือผสมหรือสารทำละลาย ("ตัวทำละลายระบบ") พัฒนา TLC จานหรือ chromatography คอลัมน์โหลด ด้วยส่วนผสมที่รู้จักดีที่สุด ขั้วของตัวทำละลายในการทำงานทดลองต่าง ๆ ที่แตกต่างกัน: กระบวนการของการลองผิดลองถูก อย่างสังเกต และบันทึกผล chromatography ที่ในแต่ละระบบตัวทำละลาย คุณจะพบว่าคุณเพิ่มขั้วของตัวทำละลาย ส่วนประกอบทั้งหมดของส่วนผสมไปได้เร็วขึ้น (และในทางกลับกัน กับขั้วลดลง) ระบบตัวทำละลายเหมาะเป็นเพียงระบบที่ช่วยให้การแยกที่ดีที่สุดรูปแบบ TLC elution มักจะดำเนินผ่านไปรูปแบบคอลัมน์ chromatography elution TLC เป็น เป็นมากตอนเร็วกว่าคอลัมน์ chromatography, TLC จะมักใช้เพื่อกำหนดคอลัมน์ chromatography ระบบตัวทำละลายดีที่สุด เช่น ในการกำหนดระบบตัวทำละลายสำหรับขั้นตอนการแฟลช chromatography ระบบสำรองห้องพักย้ายส่วนประกอบของส่วนผสมต้องการ Rf TLC ของ 0.25-0.35 และจะแยกส่วนประกอบนี้จากเพื่อนบ้านใกล้ที่สุด โดยความแตกต่างในค่า TLC Rf ของ 0.20 น้อย ดังนั้น ส่วนผสมจะวิเคราะห์ โดย TLC กำหนด solvent(s) เหมาะสำหรับขั้นตอนการแฟลช chromatographyผู้เริ่มต้นมักจะทราบว่าจะเริ่มต้น: สิ่งหรือสารทำละลายควรจะดึงปิดชั้นใช้ elute แผ่น TLC ความเป็นพิษ ต้นทุน และความกังวล flammability หรือสารทำละลายทั่วไปคือ hexanes (หรือปิโตรเลียม ethers/ligroin) และเอทิล acetate (ตัวเอส) สามารถใช้ diethyl อีเทอร์ แต่ก็ระเหย และไวไฟมาก สามารถใช้ alcohols (เมทานอล เอทานอล) กรดอะซิติก (กรด carboxylic) สามารถใช้ มักจะเป็นส่วนประกอบเล็กน้อยของระบบ เนื่องจากมันถูกกัดกร่อน ไม่ระเหย โพลาร์มาก และมีเคืองไอระเหย สามารถใช้อะซีโตน (เป็นจุด) เมทิลีนไดคลอไรด์ หรือคลอโรฟอร์ม (ฮาโลเจนไฮโดรคาร์บอน) ได้หรือสารทำละลายที่ดี แต่มีพิษ และควรหลีกเลี่ยงหากเป็นไปได้ ถ้าหรือสารทำละลายสองเท่าในประสิทธิภาพและความเป็นพิษ ตัวทำละลายระเหยมากขึ้นเป็นที่ต้องใน chromatography เพราะจะง่ายต่อการเอาออกจากสารประกอบต้องหลังจากแยกจากกระบวน chromatography คอลัมน์ถามผู้สอนปฏิบัติอะไรหรือสารทำละลายที่มีอยู่ และแนะนำ แล้ว ผสมไม่ใช่ขั้วโลกตัวทำละลาย (hexanes ส่วนผสมของคาร์บอน 6 alkanes) กับตัวทำละลายมีขั้ว (เอทิล acetate หรืออะซิโตน) ในชุดเปอร์เซ็นต์จะทำให้ขั้วมากกว่า และน้อยกว่าระบบตัวทำละลายที่แตกต่างกัน แผนภูมิด้านล่างนี้จะช่วยคุณในการเลือกตัวทำละลาย นอกจากนี้คุณยังสามารถดาวน์โหลด pdf ผังนี้สั่ง elution ระหว่างการผสมและ Adsorbentความแข็งแรงซึ่งเป็นสารประกอบอินทรีย์ binds adsorbent การขึ้นอยู่กับความแรงของการโต้ตอบชนิดต่อไปนี้: ไอออน dipole, dipole dipole ไฮโดรเจนยึด dipole dipole ที่เกิด และ van der Waals กองกำลัง มีซิลิก้าเจล กองโต้ตอบหลักระหว่าง adsorbent การและวัสดุจะแยกออกเป็นชนิด dipole dipole โมเลกุลที่มีขั้วสูงโต้ตอบกลุ่ม SiOH ขั้วโลกที่ผิวของ adsorbents เหล่านี้เป็นธรรมอย่างยิ่ง และมักจะ ติด หรือชื้นบนละอองของ adsorbent ในขณะที่โมเลกุลสูญโพลาร์มีขึ้นน้อยอย่างใกล้ชิด ขั้วโมเลกุลสูญโดยทั่วไปมักจะ เลื่อน adsorbent เร็วกว่าสายพันธุ์ขั้วโลก ประมาณ สารประกอบตามลำดับ elution ให้ไว้ข้างต้นค่า Rfตัวเก็บข้อมูล หรือ Rf ถูกกำหนดเป็นระยะทางที่เดินทาง โดยหารระยะทางที่เดินทาง โดยตัวทำละลายบริเวณตัวอย่าง ถ้าสารประกอบเดินทาง 2.1 ซม. และด้านหน้าเป็นตัวทำละลายเดินทาง 2.8 ซม. Rf เป็น 0.75:Rf สำหรับสารประกอบมีค่าคงที่จากการทดลองหนึ่งไปเมื่อเงื่อนไข chromatography ด้านล่างก็คง:ระบบตัวทำละลายadsorbentความหนาของตัว adsorbentจำนวนวัสดุด่างอุณหภูมิเนื่องจากปัจจัยเหล่านี้ยากให้คงที่จากการทดลองการทดลอง ค่า Rf ญาติโดยทั่วไปถือว่า "Rf ญาติ" หมายความ ว่า มีรายงานค่าสัมพันธ์กับมาตรฐาน หรือหมายความ ว่า คุณเปรียบเทียบค่า Rf ของสารรันบนแผ่นเดียวกันในเวลาเดียวกันใหญ่มี
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
Thin layer chromatography ( TLC )
orgchem โคโลราโด . edu

