2. Materials and methods2.1. Materi

2. Materials and methods
2.1. Materials
Commercial noodle flour was obtained locally from the Malayan
Flour Mills Company, Malaysia. Green banana (Musa acuminata 
balbisiana Colla cv. Awak) was obtained from the local market in
Penang. Oat b-glucan (NutrimOTM) was purchased from Future Ceuticals,
Midwest.
2.2. Green banana flour (Musa acuminata balbisiana Colla cv. Awak)
preparation
The sliced bananas were dried at 60 C for 12 h, using a hot-air
dryer (AFOS). The dried bananas were then ground and sieved into
flour using a mill.
2.3. Noodle preparation
The flour mixture was blended in a mixer (Heavy Duty Kitchen
Aid) with salt solution until it achieved the final optimum water
absorption. The dough was then allowed to rest at room temperature
(23 C) for a further 15 min and then sheeted on a noodle
machine (Ampia Model: 150, Marcato, Italy). The noodles were
pre-cooked in boiling water for 1 min and rinsed with cool water.
2.4. Proximate analysis
Moisture, crude protein, ash, crude fat and crude fibre contents
of noodles were determined according to a method of the AACC
(2000). Protein content (%N  5.7) was determined by the Kjeldahl
method (AACC, Method 46-13). Moisture was determined by ovendrying
for 4 h at 100–105 C (AACC, Method 44-15A). Ash was
measured by dry combustion (AACC, Method 08-01). Free lipids
were measured by petroleum ether extraction, followed by evaporation
to constant weight (AACC, Method 30-25). Dietary fibre was
determined according to the procedure of AACC, Method 32-07. All
sample measurements were done in triplicate.
2.5. Determination of essential mineral content
Essential mineral contents [phosphorus (P), potassium (K),
magnesium (Mg), calcium (Ca)] in samples were determined by
using atomic absorption spectroscopy, AAS (Perkin Elmer
4100ZL). Absorbancies were recorded and a standard curve was
plotted. Results were expressed as mg/100 g sample.
2.6. Total dietary fibre
Dietary fibre content was determined by an enzymatic–gravimetric
method according the 16th Edition of the Official Methods
of Analysis of the AOAC (1997), Method 985.29. Samples (dried
and fat-free) were gelatinized with heat stable a-amylase and then
enzymatically digested with protease and amyloglucosidase to remove
the protein and starch present in the sample.
2.7. Resistant starch (RS)
Resistant starch content was determined according to Gõni,
Garcia-Diz, Manas, and Saura-Calixto (1996). This method involved
removal of protein with pepsin (40 C, 1 h, pH 1.5), incubation with
a-amylase (37 C, 16 h) to hydrolyse digestible starch, treatment of
the residues with 2 M KOH to solubilise RS and finally incubation
with amyloglucosidase (60 C, 45 min, pH 4.75) to hydrolyse RS.
Free glucose was determined using the glucose oxidase assay
GOD-PAP. RS was calculated as free glucose  0.9 where 0.9 = correction
factor (glucose–polysaccharide).
2.8. Determination of total starch
Total starch content was determined according to the method
described by Goni, Garcia-Alonso, and Saura-Calixto (1997). (Factor
conversion from glucose to starch was 0.9.)
2.9. In vitro starch digestibility
Carbohydrate digestibility of noodle was determined according
to Wen, Lorenz, Martin, Stewart, and Sampson (1996). Salivary aamylase
(100 unit) was used for digestion. Absorbance was measured
at 490 nm by using a UV-spectrophotometer. A calibration
curve (0–200 lg) of maltose versus absorbance was made.
Total carbohydrates digestion products
¼
X  100 ml
2 ml  830 ml
2 ml 1 mg=1000 lg
W
!
1
H
where X = carbohydrates in 2 ml diluted dialysate by reference to
the standard curve (lg), 100/2 = 2 ml from 100 ml diluted dialysate,
830/2 = 2 ml from 830 ml dialysate, W = weight of dry sample (g)
and H = reaction time (h).
2.10. Estimated glycaemic index
In vitro kinetics of starch digestion were determined according
to Goni et al. (1997). Glucose concentration was determined using
a glucose oxidase–peroxidase kit (Sigma). The rate of starch digestion
was expressed as a percentage of the total starch hydrolysed
at different times (30, 60, 90, 120, 150 and 180 min).
The glycaemic indices of the samples were estimated according
to the equation proposed by Goni et al. (1997). The area under the
hydrolysis curve (AUC) was calculated using the equation:
AUC = C1(tf  t0)  (C1/k)[1  exp(tf  t0)], where C corresponds
to the percentage of starch hydrolysed at time t, C1 is the equilibrium
percentage of starch hydrolysed after 180 min, k is the kinetic
constant and t is the time (min), tf is the final time (180 min) and t0
is the initial time (0 min). The hydrolysis index (HI) was obtained
by dividing the area under the hydrolysis curve of each sample
by the corresponding area of a reference sample (fresh white
bread). The estimated glycaemic index (GI) was calculated using
the equation: GI = 39.71 + (0.549  HI).
2.11. Antioxidant properties (AP)
2.11.1. Preparation of noodle extracts for antioxidant studies
A pre-boiled noodle sample (100 g) was homogenised and
mixed with 200 ml of methanol. The mixtures were stirred at room
temperature for 60 min and filtrated through a Whatman No. 1 filter
paper, followed by centrifugation at 3000g for 15 min. The
supernatant was concentrated in a vacuum rotary evaporator at
50 C. The concentrated solutions were freeze-dried and stored at
20 C for further use.
2.11.2. Determination of antioxidant activity
The antioxidant activity of noodle extracts was determined
according to the ferric thiocyanate method (Kikuzaki & Nakatani,
1993). The freeze-dried extracts (4 mg) were placed in a universal
bottle containing 4 ml of ethanol (99.5%), 4.1 ml of 2.5% linoleic
acid in 99.5% ethanol, 8 ml of 0.02 M phosphate buffer (pH 7)
and 3.9 ml of distilled water. The mixture solution in the universal
bottle was incubated at 40 C. Every 24 h, 0.1 ml of sample was put
into a test tube containing 9.7 ml of 75% ethanol and 0.1 ml of 30

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 วัสดุ
แป้งก๋วยเตี๋ยวพาณิชย์ได้รับเครื่องจากที่เฮอริเทจ
บริษัทโรงงานผลิตแป้ง มาเลเซีย สีเขียวกล้วย (กล้วย
balbisiana Colla พันธุ์ Awak) ได้รับจากตลาดท้องถิ่นใน
ปีนัง ข้าวโอ๊ตบี-glucan (NutrimOTM) ถูกซื้อจากอนาคต Ceuticals,
เชลซี
2.2 สีเขียวแป้งกล้วย (Musa acuminata balbisiana Colla พันธุ์ Awak)
เตรียม
กล้วยหั่นบาง ๆ ที่แห้งที่ 60 C 12 h ใช้เป็นน้ำสำหรับ
เครื่องเป่า (AFOS) กล้วยอบแห้งได้ แล้วดิน และ sieved เป็น
แป้งใช้สีมีอยู่
2.3 ก๋วยเตี๋ยวเตรียม
ส่วนผสมแป้งที่ผสมในการผสม (หนักภาษีครัว
ช่วย) ด้วยโซลูชั่นเกลือจนกว่าจะได้รับน้ำเหมาะสมสุดท้าย
ดูดซึม แป้งได้รับอนุญาตให้วางที่อุณหภูมิห้องแล้ว
(23 C) สำหรับต่อ 15 นาทีแล้ว sheeted ในก๋วยเตี๋ยวเป็น
เครื่อง (รุ่น Ampia: 150, Marcato อิตาลี) ก๋วยเตี๋ยวถูก
ก่อนต้มในเดือดน้ำ 1 นาที และ rinsed ด้วยน้ำเย็น.
2.4 วิเคราะห์เคียง
ความชื้น โปรตีนหยาบ เถ้า เนื้อหาไฟเบอร์ไขมัน และน้ำมันดิบ
ก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนดตามวิธีการ AACC
(2000) โปรตีน (%n 57) ถูกกำหนด โดยการ Kjeldahl
วิธี (AACC วิธี 46-13) ความชื้นถูกกำหนด โดย ovendrying
h 4 ที่ 100 – 105 C (AACC วิธี 44-15A) สำหรับการ เถ้าถูก
วัด โดยเผาไหม้แห้ง (AACC วิธี 08 - 01) ฟรีโครงการ
ถูกวัด ด้วยปิโตรเลียมอีเทอร์สกัด ตาม ด้วยการระเหย
น้ำหนักคง (AACC วิธี 30-25) เส้นใยอาหารถูก
กำหนดตามวิธีของ AACC วิธี 32-07 ทั้งหมด
ทำอย่างวัดใน triplicate
2.5 กำหนดเนื้อหาสำคัญแร่
เนื้อหาสำคัญแร่ [ฟอสฟอรัส (P) โพแทสเซียม (K),
แมกนีเซียม (Mg) แคลเซียม (Ca)] ในตัวอย่างได้ถูกกำหนดโดย
ใช้ดูดกลืนโดยอะตอมก AAS (เพอร์เอลเมอ
4100ZL) Absorbancies บันทึก และเส้นโค้งมาตรฐานถูก
ลงจุด ผลลัพธ์ที่แสดงเป็นตัวอย่าง mg/100 g
2.6 รวมใยอาหาร
เนื้อหาใยอาหารถูกกำหนด โดยที่เอนไซม์ในระบบ – ต้อง
วิธีตามวิธีการทางรุ่น 16
วิเคราะห์ของ AOAC (1997), 985.29 วิธีการ ตัวอย่าง (แห้ง
และ ปราศจากไขมัน) gelatinized ได้ ด้วยความร้อนคงที่-amylase แล้ว
เจ่า enzymatically รติเอสและ amyloglucosidase การเอา
โปรตีนและแป้งแสดงในตัวอย่าง
2.7 แป้งทน (RS)
แป้งทนเนื้อหาถูกกำหนดตาม Gõni,
Diz การ์เซีย มานาสเท และ Saura-Calixto (1996) วิธีการนี้เกี่ยวข้องกับ
เอาโปรตีนกับเพพซิน (40 C, 1 h ค่า pH 1.5), คณะทันตแพทยศาสตร์ด้วย
(37 C, 16 h) การ hydrolyse digestible แป้งมี amylase รักษา
ตก 2 เมตรเกาะ solubilise RS และสุดท้ายคณะทันตแพทยศาสตร์
กับ amyloglucosidase (60 C, 45 นาที ค่า pH 475) การ hydrolyse RS.
กำหนดกลูโคสฟรีใช้ทดสอบ oxidase กลูโคส
บพระเจ้า RS คำนวณเป็นกลูโคสฟรี 0.9 0.9 =แก้ไข
ปัจจัย (กลูโคส – polysaccharide) .
2.8 กำหนดรวมแป้ง
แป้งรวมเนื้อหาได้กำหนดตามวิธี
โดย Goni การ์เซีย-Alonso และ Saura-Calixto (1997) (คูณ
0.9 ถูกแปลงจากกลูโคสแป้งด้วย)
2.9 Digestibility ในแป้ง
digestibility คาร์โบไฮเดรตของก๋วยเตี๋ยวได้กำหนดตาม
ไปเหวิน ชายลอเรนซ์ มาร์ติน สจ๊วต และ Sampson (1996) Salivary aamylase
(100 unit) ถูกใช้สำหรับการย่อยอาหาร มีวัด absorbance
ที่ 490 nm โดยมี UV-เครื่องทดสอบกรดด่าง เทียบ
โค้ง (0 – 200 lg) ของ maltose และ absorbance ทำ
รวมผลิตภัณฑ์ย่อยอาหารคาร์โบไฮเดรต
¼
X 100 มล
2 ml 830 ml
lg 1 mg = 1000 2 ml
W
!
1
H
ที่ X =คาร์โบไฮเดรตใน 2 ml ผสม dialysate โดยอ้างอิงถึง
มาตรฐานโค้ง (lg), 100/2 = 2 ml จาก 100 ml ผสม dialysate,
830/2 = 2 ml จาก 830 ml dialysate, W =น้ำหนักของตัวอย่างแห้ง (กรัม)
และ H =เวลาปฏิกิริยา (h) .
2.10 ดัชนีประเมิน glycaemic
จลนพลศาสตร์ในทำหน้าที่ย่อยแป้งซึ่งได้กำหนดตาม
การ Goni et al. (1997) กำหนดความเข้มข้นของน้ำตาลกลูโคสโดยใช้
ชุด oxidase – peroxidase กลูโคส (ซิกมา) อัตราการย่อยอาหารแป้ง
ที่แสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของแป้งรวม hydrolysed
เวลาแตกต่างกัน (30, 60, 90, 120, 150 และ 180 นาที) .
ดัชนี glycaemic ตัวอย่างจะถูกประเมินตาม
ให้สมการที่เสนอโดย Goni et al. (1997) พื้นที่ภายใต้การ
มีคำนวณโดยใช้สมการเส้นโค้งไฮโตรไลซ์ (AUC):
AUC = C1(tf t0) (C1/k) [1 exp(tf t0)], ที่ C ตรง
เปอร์เซ็นต์ของแป้ง hydrolysed ที่เวลา t, C1 เป็นสมดุล
เปอร์เซ็นต์แป้ง hydrolysed หลัง 180 นาที k เป็นตัวเดิม ๆ
ค่าคงและ t คือ เวลา (นาที) tf เป็นครั้งสุดท้าย (180 นาที) และ t0
เป็นเวลาเริ่มต้น (0 นาที) ดัชนีไฮโตรไลซ์ (HI) ได้รับ
โดยแบ่งพื้นที่ภายใต้โค้งของแต่ละอย่างไฮโตรไลซ์
ตามพื้นที่ที่สอดคล้องกันของตัวอย่างอ้างอิง (ขาวสด
ขนมปัง) มีคำนวณโดยใช้ดัชนีประเมิน glycaemic (GI)
สมการ: GI = 39.71 (0.549 HI) .
2.11 คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ (AP)
2.11.1 เตรียมก๋วยเตี๋ยวแยกศึกษาสารต้านอนุมูลอิสระ
ตัวอย่างก๋วยเตี๋ยวก่อนต้ม (100 กรัม) คือ homogenised และ
ผสมกับ 200 ml ของเมทานอล มีกวนน้ำยาผสมที่ห้อง
อุณหภูมิสำหรับ 60 นาที และ filtrated ผ่านตัวกรอง Whatman No. 1
กระดาษ ตาม centrifugation ที่ 3000g สำหรับ 15 นาที ใน
supernatant เข้มข้นใน evaporator โรตารี่เป็นเครื่องดูดฝุ่นที่
ค. 50 อบแห้ง และเก็บไว้ในโซลูชั่นเข้มข้น
C 20 สำหรับใช้เพิ่มเติม
2.11.2 การกำหนดกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระ
กำหนดกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากก๋วยเตี๋ยว
ตามวิธี thiocyanate เฟอร์ (Kikuzaki & Nakatani,
1993) สารสกัดจากกรอบ (4 มิลลิกรัม) ถูกวางในสากล
ขวดประกอบด้วย 4 ml ของเอทานอล (99.5%), 4.1 ml ของ linoleic 2.5%
กรดในเอทานอล 99.5%, 8 มล.ของ 0.02 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7)
และ 3.9 ml ของน้ำกลั่น การแก้ไขส่วนผสมในสากล
ขวดถูก incubated ที่ 40 เซลเซียส ย้ายทุก 24 h, 0.1 ml ของอย่าง
ลงในหลอดทดสอบประกอบด้วย 9.7 ml 75% เอทานอล และ 0.1 มล. 30

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2 วัสดุและวิธีการ
2.1 วัสดุ
แป้งก๋วยเตี๋ยวเชิงพาณิชย์ที่ได้รับในประเทศจากภาษามลายู
Flour Mills บริษัท มาเลเซีย สีเขียวกล้วย (Musa acuminata?
balbisiana Colla Cv. Awak) ที่ได้รับจากตลาดในประเทศใน
ปีนัง ข้าวโอ๊ต b-glucan (NutrimOTM) ซื้อมาจากฟิวเจอร์ซูติคัลส์,
มิดเวสต์
2.2 แป้งกล้วยสีเขียว (มูซา acuminata? balbisiana Colla Cv. Awak)
เตรียม
กล้วยหั่นบาง ๆ แห้งที่ 60 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมงโดยใช้ลมร้อน
เป่า (Afos) กล้วยแห้งได้แล้วพื้นดินและร่อนลงใน
แป้งโดยใช้โรงสี
2.3 เตรียมก๋วยเตี๋ยว
ส่วนผสมแป้งที่ผสมในเครื่องผสม (Heavy Duty ครัว
ช่วยเหลือ) กับสารละลายเกลือจนกว่าจะประสบความสำเร็จในน้ำที่เหมาะสมในขั้นสุดท้าย
การดูดซึม แป้งที่ได้รับอนุญาตแล้วในส่วนที่เหลือที่อุณหภูมิห้อง
(? 23 C) ไปอีก 15 นาทีและแผ่บนเส้นก๋วยเตี๋ยวแล้ว
เครื่อง (Ampia รุ่น 150, คาโต้, อิตาลี) ก๋วยเตี๋ยวถูก
ก่อนปรุงสุกในน้ำเดือดเป็นเวลา 1 นาทีและล้างออกด้วยน้ำเย็น
2.4 ใกล้เคียงการวิเคราะห์
ความชื้นโปรตีนเถ้าไขมันน้ำมันดิบและเยื่อใยเนื้อหา
ของก๋วยเตี๋ยวได้รับการพิจารณาตามวิธีการของ AACC
(2000) ปริมาณโปรตีน (% N? 5.7) ถูกกำหนดโดย Kjeldahl
วิธี (AACC วิธี 46-13) ความชื้นถูกกำหนดโดย ovendrying
4 ชั่วโมงที่ 100-105 องศาเซลเซียส (AACC วิธี 44-15A) แอชได้รับการ
วัดจากการเผาไหม้แห้ง (AACC วิธี 08-01) ไขมันฟรี
ถูกวัดโดยการสกัดปิโตรเลียมอีเทอร์ตามด้วยการระเหย
น้ำหนักคงที่ (AACC วิธี 30-25) ใยอาหารที่ถูก
กำหนดขึ้นมาตามขั้นตอนของ AACC วิธี 32-07 ทุก
วัดตัวอย่างได้ทำในเพิ่มขึ้นสามเท่า
2.5 การวิเคราะห์หาปริมาณแร่ธาตุที่จำเป็น
แร่ธาตุที่จำเป็น [ฟอสฟอรัส (P) โพแทสเซียม (K)
แมกนีเซียม (Mg) แคลเซียม (Ca)] ในตัวอย่างถูกกำหนดโดย
ใช้อะตอมมิก, AAS (Perkin Elmer
4100ZL) Absorbancies ถูกบันทึกไว้และกราฟมาตรฐานได้รับการ
วางแผน ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัม / 100 กรัมตัวอย่าง
2.6 ปริมาณใยอาหารทั้งหมด
เนื้อหาใยอาหารถูกกำหนดโดยเอนไซม์-gravimetric
วิธีการตามฉบับที่ 16 ของวิธีการอย่างเป็นทางการ
ของการวิเคราะห์ AOAC (1997), วิธี 985.29 ตัวอย่าง (แห้ง
และไขมันฟรี) มี gelatinized ด้วยความร้อนที่มีเสถียรภาพอะไมเลสและ
เอนไซม์ย่อยด้วยน้ำย่อยและ amyloglucosidase เพื่อเอา
​​โปรตีนและแป้งอยู่ในตัวอย่าง
2.7 แป้งทน (RS)
ปริมาณแป้งทนถูกกำหนดตามอิน,
การ์เซีย Diz, มนัสและ Saura-Calixto (1996) วิธีนี้เกี่ยวข้องกับ
การกำจัดของโปรตีนที่มีน้ำย่อย (40 องศาเซลเซียส, 1 ชั่วโมง, ค่า pH 1.5) บ่มที่มี
อะไมเลส (37 C, 16 ชั่วโมง) เพื่อสลายแป้งย่อยการรักษา
ตกค้างมี 2 M KOH จะ solubilise อาร์เอสและ ในที่สุดบ่ม
กับ amyloglucosidase (60 องศาเซลเซียส, 45 นาที, ค่า pH 4.75) การสลาย RS
กลูโคสฟรีถูกกำหนดโดยใช้ oxidase กลูโคสทดสอบ
GOD-PAP อาร์เอสได้รับการคำนวณเป็นกลูโคสได้ฟรีหรือไม่ 0.9 ที่ 0.9 = การแก้ไข
ปัจจัย (กลูโคส-polysaccharide)
2.8 ความมุ่งมั่นจากทั้งหมดแป้ง
ปริมาณแป้งทั้งหมดถูกกำหนดตามวิธีการ
อธิบายโดยอิน, การ์เซียอลอนโซ่และ Saura-Calixto (1997) (ปัจจัย
การแปลงจากน้ำตาลแป้งเท่ากับ 0.9).
2.9 ในการย่อยแป้งหลอดทดลอง
การย่อยคาร์โบไฮเดรตก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนดตาม
ที่เหวิน, ลอเรน, มาร์ตินสจ๊วร์และจอห์น (1996) ลาย aamylase
(100 หน่วย) ถูกนำมาใช้สำหรับการย่อยอาหาร วัดการดูดกลืนแสง
ที่ 490 นาโนเมตรโดยใช้ UV-spectrophotometer การสอบเทียบ
โค้ง (0-200 LG) ของมอลโตสเมื่อเทียบกับการดูดกลืนแสงที่ทำ
ผลิตภัณฑ์คาร์โบไฮเดรตทั้งหมดย่อยอาหาร
¼
X? 100 ml
2 มิลลิลิตร? 830 มล
2 มิลลิลิตร 1 มิลลิกรัม = 1000 LG
W
!
1
H
ที่ X = คาร์โบไฮเดรตใน 2 มิลลิลิตรเจือจางที่แยกได้โดยอ้างอิงกับ
กราฟมาตรฐาน (LG), 100/2 = 2 มิลลิลิตรจาก 100 ml เจือจางแปร,
830/2 = 2 มลจาก 830 มลแปร w = น้ำหนักของตัวอย่างแห้ง (ช)
และ H = เวลาการเกิดปฏิกิริยา (ซ)
2.10 ดัชนีน้ำตาลโดยประมาณ
ในหลอดทดลองจลนศาสตร์ของการย่อยแป้งได้รับการพิจารณาตาม
ที่จะอินและคณะ (1997) เข้มข้นของกลูโคสถูกกำหนดโดยใช้
ชุดกลูโคส oxidase-peroxidase (ซิกม่า) อัตราของการย่อยแป้ง
ได้รับการแสดงเป็นร้อยละของแป้งรวมย่อยได้
ในเวลาที่แตกต่างกัน (30, 60, 90, 120, 150 และ 180 นาที)
ดัชนีระดับน้ำตาลในเลือดของกลุ่มตัวอย่างที่ได้รับการประเมินตาม
สมการที่เสนอโดยอินและคณะ . (1997) พื้นที่ใต้
เส้นโค้งการย่อยสลาย (AUC) ที่คำนวณโดยใช้สมการ:
AUC = C1 (tf t0?)? (C1 / k) [1? exp (tf? t0)] ที่สอดคล้อง C
ถึงร้อยละของแป้งย่อยที่เวลา t, C1 เป็นสมดุล
ของแป้งย่อยหลังจาก 180 นาที, k คือการเคลื่อนไหว
อย่างต่อเนื่องและ t คือเวลา (นาที), tf เป็น ครั้งสุดท้าย (180 นาที) และ t0
เป็นครั้งแรก (0 นาที) ดัชนีการย่อยสลาย (HI) ได้
โดยการหารพื้นที่ใต้เส้นโค้งการย่อยสลายของแต่ละตัวอย่าง
โดยพื้นที่ที่สอดคล้องกันของกลุ่มตัวอย่างอ้างอิง (สีขาวสด
ขนมปัง) ดัชนีน้ำตาลประมาณ (GI) ที่คำนวณโดยใช้
สมการ: GI = 39.71 + (0.549 HI?)
2.11 คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ (AP)
2.11.1 การเตรียมสารสกัดจากเส้นก๋วยเตี๋ยวเพื่อการศึกษาสารต้านอนุมูลอิสระ
ตัวอย่างก๋วยเตี๋ยวก่อนต้ม (100 กรัม) คือเข้ากันและนำ
มาผสมกับ 200 มิลลิลิตรของเมทานอล ผสมถูกคนที่ห้อง
อุณหภูมิ 60 นาทีและกรองผ่านตัวกรอง Whatman ที่ 1 กรอง
กระดาษตามด้วยการหมุนเหวี่ยงที่ 3000g เป็นเวลา 15 นาที
ใสได้กระจุกตัวอยู่ในสูญญากาศเครื่องระเหยแบบหมุนที่
50 องศาเซลเซียส การแก้ปัญหาความเข้มข้นที่แห้งและเก็บไว้ที่
? 20 องศาเซลเซียสสำหรับใช้งานต่อไป
2.11.2 ความมุ่งมั่นของสารต้านอนุมูลอิสระ
ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากเส้นก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนด
ตามวิธีการ thiocyanate ธาตุเหล็ก (Kikuzaki และทานิ,
1993) สารสกัดแห้ง (4 mg) อยู่ในสากล
ขวดที่มี 4 มิลลิลิตรของเอทานอล (99.5%), 4.1 มิลลิลิตรของไลโนเลอิก 2.5%
กรดใน 99.5% เอทานอล 8 มิลลิลิตร 0.02 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7)
และ 3.9 มิลลิลิตรของน้ำกลั่น การแก้ปัญหาการผสมในสากล
ขวดถูกบ่มที่ 40 องศาเซลเซียส ทุก 24 ชั่วโมง, 0.1 มิลลิลิตรของตัวอย่างถูกใส่
ลงไปในหลอดทดลองที่มี 9.7 มิลลิลิตร 75% เอทานอลและ 0.1 มิลลิลิตร 30

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2 . วัสดุและวิธีการ
2.1 . แป้งบะหมี่ค้าวัสดุ
ได้ในท้องถิ่นจากภาษามลายู
แป้งโรงงานบริษัท , มาเลเซีย กล้วยสีเขียว ( กล้วยป่า 
balbisiana คอลลาพันธุ์ awak ) ได้มาจากตลาดท้องถิ่นใน
ปีนัง โอ๊ต b-glucan ( nutrimotm ) ซื้อมาจากอนาคต ceuticals

, มิดเวสต์ . . . แป้งกล้วยสีเขียว ( กล้วยป่า  balbisiana คอลลาพันธุ์ awak )

เตรียมหั่นกล้วยแห้งที่ 60 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 12 ชั่วโมง  โดยใช้เครื่องเป่าอากาศร้อน
( afos ) อบแห้งกล้วยถูกบดและขนาดลงในแป้งที่ใช้ สี
.
2.3 ก๋วยเตี๋ยวเตรียม
ผสมแป้ง ผสมในเครื่องผสมช่วยครัว
หนัก ) กับสารละลายเกลือจนบรรลุขั้นสุดท้าย การดูดซึมน้ำ
สูงสุด แป้งก็อนุญาตให้พักที่
อุณหภูมิห้อง( 23  องศาเซลเซียส อีก 15 นาที แล้ว sheeted บนบะหมี่
เครื่อง ( ampia รุ่น : 150 , มาร์คาโต อิตาลี ) บะหมี่
ก่อนต้มในน้ำเดือด 1 นาที และล้างด้วยน้ำเย็น .
2.4 . ผลการวิเคราะห์
ความชื้น โปรตีน เถ้า ไขมัน และไฟเบอร์ดิบดิบดิบเนื้อหา
ก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนดตามวิธีการของ AACC
( 2000 ) โปรตีน ( % n  57 ) ถูกกำหนดโดยวิธีเจลดาห์ล
( AACC ) 46-13 ) ความชื้นที่ถูกกำหนดโดย ovendrying
4 H ที่ 100 - 105  C ( AACC ) 44-15a ) เถ้า
วัดโดยบริการการเผาไหม้ ( AACC ) 08-01 ) ฟรีไขมัน
วัดจากการสกัดปิโตรเลียมอีเทอร์ ตามด้วยการระเหย
น้ำหนักคงที่ ( AACC ) 30-25 ) เส้นใยอาหาร คือ
พิจารณาตามขั้นตอนของ AACC ,วิธี 32-07 . การวัด
ตัวอย่างทั้งหมดเสร็จ ทั้งสามใบ
2.5 การวิเคราะห์ปริมาณแร่ธาตุที่จำเป็น
สรุปแร่เนื้อหา [ ฟอสฟอรัส ( P ) โพแทสเซียม ( K )
แมกนีเซียม ( Mg ) แคลเซียม ( Ca ) ] ในตัวอย่าง
ใช้ Atomic absorption spectroscopy , AAS ( เพอร์กินเอลเมอร์
4100zl ) absorbancies ได้ถูกบันทึกไว้และเส้นโค้งมาตรฐาน
วางแผน ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัม / ตัวอย่าง 100 กรัม
2.6 รวมเส้นใยอาหาร
ใยอาหารเนื้อหาถูกกําหนดโดยเอนไซม์–ด้วย
วิธีตามรุ่น 16 ของวิธีการอย่างเป็นทางการ
การวิเคราะห์ของโปรตีน ( 1997 ) , วิธี 985.29 . ตัวอย่าง (
และไขมันฟรีแห้ง ) เป็นวุ้นกับ a-amylase เสถียรภาพความร้อนแล้ว
enzymatically ย่อยด้วยเอนไซม์โปรตีเอส และไมโลกลูโคซิเดสเอา
โปรตีนและแป้งที่มีอยู่ในตัวอย่าง
2.7 .แป้งป้องกัน ( RS )
แป้งทนถูกกำหนดตาม G õนิ
การ์เซีย diz มนัส และ saura , calixto ( 1996 ) วิธีนี้เกี่ยวข้องกับการกำจัดของโปรตีนด้วยเอนไซม์เปปซิน (
1 H 40  C , pH 1.5 ) บ่มด้วย
a-amylase ( 37  C 16 H ) ไฮโดรไลซ์ที่ย่อยแป้ง รักษา
2 M ที่ตกค้างเกาะที่จะ solubilise RS และในที่สุดบ่ม
กับไมโลกลูโคซิเดส ( 60  C 45 นาที พีเอช 475 ) ไฮโดรไลซ์น้ำตาลกลูโคส .
ฟรี ตั้งใจใช้ กลูโคส (
god-pap . อาร์เอส คำนวณเป็นฟรีกลูโคส  0.9 ที่ 0.9 = ตัวประกอบแก้ไข
( โพลีแซคคาไรด์ ( กลูโคส ) .
2.8 . การหาปริมาณแป้ง
แป้งทั้งหมดรวมถูกกำหนดตามวิธีการ
อธิบายโดยโกนิ การ์เซีย อลอนโซ่ และ saura calixto ( 1997 ) ปัจจัยการแปลงจากแป้งเป็นกลูโคส
( )
2.9 .ในหลอดทดลอง การย่อยคาร์โบไฮเดรตแป้ง
การย่อยได้ของก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนดตาม
ให้เหวิน , ลอเรนซ์ มาร์ติน สจ๊วต และ แซมป์สัน ( 1996 ) น้ำลาย aamylase
( 100 หน่วย ) ที่ใช้ในการย่อยอาหาร ค่าวัด
ที่ 490 nm โดยใช้ UV Spectrophotometer . การสอบเทียบ
โค้ง ( 0 - 200 LG ) เมื่อเทียบกับค่าของน้ำตาลเป็นคาร์โบไฮเดรตย่อยผลิตภัณฑ์
.
รวม¼
x
 100 มล.2 ml  830 ml
2 ml  1 มิลลิกรัม = 1000 LG
W
!
1
H
ที่ x = คาร์โบไฮเดรตใน 2 มล. เจือจาง dialysate อ้างอิง
โค้งมาตรฐาน ( LG ) 100 / 2 = 2 ml 100 มล. เจือจาง dialysate
2 = 2 , 830 / ml จาก 830 มิลลิลิตร dialysate W = น้ำหนักของตัวอย่างแห้ง ( G ) H =
และเวลาปฏิกิริยา ( H )
2.10 . คาดดัชนีไกลซีมิก
จลนศาสตร์ของการย่อยแป้งคือการพิจารณาตาม
ไปโกนิ et al . ( 1997 )ความเข้มข้นของกลูโคส กลูโคสและการพิจารณาการเปลี่ยนแปลงชุด ( Sigma ) อัตราการย่อยแป้ง
ถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์ของผลรวมแป้งน้ำตาล
เวลาที่ต่างกัน ( 30 , 60 , 90 , 120 , 150 และ 180 นาที )
ดัชนีไกลซีมิกกลุ่มตัวอย่างประมาณตาม
กับสมการที่เสนอโดยโกนิ et al . ( 1997 ) บริเวณใต้
การย่อยสลายโค้ง ( ยา ) คือคำนวณโดยใช้สมการ :
ยา = C1 ( TF  t0 )  ( c1 k ) [ 1  EXP ( TF  t0 ] ) ซึ่งสอดคล้องกับค่า C
แป้ง น้ำตาล ที่เวลา t C1 เป็นเปอร์เซ็นต์ของแป้งที่สมดุล
หลังจาก 180 นาที k คือพลังงานจลน์
คงที่และ t คือ เวลา ( นาที ) , TF เป็นครั้งสุดท้าย ( 180 นาที ) t0
เป็นครั้งแรก ( 1 นาที )ดัชนีย่อย ( ไฮ ) ได้
โดยแบ่งพื้นที่ใต้กราฟของแต่ละตัวอย่างการย่อย
โดยพื้นที่ที่สอดคล้องกันของตัวอย่าง ( ขนมปังขาว
สด ) ค่าดัชนีไกลซีมิก ( กี ) คำนวณได้โดยใช้สมการ : กี =
( 0.549 โดย  ไง )
2.11 . คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ ( AP )
2.11.1 . การเตรียมสารสกัดสำหรับก๋วยเตี๋ยว
การศึกษาสารต้านอนุมูลอิสระตัวอย่างก่อนต้มบะหมี่ ( 100 กรัม ) และมี homogenised
ผสม 200 ml ของเมทานอล และเป็นคนที่อุณหภูมิห้อง
นาน 60 นาที ผลิตโดย whatman 1 กรอง
กระดาษ ตามด้วยการปั่นเหวี่ยงที่ 3000g 15 นาที
นำข้นในสูญญากาศ Rotary evaporator ที่
50  ซี. โซลูชั่นเข้มข้นแช่แข็งและเก็บไว้ที่  20 
C
ใช้เพิ่มเติม2.11.2 . การหาปริมาณสารต้านอนุมูลอิสระสารต้านอนุมูลอิสระจากสารสกัด

ก๋วยเตี๋ยวถูกกำหนดตามวิธีการไทโอไซยาเนตเฟอร์ ( kikuzaki นาคาทานิ
& , 1993 ) สารสกัดแห้งแช่แข็ง ( 4 mg ) อยู่ในสากล
4 มิลลิลิตร ขวดบรรจุแอลกอฮอล์ ( 99.5% ) , 4.1 กรัม 2.5% กรด linoleic
ในเอทานอล 99.5% 8 ml 0.02 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7 )
และ 3.9 มล. น้ำกลั่นผสมสารละลายในขวดสากล
ถูกบ่มที่อุณหภูมิ 40 องศาเซลเซียส  ทุก 24 ชั่วโมง จำนวน 0.1 มิลลิลิตร ใส่ในหลอดทดลองที่มี
9.7 ml ของเอทานอล 75% และ 0.1 มล. 30