2.3. Biosurfactants release, isolat

2.3. Biosurfactants release, isolation and surface tension
measurements
P. fluorescens 495 (INRA, Montfavet, France), isolated from
the autochtonous flora of the chicory leaf Cichorium endivia
var. latifolium and L. helveticus 1181 (INRA, Jouy-en-Josas,
France), a homofermentative thermophilic lactic acid bacterium
involved in the Emmental cheese making were used in this study.
The production of the biosurfactant was based on the method
by Meylheuc [7]. Briefly, the strains were cultivated 4 days on
agar medium at the relevant temperature. P. fluorescens 495
was cultured on King B agar (KBA, Merck, France) at 22 ◦C
whereas L. helveticus 1181 was incubated at 37 ◦C on MRS
agar supplemented with glucose 20 g/l (Difco B.D., Le Pont
de Claix, France). After incubation, agar surfaces were scraped,
cells were resuspended in sterile demineralizedwater and shaken
strongly for 3 min (Bioblock, Illkirch, France). The supernatant
containing biosurfactant was separated from the cells by centrifuging
(30 min at 18,000×g). The recovered supernatant was
then filtered through a 0.22-
m pore-size filter (Steriflip, Millipore,
France) and stored at 4 ◦C. Their tension-activity was
determined at 20 ◦Cby surface tension measurements usingWilhelmy’s
plate method (tensiometer K12, Kr¨uss, Germany). The
anionic character of the surface-active compounds was determined
using the agar double diffusion technique [8].

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.3 ปล่อย biosurfactants, แยกและแรงตึงผิว
วัด
P. fluorescens 495 (INRA, Montfavet, ฝรั่งเศส) ที่แยกได้จาก
พืช autochtonous ของใบสีน้ำเงิน Cichorium endivia
var latifolium ต้นลิตรและ helveticus 1181 (INRA, Jouy-en-Josas,
ฝรั่งเศส), แบคทีเรียกรดแลคติก homofermentative อุณหภูมิ
มีส่วนร่วมในการทำชีส Emmental ถูกนำมาใช้ในการศึกษาครั้งนี้.
การผลิตของแหล่งคาร์บอนก็ขึ้นอยู่กับวิธีการ
โดย Meylheuc [7 ] สั้น ๆ สายพันธุ์ได้รับการปลูกฝัง 4 วันใน
กลางวุ้นที่อุณหภูมิที่เกี่ยวข้อง P. fluorescens 495
เป็นเพาะเลี้ยงบนกิ่ง B agar (KBA เมอร์ค, ฝรั่งเศส) วันที่ 22 ◦C
ขณะลิตร helveticus 1181 ได้รับการบ่มที่อุณหภูมิ 37 ◦Cบน MRS
agar เสริมด้วยกลูโคส 20 กรัม / ลิตร (Difco BD, Le Pont
de เคลซ์ , ฝรั่งเศส) หลังจากบ่มเชื้อพื้นผิวที่ได้รับการคัดลอก,
เซลล์ถูก resuspended ใน demineralizedwater ผ่านการฆ่าเชื้อและเขย่า
อย่างรุนแรงเป็นเวลา 3 นาที (Bioblock, Illkirch, ฝรั่งเศส) สารละลาย
ที่มีแหล่งคาร์บอนถูกแยกออกจากเซลล์โดยการปั่นแยก
(30 นาทีที่ 18,000 ×กรัม) ใสหายถูก
กรองแล้วผ่าน 0.22-? เมตรกรองรูพรุนขนาด (Steriflip, ค,
ฝรั่งเศส) และเก็บไว้ที่ 4 ◦C ความตึงเครียดกิจกรรมของพวกเขาถูก
กำหนดที่ 20 ◦Cbyวัดแรงตึงผิว usingWilhelmy ของ
วิธีแผ่น (แรงดึง K12, Kr¨uss, เยอรมนี)
ตัวอักษรประจุลบของสารประกอบพื้นผิวที่ใช้งานถูกกำหนด
โดยใช้เทคนิคการแพร่คู่วุ้น [8]

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.3 biosurfactants ปล่อยแยกและการวัดความตึงผิว

P . fluorescens 495 ( ทีมนักวิจัยของ montfavet , ฝรั่งเศส ) ที่แยกได้จากพืช
autochtonous ของชิโครี่ใบ cichorium endivia
) latifolium และ helveticus 181 ( ทีมนักวิจัยของ jouy josas
, en , ฝรั่งเศส ) , และแบคทีเรียกรดแลคติก homofermentative
ที่เกี่ยวข้องในการทำเนยแข็ง Emmental ที่ใช้ในการศึกษาครั้งนี้
การผลิตสารลดแรงตึงผิว ขึ้นอยู่กับวิธีการ
โดย meylheuc [ 7 ] สั้น สายพันธุ์ ปลูกบนอาหารวุ้น
4 วัน ที่อุณหภูมิ ที่เกี่ยวข้อง P . fluorescens 495
เลี้ยงกษัตริย์ B ( kba เมอร์ค ฝรั่งเศส ) ที่ 22 ◦ C
ส่วน L . helveticus 181 ถูกบ่มที่ 37 ◦ C .
agar ที่เติมกลูโคส 20 กรัมต่อลิตร ( difco B.D . Le Pont
de claix , ฝรั่งเศส ) หลังจากระยะเวลาพื้นผิววุ้นถูกขูด
เซลล์มี resuspended ใน demineralizedwater เป็นหมัน และหวั่นไหว
ขอ 3 นาที ( bioblock illkirch , ฝรั่งเศส ) และน่าน
ประกอบด้วย ( แยกจากเซลล์โดยการเซนตริฟิว
( 30 นาทีที่× 18 , 000 กรัม ) กู้คืนแล้วกรองผ่านสูงคือ
0.22 -
M ขนาดรู กรอง ( steriflip มิลลิ ,
, ฝรั่งเศส ) และเก็บรักษาที่อุณหภูมิ 4 ◦ Cกิจกรรมแรงของพวกเขา
ที่กำหนดวิธีการวัดจาน 20 ◦แรงตึงผิวของ usingwilhelmy
( เทนซิโอมิเตอร์ K12 KR ตั้ง , เรือรบ , เยอรมัน )
ตัวละครและของพื้นผิวที่ใช้งานสารตั้งใจ
ใช้เทคนิค double diffusion วุ้น [ 8 ]