ชั้นบางขวดโลโก้ chromatography ( TLC )

TLC เป็นง่ายรวดเร็วและราคาไม่แพงวิธีที่ช่วยให้นักเคมีตอบที่รวดเร็วเป็นวิธีที่องค์ประกอบหลายอย่างอยู่ในส่วนผสมทีแอลซียังใช้เพื่อสนับสนุนเอกลักษณ์ของสารประกอบในสารละลายเมื่อเทียบกับ RF ( RF รู้จักสารประกอบ ( โดยเฉพาะทั้งวิ่งบน TLC plate เดียวกัน )

TLC plate เป็นแผ่นแก้ว โลหะ หรือพลาสติกที่เคลือบด้วยชั้นบาง ๆของ ตัวดูดซับของแข็ง ( มักจะซิลิกา หรือ อะ )จำนวนเล็ก ๆของส่วนผสม มาวิเคราะห์ จะพบใกล้กับด้านล่างของจานนี้ โดย TLC plate ที่วางอยู่แล้วในสระน้ำตื้นของตัวทำละลายในการพัฒนาห้องเพื่อให้มีเพียงมากด้านล่างของแผ่นที่อยู่ในของเหลว ของเหลวหรือสารละลายที่เป็นเฟสเคลื่อนที่ และมันค่อยๆลุกขึ้นจาก TLC plate โดยแรงยกตัว

เป็นตัวทำละลายเคลื่อนที่ผ่านจุดที่ใช้สมดุลถูกก่อตั้งขึ้นสำหรับแต่ละองค์ประกอบของส่วนผสมระหว่างโมเลกุลของส่วนประกอบที่เป็นเกาะที่เป็นของแข็งและโมเลกุลที่อยู่ในสารละลาย โดยหลักการแล้ว ส่วนประกอบจะแตกต่างกันในการละลายและการดูดซับในความแข็งแรงของพวกเขาเพื่อดูดซับ และบางชิ้นส่วนจะแบกไกลขึ้นจาน กว่าคนอื่น ๆเมื่อตัวทำละลายได้ถึงด้านบนของแผ่นจานจะถูกลบออกจากการพัฒนาห้องอบแห้ง และแยกองค์ประกอบของส่วนผสมที่เป็นเมล็ดพืช ถ้าสารสี , การแสดงคือตรงไปตรงมา โดยปกติสารไม่มีสี ดังนั้น หลอด UV ใช้เห็นภาพแผ่น( จานตัวเองประกอบด้วยการเรืองแสงสีเรืองแสง ซึ่งทุกที่ ยกเว้นที่เป็นสารประกอบอินทรีย์บนจาน )

วิธีการรัน TLC plate


ขั้นตอนที่ 1 : เตรียมพัฒนาภาชนะ

การพัฒนาภาชนะ TLC สามารถออกแบบมาเป็นพิเศษในห้อง ขวดโหลที่มีฝาปิดหรือบีกเกอร์ กับ แก้วดูด้านบน ( หลังใช้ในการตรวจการ Labs ที่จุฬาฯ )เทตัวทำละลายเข้าไปในห้องเพื่อความลึกจะน้อยกว่า 0.5 เซนติเมตร เพื่อช่วยเหลือในความเข้มของ TLC หอด้วยไอตัวทำละลาย , คุณสามารถบรรทัดส่วนภายในของบีกเกอร์มีกระดาษกรอง ปิดบีกเกอร์กับนาฬิกาแก้วหมุนมันเบาๆ และปล่อยให้มันยืนในขณะที่คุณเตรียมความพร้อมของคุณ TLC plate .

ขั้นตอนที่ 2 : เตรียม TLC plate

การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2025 I Love Translation. All reserved.

E-mail: