- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
they were rated based on the intens
they were rated based on the intensity of the reddish brown color)
as follows: 0 ¼ no color change; 1 ¼ light reddish brown;
2 ¼ medium reddish brown and 3 ¼ dark reddish brown.
2.4.5. Indole acetic acid (IAA) production
It was done as per the protocols of Patten and Glick (1996). The
actinomycetes were grown in starch casein broth supplemented
with L-tryptophan (1 mg ml1) for four days. At the end of the
incubation, the cultures were centrifuged at 10,000 g for 10 min
and the supernatants collected. One ml of this culture filtrate was
allowed to react with 2 ml of Salkowsky reagent (1 ml of 0.5MFeCl3
in 50 ml of 35% HClO4) at 28 2 C for 30 min. At the end of the
incubation, development of pink color indicated the presence of
IAA. Quantification of IAA was done by measuring the absorbance
in a spectrophotometer at 530 nm. A standard curve was plotted to
quantify the IAA (mg ml1) present in the culture filtrate.
2.5. Evaluation of actinomycetes under greenhouse conditions
The five most potential antagonistic actinomycete isolates
(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 and KAI-90) against FOC from the
in vitro studies were evaluated individually for their antagonistic
potential in pots in the greenhouse. Each actinomycete isolate was
inoculated by five different methods viz. M1 ¼ inoculation of the
potting mixture with respective actinomycete culture along with
FOC two weeks before sowing; M2 ¼ inoculation of the seeds
by soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;
M3 ¼ inoculation of the sprouted seeds by soaking in the respective
actinomycete culture for 1 h; M4 ¼ inoculation of the potting
mixture with actinomycete culture at the time of sowing (10 ml of
well-grown actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seed and covered with soil) and M5 ¼ inoculation of the seedlings
after emergence with actinomycete culture (10 ml of well-grown
actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seedlings after emergence). Thus the combination of actinomycetes
isolates five methods of inoculation constituted 25 independent
treatments. Also, there were seven more treatments as various
controls were included as follows: treatments 26e30: the potting
mixtures inoculated with each actinomycete isolate individually two
weeks before sowing, 31: the potting mixtures inoculated only with
FOC 2weeks before sowing and 32: the potting mixture treated only
with 200 ml sterilized water two weeks before sowing (negative
control). The experiment had six replications.
FOC inoculum was mass-multiplied on chickpea grains (variety
JG-62, highly susceptible to Fusarium wilt, acquired from the
Legumes Pathology Division, ICRISAT) using the protocols of Gupta
et al. (2002). Pot mixture (800 g) was prepared by mixing red soil,
sand and farmyard manure at 3:2:2 (w/w) andwas filled in 8 inches
plastic pots followed by inoculation with FOC inoculum (20% of pot
weight, 200 g pot1). In the M1 treatment, respective actinomycetes
(grown in starch casein broth for 4 days)were inoculated (20% of pot
weight; 200 ml pot1, 108 CFU ml1) along with the FOC, whereas in
the other treatment pots 200 ml of sterile water was added. Inoculumwas
thoroughly mixed with the pot mixture and the potswere
covered with polythene sheets. The whole set-up was incubated at
26 2 C for 15 days to have Fusarium wilt sick conditions. Two
weeks later, the seeds of chickpea variety JG-62 were surface-sterilized
with 2.5% sodium hypochlorite solution for 5 min and rinsed
with sterilized water (8 times). The surface-sterilized seeds were
treated with respective actinomycetes and/or FOC (as discussed
earlier). Six such seeds were sown in each pots and one week later
thinned to retain three seedlings. Plants were irrigated once every
two days with 20 ml sterilized distilled water. Incidence of Fusarium
wilt disease (number of plants showing wilt symptoms to the total
number of plants in a pot) was recorded on 5, 10, 15, 20 and 29 days
after sowing (DAS). In addition, actinomycetes population was
enumerated on day 29 in the negative control, in the actinomycetes
control (where no FOC was inoculated) and in the treatments
(where both FOC and actinomycetes were inoculated) on SCA plate,
as explained earlier.
2.6. Evaluations of actinomycetes in Fusarium wilt sick field
The five most potential antagonistic actinomycetes from the in
vitro and greenhouse studies were further evaluated individually
for their antagonistic potential in Fusarium-infested field at ICRISAT,
Patancheru, during 200910 cropping seasons. The field was
maintained as wilt sick plot since 1980 (Nene et al., 1981). Each
actinomycete isolate was inoculated by four different methods viz.
M1 ¼ inoculation of the seeds by soaking in the respective actinomycete
culture for 1 h; M2 ¼ inoculation of the sprouted seeds
by soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;
M3 ¼ inoculation of the soil with respective actinomycete culture
(5 ml per seed, 108 CFU ml1) at the time of sowing and
M4 ¼ inoculation of the seedlings after emergence with the
respective actinomycete culture (5 ml per seedling, 108 CFU ml1).
Thus, the combination of actinomycete isolates four methods of
inoculation constituted 20 independent treatments in addition to
one positive control, where no actinomycete was inoculated. Each
treatment was replicated three times in randomized complete
as follows: 0 ¼ no color change; 1 ¼ light reddish brown;
2 ¼ medium reddish brown and 3 ¼ dark reddish brown.
2.4.5. Indole acetic acid (IAA) production
It was done as per the protocols of Patten and Glick (1996). The
actinomycetes were grown in starch casein broth supplemented
with L-tryptophan (1 mg ml1) for four days. At the end of the
incubation, the cultures were centrifuged at 10,000 g for 10 min
and the supernatants collected. One ml of this culture filtrate was
allowed to react with 2 ml of Salkowsky reagent (1 ml of 0.5MFeCl3
in 50 ml of 35% HClO4) at 28 2 C for 30 min. At the end of the
incubation, development of pink color indicated the presence of
IAA. Quantification of IAA was done by measuring the absorbance
in a spectrophotometer at 530 nm. A standard curve was plotted to
quantify the IAA (mg ml1) present in the culture filtrate.
2.5. Evaluation of actinomycetes under greenhouse conditions
The five most potential antagonistic actinomycete isolates
(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 and KAI-90) against FOC from the
in vitro studies were evaluated individually for their antagonistic
potential in pots in the greenhouse. Each actinomycete isolate was
inoculated by five different methods viz. M1 ¼ inoculation of the
potting mixture with respective actinomycete culture along with
FOC two weeks before sowing; M2 ¼ inoculation of the seeds
by soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;
M3 ¼ inoculation of the sprouted seeds by soaking in the respective
actinomycete culture for 1 h; M4 ¼ inoculation of the potting
mixture with actinomycete culture at the time of sowing (10 ml of
well-grown actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seed and covered with soil) and M5 ¼ inoculation of the seedlings
after emergence with actinomycete culture (10 ml of well-grown
actinomycete culture [108 CFU ml1] was applied on the
seedlings after emergence). Thus the combination of actinomycetes
isolates five methods of inoculation constituted 25 independent
treatments. Also, there were seven more treatments as various
controls were included as follows: treatments 26e30: the potting
mixtures inoculated with each actinomycete isolate individually two
weeks before sowing, 31: the potting mixtures inoculated only with
FOC 2weeks before sowing and 32: the potting mixture treated only
with 200 ml sterilized water two weeks before sowing (negative
control). The experiment had six replications.
FOC inoculum was mass-multiplied on chickpea grains (variety
JG-62, highly susceptible to Fusarium wilt, acquired from the
Legumes Pathology Division, ICRISAT) using the protocols of Gupta
et al. (2002). Pot mixture (800 g) was prepared by mixing red soil,
sand and farmyard manure at 3:2:2 (w/w) andwas filled in 8 inches
plastic pots followed by inoculation with FOC inoculum (20% of pot
weight, 200 g pot1). In the M1 treatment, respective actinomycetes
(grown in starch casein broth for 4 days)were inoculated (20% of pot
weight; 200 ml pot1, 108 CFU ml1) along with the FOC, whereas in
the other treatment pots 200 ml of sterile water was added. Inoculumwas
thoroughly mixed with the pot mixture and the potswere
covered with polythene sheets. The whole set-up was incubated at
26 2 C for 15 days to have Fusarium wilt sick conditions. Two
weeks later, the seeds of chickpea variety JG-62 were surface-sterilized
with 2.5% sodium hypochlorite solution for 5 min and rinsed
with sterilized water (8 times). The surface-sterilized seeds were
treated with respective actinomycetes and/or FOC (as discussed
earlier). Six such seeds were sown in each pots and one week later
thinned to retain three seedlings. Plants were irrigated once every
two days with 20 ml sterilized distilled water. Incidence of Fusarium
wilt disease (number of plants showing wilt symptoms to the total
number of plants in a pot) was recorded on 5, 10, 15, 20 and 29 days
after sowing (DAS). In addition, actinomycetes population was
enumerated on day 29 in the negative control, in the actinomycetes
control (where no FOC was inoculated) and in the treatments
(where both FOC and actinomycetes were inoculated) on SCA plate,
as explained earlier.
2.6. Evaluations of actinomycetes in Fusarium wilt sick field
The five most potential antagonistic actinomycetes from the in
vitro and greenhouse studies were further evaluated individually
for their antagonistic potential in Fusarium-infested field at ICRISAT,
Patancheru, during 200910 cropping seasons. The field was
maintained as wilt sick plot since 1980 (Nene et al., 1981). Each
actinomycete isolate was inoculated by four different methods viz.
M1 ¼ inoculation of the seeds by soaking in the respective actinomycete
culture for 1 h; M2 ¼ inoculation of the sprouted seeds
by soaking in the respective actinomycete culture for 1 h;
M3 ¼ inoculation of the soil with respective actinomycete culture
(5 ml per seed, 108 CFU ml1) at the time of sowing and
M4 ¼ inoculation of the seedlings after emergence with the
respective actinomycete culture (5 ml per seedling, 108 CFU ml1).
Thus, the combination of actinomycete isolates four methods of
inoculation constituted 20 independent treatments in addition to
one positive control, where no actinomycete was inoculated. Each
treatment was replicated three times in randomized complete
0/5000
พวกเขาถูกจัดอันดับตามความเข้มของสีน้ำตาลสีน้ำตาล)ดัง: 0 ¼ไม่เปลี่ยนสี 1 ¼อ่อนน้ำตาลน้ำตาล2 ปานกลาง¼¼ 3 และน้ำตาลน้ำตาลน้ำตาลน้ำตาลเข้ม2.4.5. อินโดลกรดอะซิติก (IAA) ผลิตมันทำตามโพรโทคอลที่แพทเท็นปอนด์แคมและ Glick (1996) ที่actinomycetes ถูกปลูกในซุปเคซีนแป้งเสริมมี L-ทริปโตเฟน (มิลลิกรัมต่อ 1 มิลลิลิตร 1) วันที่สี่ เมื่อสิ้นสุดการคณะทันตแพทยศาสตร์ วัฒนธรรมถูก centrifuged ที่ g 10000 สำหรับ 10 นาทีและ supernatants ที่รวบรวม Ml หนึ่งของสารกรองวัฒนธรรมนี้ได้สามารถทำปฏิกิริยากับ 2 ml ของ Salkowsky รีเอเจนต์ (1 ml ของ 0.5MFeCl3ใน 50 มลของ HClO4 35%) ที่ 2 C 28 ใน 30 นาที เมื่อสิ้นสุดการคณะทันตแพทยศาสตร์ การพัฒนาของสีชมพูระบุราคาของIAA ทำ โดยการวัด absorbance ที่นับของ IAAในเครื่องทดสอบกรดด่างที่ 530 nm ถูกพล็อตเส้นโค้งมาตรฐานกำหนดปริมาณ IAA (มลมิลลิกรัม 1) อยู่ในวัฒนธรรมสารกรอง2.5 การประเมินของ actinomycetes สภาวะเรือนกระจก5 ส่วนใหญ่มีศักยภาพต่อต้าน actinomycete แยก(ไค-24 ไก-121, 127 ไก ไก่-32 และไก่-90) กับ FOC จากการศึกษาการเพาะเลี้ยงถูกประเมินแต่ละของพวกเขาต่อต้านศักยภาพในกระถางในเรือนกระจก แยกแต่ละ actinomycete ถูกinoculated โดยวิธีอื่นห้า viz. M1 inoculation ¼ของpotting ผสมกับวัฒนธรรม actinomycete เกี่ยวข้องด้วยสองสัปดาห์ก่อน sowing; FOC M2 inoculation ¼ของเมล็ดพืชโดยแช่ในวัฒนธรรมนั้น ๆ actinomycete สำหรับ h 1M3 inoculation ¼ของเมล็ด sprouted โดยอย่างที่เกี่ยวข้องวัฒนธรรม actinomycete สำหรับ h 1 M4 inoculation ¼ของแบบ pottingผสมผสานกับวัฒนธรรม actinomycete เมื่อ sowing (10 ml ของวัฒนธรรมแห่งปลูก actinomycete [108 CFU ml 1] ใช้ในการเมล็ด และปกคลุม ด้วยดิน) และ M5 inoculation ¼ของกล้าไม้หลังจากที่เกิดขึ้นกับวัฒนธรรม actinomycete (10 ml ของดีปลูกactinomycete วัฒนธรรม [108 CFU ml 1] ถูกนำไปใช้ในการกล้าไม้หลังเกิดขึ้น) ดังนั้นการรวมกันของ actinomycetesแยก inoculation ทะลัก 25 อิสระ 5 วิธีรักษา ยัง มีการรักษาเพิ่มเติม 7 เป็นต่าง ๆตัวควบคุมถูกรวมเป็นดังนี้: 26e30 รักษา: pottingส่วนผสม inoculated ด้วยละ actinomycete แยกทีละสองสัปดาห์ก่อน sowing, 31: น้ำยาผสม potting inoculated ด้วยFOC 2weeks sowing และ 32: ผสม potting ถือเท่านั้นมี 200 มล sterilized น้ำสองสัปดาห์ก่อน sowing (ลบควบคุม) ทดลองมี 6 ระยะFOC inoculum มีมวลคูณกับแกงถั่วเขียวธัญพืช (หลากหลายJG-62 สูงไวต่อการเหี่ยว Fusarium มาจากส่วนกินพยาธิ ICRISAT) ใช้โพรโทคอลที่กุปตาal. ร้อยเอ็ด (2002) ส่วนผสมหม้อ (800 กรัม) ถูกเตรียม โดยผสมดินแดงทรายและ farmyard มูล 3:2:2 (w/w) andwas เติม 8 นิ้วกระถางพลาสติกตาม inoculation กับ inoculum FOC (20% ของหม้อน้ำหนัก กระถาง 200 g 1) ในการบำบัดรักษา M1, actinomycetes ที่เกี่ยวข้อง(ปลูกในซุปเคซีนแป้ง 4 วัน) ได้ inoculated (20% ของหม้อน้ำหนัก หม้อ 200 ml 1, 108 CFU ml 1) กับ FOC ในขณะที่ในอื่นรักษาหม้อ 200 ml ใส่น้ำเพิ่ม Inoculumwasอย่างละเอียดผสมกับส่วนผสมหม้อและ potswereปกคลุม ด้วยแผ่น polythene การตั้งค่าทั้งหมดถูก incubated ที่26 C 2 15 วันมี Fusarium ทูลสภาพป่วย สองสัปดาห์ เมล็ดของแกงถั่วเขียว JG-62 ถูก sterilized ผิวด้วยโซลูชั่นฟอก 2.5% สำหรับ 5 นาที และ rinsedมี sterilized น้ำ (8 ครั้ง) เมล็ด sterilized พื้นผิวได้รับ actinomycetes ที่เกี่ยวข้องและ/หรือ FOC (ดังที่กล่าวไว้ก่อนหน้านี้) 6 เมล็ดถูกหว่านในกระถางละหนึ่งสัปดาห์ต่อมาthinned รักษากล้าไม้สาม พืชมีชลประทานครั้งทุกสองวันกับ 20 ml sterilized กลั่นน้ำ อุบัติการณ์ของ Fusariumโรคเหี่ยว (จำนวนของพืชแสดงอาการเหี่ยวรวมจำนวนพืชในหม้อ) ถูกบันทึกในวันที่ 5, 10, 15, 20 และ 29หลังจาก sowing (DAS) นอกจากนี้ มีประชากร actinomycetesระบุในวัน 29 ควบคุมลบ ใน actinomycetesควบคุม (ที่ FOC ไม่ถูก inoculated) และ ในการรักษา(ที่ FOC และ actinomycetes ถูก inoculated) บนแผ่น SCAตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้2.6 การประเมินทใน Fusarium ทูลฟิลด์ป่วยActinomycetes เป็นไปได้มากที่สุดต่อต้านห้าจากที่ในหลอดและเรือนกระจกศึกษาได้เพิ่มเติมประเมินแต่ละสำหรับศักยภาพของพวกเขาต่อต้านในฟิลด์รบกวน Fusarium ที่ ICRISATPatancheru ระหว่างครอบซีซั่น 2009 10 ฟิลด์ได้รักษาเป็นทูลพล็อตป่วยตั้งแต่ 1980 (Nene et al., 1981) แต่ละแยก actinomycete ถูก inoculated โดยวิธีสี่ vizM1 inoculation ¼ของเมล็ดโดยแช่ actinomycete ตามลำดับวัฒนธรรมสำหรับ h 1 M2 inoculation ¼ของเมล็ด sproutedโดยแช่ในวัฒนธรรมนั้น ๆ actinomycete สำหรับ h 1M3 inoculation ¼ของดินเกี่ยวข้อง actinomycete วัฒนธรรม(5 มิลลิลิตรต่อเมล็ด 108 CFU ml 1) ในขณะ sowing และM4 inoculation ¼ของกล้าไม้ที่หลังเกิดขึ้นด้วยการวัฒนธรรมเกี่ยวข้อง actinomycete (5 ml ต่อแหล่ง 108 CFU ml 1)ดังนั้น การรวมกันของ actinomycete แยกสี่วิธีรักษาอิสระ 20 นอกทะลัก inoculationหนึ่งบวกควบคุม ที่ actinomycete ไม่ถูก inoculated แต่ละรักษาถูกจำลองแบบแล้วสามครั้งใน randomized สมบูรณ์
การแปล กรุณารอสักครู่..
พวกเขาได้รับการจัดอันดับขึ้นอยู่กับความเข้มของสีสีน้ำตาลแดง)
ดังต่อไปนี้: 0 ¼ไม่มีการเปลี่ยนแปลงสี 1 ¼สีน้ำตาลแดงแสง
. 2 ¼สีน้ำตาลแดงขนาดกลางและ 3 ¼สีน้ำตาลแดงเข้ม
2.4.5 กรดอะซิติกอินโดล (IAA) การผลิตมันก็ทำตามโปรโตคอลของเสื้อและกลิก (1996) แอคติโนมัยถูกปลูกในน้ำซุปเคซีนแป้งเสริมด้วย L-โพรไบโอ (1 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1) เป็นเวลาสี่วัน ในตอนท้ายของการบ่มเพาะวัฒนธรรมที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 10,000? กรัมเป็นเวลา 10 นาทีและ supernatants ที่เก็บรวบรวม หนึ่งมิลลิลิตรกรองวัฒนธรรมนี้ได้รับอนุญาตให้ทำปฏิกิริยากับ 2 มลสาร Salkowsky (1 มิลลิลิตร 0.5MFeCl3 ใน 50 มล. 35% HClO4) วันที่ 28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ในตอนท้ายของการบ่มการพัฒนาของสีชมพูระบุการปรากฏตัวของIAA ปริมาณ IAA ที่ได้กระทำโดยการวัดการดูดกลืนแสงใน spectrophotometer ที่ 530 นาโนเมตร กราฟมาตรฐานได้รับการวางแผนที่จะวัดปริมาณ IAA (มก. มล. 1) ในปัจจุบันกรองวัฒนธรรม. 2.5 การประเมินผลการ actinomycetes เรือนกระจกภายใต้เงื่อนไขที่ห้ามีศักยภาพมากที่สุดสายพันธุ์ actinomycete ปฏิปักษ์(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 และ KAI-90) กับฟรีจากการศึกษาในหลอดทดลองได้รับการประเมินเป็นรายบุคคลสำหรับเป็นศัตรูของพวกเขาที่มีศักยภาพในกระถาง ในเรือนกระจก แต่ละแยก actinomycete ได้รับเชื้อโดยห้าวิธีการที่แตกต่างกันกล่าวคือ M1 ¼ของการฉีดวัคซีนผสมปลูกกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้องพร้อมกับฟรีสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด; M2 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดโดยการแช่ในวัฒนธรรม actinomycete นั้นเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M3 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดงอกโดยการแช่ในแต่ละวัฒนธรรม actinomycete เป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M4 ¼ของการฉีดวัคซีนปลูกผสมกับวัฒนธรรม actinomycete ในช่วงเวลาของการหว่านเมล็ด (10 มล. ของดีที่ปลูกวัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ในเมล็ดและปกคลุมด้วยดิน) และการฉีดวัคซีน M5 ¼ของต้นกล้าหลังจากเกิด กับวัฒนธรรม actinomycete (10 มล. ของความเติบโตวัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ในต้นกล้าหลังจากเกิด) ดังนั้นการรวมกันของแอคติโนมัยสายพันธุ์? ห้าวิธีการฉีดวัคซีนประกอบด้วย 25 อิสระรักษา นอกจากนี้ยังมีเจ็ดการรักษามากขึ้นตามที่ต่างๆควบคุมได้รวมดังนี้การรักษา 26e30: ปลูกผสมเชื้อด้วย actinomycete แต่ละแยกเป็นรายบุคคลสองสัปดาห์ก่อนที่จะหว่านเมล็ด, 31: ผสมปลูกเชื้อเฉพาะกับฟรี 2weeks ก่อนที่จะปลูกและ 32: ส่วนผสมปลูก ได้รับการรักษาเพียงด้วยน้ำ 200 มลฆ่าเชื้อสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด (ลบควบคุม) ทดลองหกซ้ำ. หัวเชื้อฟรีถูกมวลคูณธัญพืชถั่วเขียว (หลากหลายJG-62, สูงไวต่อเชื้อรา Fusarium เหี่ยวได้มาจากพืชตระกูลถั่วกองพยาธิวิทยา ICRISAT) โดยใช้โปรโตคอลของ Gupta et al, (2002) ส่วนผสมหม้อ (800 กรัม) ถูกจัดทำขึ้นโดยการผสมดินสีแดง, สีทรายและปุ๋ยคอกที่ 3: 2: 2 (w / w) andwas เติมเต็มใน 8 นิ้วกระถางพลาสติกตามด้วยการฉีดวัคซีนที่มีเชื้อฟรี (20% ของหม้อน้ำหนัก 200 กรัม หม้อ? 1) ในการรักษา M1, แอคติโนมัยนั้น(ที่ปลูกในน้ำซุปเคซีนแป้งเป็นเวลา 4 วัน) ได้รับเชื้อ (20% ของหม้อน้ำหนัก? หม้อ 200 มล. 1, 108 CFU มล. 1) พร้อมด้วยฟรีในขณะที่ในกระถางการรักษาอื่น ๆ 200 มล. น้ำหมันถูกเพิ่มเข้ามา Inoculumwas ผสมที่มีส่วนผสมหม้อและ potswere ปกคลุมด้วยแผ่นพลาสติก ทั้งการตั้งค่าได้รับการบ่มที่26? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 วันที่จะมีเชื้อรา Fusarium เหี่ยวเงื่อนไขป่วย สองสัปดาห์ต่อมาเมล็ดถั่วเขียวหลากหลาย JG-62 ถูกผิวผ่านการฆ่าเชื้อด้วยสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 2.5% เป็นเวลา 5 นาทีและล้างด้วยน้ำสะอาดผ่านการฆ่าเชื้อ (8 ครั้ง) เมล็ดผิวฆ่าเชื้อได้รับการรักษาด้วย actinomycetes ที่เกี่ยวข้องและ / หรือฟรี (ตามที่กล่าวไว้ก่อนหน้านี้) หกเมล็ดพันธุ์ดังกล่าวถูกหว่านในกระถางแต่ละคนและหนึ่งสัปดาห์ต่อมาบางตาที่จะเก็บสามต้นกล้า พืชที่ถูกชลประทานทุกๆสองวันมี 20 มล. น้ำกลั่นผ่านการฆ่าเชื้อ อุบัติการณ์ของเชื้อรา Fusarium โรคเหี่ยว (จำนวนพืชแสดงอาการเหี่ยวที่จะรวมจำนวนของพืชในหม้อ) จะถูกบันทึกในวันที่ 5, 10, 15, 20 และ 29 วันหลังหยอดเมล็ด (DAS) นอกจากนี้ประชากร actinomycetes ถูกระบุในวันที่ 29 ในการควบคุมเชิงลบใน actinomycetes ควบคุม (ที่ไม่ได้รับการฉีดวัคซีนฟรี) และการรักษา(ที่ทั้งฟรีและแอคติโนมัยถูกเชื้อ) ในจาน SCA, ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้. 2.6 การประเมินผลของแอคติโนมัยใน Fusarium เหี่ยวสนามป่วยห้าปฏิปักษ์มีศักยภาพมากที่สุดในแอคติโนมัยจากการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อและการศึกษาเรือนกระจกได้รับการประเมินเป็นรายบุคคลต่อศักยภาพเป็นศัตรูของพวกเขาในด้าน Fusarium รบกวนที่ ICRISAT, Patancheru ในระหว่างปี 2009? 10 ฤดูกาลปลูกพืช สนามก็ยังคงเป็นพล็อตเหี่ยวป่วยตั้งแต่ปี 1980 (เน et al., 1981) แต่ละแยก actinomycete ได้รับเชื้อโดยสี่วิธีการที่แตกต่างกันกล่าวคือ. M1 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดโดยการแช่ใน actinomycete แต่ละวัฒนธรรมเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M2 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดงอกโดยการแช่ในวัฒนธรรม actinomycete นั้นเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M3 ¼การฉีดวัคซีนของดินกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้อง(5 มิลลิลิตรต่อเมล็ด 108 CFU มล. 1) ในช่วงเวลาของการหว่านเมล็ดและM4 ¼ของการฉีดวัคซีน ต้นกล้าหลังจากเกิดกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้อง (5 มล. ต่อต้นกล้า 108 CFU มล. 1). ดังนั้นการรวมกันของแยก actinomycete? สี่วิธีในการฉีดวัคซีนประกอบด้วย 20 รักษาอิสระนอกเหนือไปจากการควบคุมบวกหนึ่งที่ไม่ได้รับการ actinomycete เชื้อ แต่ละคนได้รับการรักษาที่จำลองแบบสามครั้งในที่สมบูรณ์แบบสุ่ม
ดังต่อไปนี้: 0 ¼ไม่มีการเปลี่ยนแปลงสี 1 ¼สีน้ำตาลแดงแสง
. 2 ¼สีน้ำตาลแดงขนาดกลางและ 3 ¼สีน้ำตาลแดงเข้ม
2.4.5 กรดอะซิติกอินโดล (IAA) การผลิตมันก็ทำตามโปรโตคอลของเสื้อและกลิก (1996) แอคติโนมัยถูกปลูกในน้ำซุปเคซีนแป้งเสริมด้วย L-โพรไบโอ (1 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1) เป็นเวลาสี่วัน ในตอนท้ายของการบ่มเพาะวัฒนธรรมที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่ 10,000? กรัมเป็นเวลา 10 นาทีและ supernatants ที่เก็บรวบรวม หนึ่งมิลลิลิตรกรองวัฒนธรรมนี้ได้รับอนุญาตให้ทำปฏิกิริยากับ 2 มลสาร Salkowsky (1 มิลลิลิตร 0.5MFeCl3 ใน 50 มล. 35% HClO4) วันที่ 28? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ในตอนท้ายของการบ่มการพัฒนาของสีชมพูระบุการปรากฏตัวของIAA ปริมาณ IAA ที่ได้กระทำโดยการวัดการดูดกลืนแสงใน spectrophotometer ที่ 530 นาโนเมตร กราฟมาตรฐานได้รับการวางแผนที่จะวัดปริมาณ IAA (มก. มล. 1) ในปัจจุบันกรองวัฒนธรรม. 2.5 การประเมินผลการ actinomycetes เรือนกระจกภายใต้เงื่อนไขที่ห้ามีศักยภาพมากที่สุดสายพันธุ์ actinomycete ปฏิปักษ์(CAI-24, CAI-121, CAI-127, KAI-32 และ KAI-90) กับฟรีจากการศึกษาในหลอดทดลองได้รับการประเมินเป็นรายบุคคลสำหรับเป็นศัตรูของพวกเขาที่มีศักยภาพในกระถาง ในเรือนกระจก แต่ละแยก actinomycete ได้รับเชื้อโดยห้าวิธีการที่แตกต่างกันกล่าวคือ M1 ¼ของการฉีดวัคซีนผสมปลูกกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้องพร้อมกับฟรีสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด; M2 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดโดยการแช่ในวัฒนธรรม actinomycete นั้นเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M3 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดงอกโดยการแช่ในแต่ละวัฒนธรรม actinomycete เป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M4 ¼ของการฉีดวัคซีนปลูกผสมกับวัฒนธรรม actinomycete ในช่วงเวลาของการหว่านเมล็ด (10 มล. ของดีที่ปลูกวัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ในเมล็ดและปกคลุมด้วยดิน) และการฉีดวัคซีน M5 ¼ของต้นกล้าหลังจากเกิด กับวัฒนธรรม actinomycete (10 มล. ของความเติบโตวัฒนธรรม actinomycete [108 CFU มล. 1] ถูกนำมาใช้ในต้นกล้าหลังจากเกิด) ดังนั้นการรวมกันของแอคติโนมัยสายพันธุ์? ห้าวิธีการฉีดวัคซีนประกอบด้วย 25 อิสระรักษา นอกจากนี้ยังมีเจ็ดการรักษามากขึ้นตามที่ต่างๆควบคุมได้รวมดังนี้การรักษา 26e30: ปลูกผสมเชื้อด้วย actinomycete แต่ละแยกเป็นรายบุคคลสองสัปดาห์ก่อนที่จะหว่านเมล็ด, 31: ผสมปลูกเชื้อเฉพาะกับฟรี 2weeks ก่อนที่จะปลูกและ 32: ส่วนผสมปลูก ได้รับการรักษาเพียงด้วยน้ำ 200 มลฆ่าเชื้อสองสัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด (ลบควบคุม) ทดลองหกซ้ำ. หัวเชื้อฟรีถูกมวลคูณธัญพืชถั่วเขียว (หลากหลายJG-62, สูงไวต่อเชื้อรา Fusarium เหี่ยวได้มาจากพืชตระกูลถั่วกองพยาธิวิทยา ICRISAT) โดยใช้โปรโตคอลของ Gupta et al, (2002) ส่วนผสมหม้อ (800 กรัม) ถูกจัดทำขึ้นโดยการผสมดินสีแดง, สีทรายและปุ๋ยคอกที่ 3: 2: 2 (w / w) andwas เติมเต็มใน 8 นิ้วกระถางพลาสติกตามด้วยการฉีดวัคซีนที่มีเชื้อฟรี (20% ของหม้อน้ำหนัก 200 กรัม หม้อ? 1) ในการรักษา M1, แอคติโนมัยนั้น(ที่ปลูกในน้ำซุปเคซีนแป้งเป็นเวลา 4 วัน) ได้รับเชื้อ (20% ของหม้อน้ำหนัก? หม้อ 200 มล. 1, 108 CFU มล. 1) พร้อมด้วยฟรีในขณะที่ในกระถางการรักษาอื่น ๆ 200 มล. น้ำหมันถูกเพิ่มเข้ามา Inoculumwas ผสมที่มีส่วนผสมหม้อและ potswere ปกคลุมด้วยแผ่นพลาสติก ทั้งการตั้งค่าได้รับการบ่มที่26? 2 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 วันที่จะมีเชื้อรา Fusarium เหี่ยวเงื่อนไขป่วย สองสัปดาห์ต่อมาเมล็ดถั่วเขียวหลากหลาย JG-62 ถูกผิวผ่านการฆ่าเชื้อด้วยสารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 2.5% เป็นเวลา 5 นาทีและล้างด้วยน้ำสะอาดผ่านการฆ่าเชื้อ (8 ครั้ง) เมล็ดผิวฆ่าเชื้อได้รับการรักษาด้วย actinomycetes ที่เกี่ยวข้องและ / หรือฟรี (ตามที่กล่าวไว้ก่อนหน้านี้) หกเมล็ดพันธุ์ดังกล่าวถูกหว่านในกระถางแต่ละคนและหนึ่งสัปดาห์ต่อมาบางตาที่จะเก็บสามต้นกล้า พืชที่ถูกชลประทานทุกๆสองวันมี 20 มล. น้ำกลั่นผ่านการฆ่าเชื้อ อุบัติการณ์ของเชื้อรา Fusarium โรคเหี่ยว (จำนวนพืชแสดงอาการเหี่ยวที่จะรวมจำนวนของพืชในหม้อ) จะถูกบันทึกในวันที่ 5, 10, 15, 20 และ 29 วันหลังหยอดเมล็ด (DAS) นอกจากนี้ประชากร actinomycetes ถูกระบุในวันที่ 29 ในการควบคุมเชิงลบใน actinomycetes ควบคุม (ที่ไม่ได้รับการฉีดวัคซีนฟรี) และการรักษา(ที่ทั้งฟรีและแอคติโนมัยถูกเชื้อ) ในจาน SCA, ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้. 2.6 การประเมินผลของแอคติโนมัยใน Fusarium เหี่ยวสนามป่วยห้าปฏิปักษ์มีศักยภาพมากที่สุดในแอคติโนมัยจากการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อและการศึกษาเรือนกระจกได้รับการประเมินเป็นรายบุคคลต่อศักยภาพเป็นศัตรูของพวกเขาในด้าน Fusarium รบกวนที่ ICRISAT, Patancheru ในระหว่างปี 2009? 10 ฤดูกาลปลูกพืช สนามก็ยังคงเป็นพล็อตเหี่ยวป่วยตั้งแต่ปี 1980 (เน et al., 1981) แต่ละแยก actinomycete ได้รับเชื้อโดยสี่วิธีการที่แตกต่างกันกล่าวคือ. M1 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดโดยการแช่ใน actinomycete แต่ละวัฒนธรรมเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M2 ¼การฉีดวัคซีนของเมล็ดงอกโดยการแช่ในวัฒนธรรม actinomycete นั้นเป็นเวลา 1 ชั่วโมง; M3 ¼การฉีดวัคซีนของดินกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้อง(5 มิลลิลิตรต่อเมล็ด 108 CFU มล. 1) ในช่วงเวลาของการหว่านเมล็ดและM4 ¼ของการฉีดวัคซีน ต้นกล้าหลังจากเกิดกับวัฒนธรรม actinomycete ที่เกี่ยวข้อง (5 มล. ต่อต้นกล้า 108 CFU มล. 1). ดังนั้นการรวมกันของแยก actinomycete? สี่วิธีในการฉีดวัคซีนประกอบด้วย 20 รักษาอิสระนอกเหนือไปจากการควบคุมบวกหนึ่งที่ไม่ได้รับการ actinomycete เชื้อ แต่ละคนได้รับการรักษาที่จำลองแบบสามครั้งในที่สมบูรณ์แบบสุ่ม
การแปล กรุณารอสักครู่..
พวกเขาอยู่บนพื้นฐานของความเข้มของสีน้ำตาลอมแดง )
ดังนี้ 0 ¼ไม่มีเปลี่ยนสี ; 1 ¼อ่อนสีน้ำตาลแดง ;
2 ¼กลางสีน้ำตาลแดง และ 3 ¼เข้ม สีน้ำตาลแดง
2.4.5 . กรดอินโดล ( IAA ) การผลิต
ทำตามโปรโตคอลของแพทเทิร์น และ กลิค ( 1996 )
แอคติโนมัยซีสโตในน้ำซุป , อาหารที่มีแป้ง
- ( 1 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1 ) 4 วันในตอนท้ายของ
ระยะเวลาวัฒนธรรมอยู่ระดับ 10 , 000 G 10 นาที
และ supernatants เก็บ 1 มิลลิลิตรของ culture filtrate คือ
อนุญาตให้ตอบสนองกับ 2 มิลลิลิตร salkowsky Reagent ( 1 มิลลิลิตร 0.5mfecl3
50 ml 35 % hclo4 ) ที่ 28 2 C เป็นเวลา 30 นาที ในตอนท้ายของ
ระยะเวลาการพัฒนาสีชมพู พบการปรากฏตัวของ
เอ .ปริมาณของ IAA ทำได้โดยการวัดการดูดกลืนแสง
ในวัสดุที่ 530 nm . เส้นโค้งมาตรฐานวางแผน
วัด IAA ( มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1 ) ปัจจุบันใน culture filtrate .
2.5 การประเมินผลของแอคติโนมัยซีสภายใต้สภาวะเรือนกระจก
5
( เชื้อแอคติโนมัยซีทปฏิปักษ์ที่มีศักยภาพมากที่สุด cai-24 cai-121 cai-127 kai-32 , , , และฟรีจาก
kai-90 ) กับในหลอดทดลองประเมินจากศักยภาพปฏิปักษ์
ในหม้อในเรือนกระจก แต่ละแยกได้เชื้อแอคติโนมัยซีท
ต่างกัน 5 วิธี ¼ M1
potting ผสมกับเชื้อแอคติโนมัยซีทแต่ละวัฒนธรรมพร้อมกับ
ฟรี 2 สัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด ; การฉีดวัคซีน M2 ¼ของเมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทนั้นๆ 1 H ;
M3 ¼เชื้อของ sprouted เมล็ดโดยแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทแต่ละ
1 h ; ( M4 ¼ของ potting ผสมกับวัฒนธรรม
แอคติโนมัยซีทเวลาหว่าน ( 10 มล.
โตดีแอคติโนมัยซีท 108 CFU ml [ วัฒนธรรม 1 ] ถูกนำไปใช้บน
เมล็ดและปกคลุมด้วยดินและ M5 ¼ใส่ต้นกล้า
หลังงอกกับวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีท ( 10 มล. โตดี
แอคติโนมัยซีท 108 CFU ml [ วัฒนธรรม 1 ] ถูกนำไปใช้บน
ต้นกล้าหลังงอก ) ดังนั้นการรวมกันของเชื้อแอคติโนมัย
ห้าวิธีการรักษาบัญญัติ 25 อิสระ
ยัง มี เจ็ด การรักษาโดยการควบคุมต่าง ๆมีดังนี้ : การรักษา
26e30 : potting ผสมเชื้อแอคติโนมัยซีทแยกทีละสอง
ด้วยละสัปดาห์ก่อนการหว่าน , 31 : potting ผสมหัวเชื้อด้วย
ฟรี 2 ก่อนการหว่านและ 32 : potting ผสมปฏิบัติเท่านั้น
กับ 200 ml ฆ่าเชื้อน้ำ 2 สัปดาห์ก่อนปลูก ( ดิน
) ทดลอง 6 ซ้ำ ฟรี คือ มวลคูณกับ 3
jg-62 ถั่วเขียวเมล็ด ( พันธุ์สูง เสี่ยงต่อการ Fusarium เหี่ยว ที่ได้มาจาก
พืชตระกูลถั่วพยาธิวิทยาดิวิชั่นICRISAT ) โดยใช้โปรโตคอล Gupta
et al . ( 2002 ) ส่วนผสมหม้อ ( 800 กรัม ) เตรียมโดยการผสมดินแดง ,
ทรายและใช้ปุ๋ยคอกที่ 3:2:2 ( w / w ) ดำเนินการกรอก 8 นิ้วกระถางพลาสติก
ตามด้วยการไม่คิดค่าบริการ 3 ( 20% ของหม้อหม้อ
น้ำหนัก 200 กรัม ( 1 ) ในการรักษาตามเชื้อแอคติโนมัยสีท M1
( ปลูกในน้ำซุปตะเข้แป้ง 4 วัน ) ปลูกเชื้อ ( 20% ของน้ำหนักหม้อหม้อ
; 200 ml 1108 CFU / ml 1 ) พร้อมกับฟรีในขณะที่ในการรักษาอื่น ๆหม้อ
200 มล. ของน้ำหมันก็เพิ่ม inoculumwas
ละเอียดผสมกับหม้อส่วนผสมและ potswere
ปกคลุมด้วยแผ่น polythene การตั้งค่าทั้งหมดถูกบ่มที่
26 2 เป็นเวลา 15 วันจะมี Fusarium เหี่ยวสภาพป่วย 2
สัปดาห์ต่อมา เมล็ดของถั่วเขียวพันธุ์ jg-62 ถูกฆ่าเชื้อที่ผิว
2 .5% สารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์เป็นเวลา 5 นาทีและล้างด้วยน้ำที่ผ่านการฆ่าเชื้อ (
8 ครั้ง ) การฟอกฆ่าเชื้อเมล็ด
ถือว่าแอคติโนมัยที่เกี่ยวข้องและ / หรือเสียตามที่กล่าว
ก่อนหน้านี้ ) 6 เมล็ดพันธุ์ดังกล่าวได้ถูกหว่านลงในแต่ละหม้อและหนึ่งสัปดาห์ต่อมา
ขนาดเล็กเพื่อเก็บสามต้น พืชปลูก ทุกๆ
2 วันกับ 20 ml ฆ่าเชื้อน้ำกลั่น อุบัติการณ์ของ Fusarium
โรคเหี่ยว ( จำนวนต้นที่แสดงอาการเหี่ยวจะรวม
จํานวนของพืชในหม้อ ) ถูกบันทึกไว้ในวันที่ 5 , 10 , 15 , 20 และ 30 วัน หลังจากหว่านเมล็ด
( DAS ) นอกจากนี้ แอคติโนมัยซีทจำนวน
ระบุในวันที่ 29 ในความไม่ชอบมาพากลในแอคติโนมัยซีท
ควบคุม ( ที่ไม่ฟรีเป็นเชื้อ ) และในการรักษา
( ซึ่งทั้งสองและปลูกเชื้อแอคติโนมัยซีสฟรี ) บนจาน SCA
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้
2.6 การประเมินเชื้อแอคติโนมัยสีทจาก Fusarium เหี่ยวป่วย
5 สาขาที่มีศักยภาพมากที่สุดในการต่อต้านจากแอคติโนมัย
และเรือนกระจกศึกษาเพิ่มเติม ประเมินจากศักยภาพของเชื้อ Fusarium
Patancheru ICRISAT รบกวนสนาม , ใน 2009 10 ปลูกพืชฤดู สนามคือ
ยังคงเป็น " พล็อตป่วยตั้งแต่ปี 1980 ( Nene et al . ,1981 ) แยกเป็นเชื้อแอคติโนมัยซีทแต่ละ
4 วิธีที่แตกต่างกัน ได้แก่
M1 ¼เชื้อพันธุ์โดยการแช่ในวัฒนธรรมนั้นๆ แอคติโนมัยซีท
1 h ; ( M2 ¼ของ sprouted เมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทนั้นๆ 1 H ;
M3 ¼เชื้อดินกับวัฒนธรรม
แอคติโนมัยซีทแต่ละ ( 5 มล. ต่อเมล็ด 108 CFU / ml 1 ) ในเวลาของการปลูกและ
¼ M4 ใส่ต้นกล้าหลังงอกกับ
วัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทแต่ละ ( 5 มล. ต่อเมล็ด 108 CFU ml 1 ) .
ดังนั้นการรวมกันของเชื้อแอคติโนมัยซีท สี่วิธีการของการรักษาที่ดี
20 อิสระนอกจากนี้หนึ่งบวกควบคุมที่ไม่มีเชื้อแอคติโนมัยซีทคือ . การรักษาเป็นจำนวน 3 ครั้งแต่ละ
ในแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์
ดังนี้ 0 ¼ไม่มีเปลี่ยนสี ; 1 ¼อ่อนสีน้ำตาลแดง ;
2 ¼กลางสีน้ำตาลแดง และ 3 ¼เข้ม สีน้ำตาลแดง
2.4.5 . กรดอินโดล ( IAA ) การผลิต
ทำตามโปรโตคอลของแพทเทิร์น และ กลิค ( 1996 )
แอคติโนมัยซีสโตในน้ำซุป , อาหารที่มีแป้ง
- ( 1 มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1 ) 4 วันในตอนท้ายของ
ระยะเวลาวัฒนธรรมอยู่ระดับ 10 , 000 G 10 นาที
และ supernatants เก็บ 1 มิลลิลิตรของ culture filtrate คือ
อนุญาตให้ตอบสนองกับ 2 มิลลิลิตร salkowsky Reagent ( 1 มิลลิลิตร 0.5mfecl3
50 ml 35 % hclo4 ) ที่ 28 2 C เป็นเวลา 30 นาที ในตอนท้ายของ
ระยะเวลาการพัฒนาสีชมพู พบการปรากฏตัวของ
เอ .ปริมาณของ IAA ทำได้โดยการวัดการดูดกลืนแสง
ในวัสดุที่ 530 nm . เส้นโค้งมาตรฐานวางแผน
วัด IAA ( มิลลิกรัมต่อมิลลิลิตร 1 ) ปัจจุบันใน culture filtrate .
2.5 การประเมินผลของแอคติโนมัยซีสภายใต้สภาวะเรือนกระจก
5
( เชื้อแอคติโนมัยซีทปฏิปักษ์ที่มีศักยภาพมากที่สุด cai-24 cai-121 cai-127 kai-32 , , , และฟรีจาก
kai-90 ) กับในหลอดทดลองประเมินจากศักยภาพปฏิปักษ์
ในหม้อในเรือนกระจก แต่ละแยกได้เชื้อแอคติโนมัยซีท
ต่างกัน 5 วิธี ¼ M1
potting ผสมกับเชื้อแอคติโนมัยซีทแต่ละวัฒนธรรมพร้อมกับ
ฟรี 2 สัปดาห์ก่อนการหว่านเมล็ด ; การฉีดวัคซีน M2 ¼ของเมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทนั้นๆ 1 H ;
M3 ¼เชื้อของ sprouted เมล็ดโดยแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทแต่ละ
1 h ; ( M4 ¼ของ potting ผสมกับวัฒนธรรม
แอคติโนมัยซีทเวลาหว่าน ( 10 มล.
โตดีแอคติโนมัยซีท 108 CFU ml [ วัฒนธรรม 1 ] ถูกนำไปใช้บน
เมล็ดและปกคลุมด้วยดินและ M5 ¼ใส่ต้นกล้า
หลังงอกกับวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีท ( 10 มล. โตดี
แอคติโนมัยซีท 108 CFU ml [ วัฒนธรรม 1 ] ถูกนำไปใช้บน
ต้นกล้าหลังงอก ) ดังนั้นการรวมกันของเชื้อแอคติโนมัย
ห้าวิธีการรักษาบัญญัติ 25 อิสระ
ยัง มี เจ็ด การรักษาโดยการควบคุมต่าง ๆมีดังนี้ : การรักษา
26e30 : potting ผสมเชื้อแอคติโนมัยซีทแยกทีละสอง
ด้วยละสัปดาห์ก่อนการหว่าน , 31 : potting ผสมหัวเชื้อด้วย
ฟรี 2 ก่อนการหว่านและ 32 : potting ผสมปฏิบัติเท่านั้น
กับ 200 ml ฆ่าเชื้อน้ำ 2 สัปดาห์ก่อนปลูก ( ดิน
) ทดลอง 6 ซ้ำ ฟรี คือ มวลคูณกับ 3
jg-62 ถั่วเขียวเมล็ด ( พันธุ์สูง เสี่ยงต่อการ Fusarium เหี่ยว ที่ได้มาจาก
พืชตระกูลถั่วพยาธิวิทยาดิวิชั่นICRISAT ) โดยใช้โปรโตคอล Gupta
et al . ( 2002 ) ส่วนผสมหม้อ ( 800 กรัม ) เตรียมโดยการผสมดินแดง ,
ทรายและใช้ปุ๋ยคอกที่ 3:2:2 ( w / w ) ดำเนินการกรอก 8 นิ้วกระถางพลาสติก
ตามด้วยการไม่คิดค่าบริการ 3 ( 20% ของหม้อหม้อ
น้ำหนัก 200 กรัม ( 1 ) ในการรักษาตามเชื้อแอคติโนมัยสีท M1
( ปลูกในน้ำซุปตะเข้แป้ง 4 วัน ) ปลูกเชื้อ ( 20% ของน้ำหนักหม้อหม้อ
; 200 ml 1108 CFU / ml 1 ) พร้อมกับฟรีในขณะที่ในการรักษาอื่น ๆหม้อ
200 มล. ของน้ำหมันก็เพิ่ม inoculumwas
ละเอียดผสมกับหม้อส่วนผสมและ potswere
ปกคลุมด้วยแผ่น polythene การตั้งค่าทั้งหมดถูกบ่มที่
26 2 เป็นเวลา 15 วันจะมี Fusarium เหี่ยวสภาพป่วย 2
สัปดาห์ต่อมา เมล็ดของถั่วเขียวพันธุ์ jg-62 ถูกฆ่าเชื้อที่ผิว
2 .5% สารละลายโซเดียมไฮโปคลอไรต์เป็นเวลา 5 นาทีและล้างด้วยน้ำที่ผ่านการฆ่าเชื้อ (
8 ครั้ง ) การฟอกฆ่าเชื้อเมล็ด
ถือว่าแอคติโนมัยที่เกี่ยวข้องและ / หรือเสียตามที่กล่าว
ก่อนหน้านี้ ) 6 เมล็ดพันธุ์ดังกล่าวได้ถูกหว่านลงในแต่ละหม้อและหนึ่งสัปดาห์ต่อมา
ขนาดเล็กเพื่อเก็บสามต้น พืชปลูก ทุกๆ
2 วันกับ 20 ml ฆ่าเชื้อน้ำกลั่น อุบัติการณ์ของ Fusarium
โรคเหี่ยว ( จำนวนต้นที่แสดงอาการเหี่ยวจะรวม
จํานวนของพืชในหม้อ ) ถูกบันทึกไว้ในวันที่ 5 , 10 , 15 , 20 และ 30 วัน หลังจากหว่านเมล็ด
( DAS ) นอกจากนี้ แอคติโนมัยซีทจำนวน
ระบุในวันที่ 29 ในความไม่ชอบมาพากลในแอคติโนมัยซีท
ควบคุม ( ที่ไม่ฟรีเป็นเชื้อ ) และในการรักษา
( ซึ่งทั้งสองและปลูกเชื้อแอคติโนมัยซีสฟรี ) บนจาน SCA
ตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้
2.6 การประเมินเชื้อแอคติโนมัยสีทจาก Fusarium เหี่ยวป่วย
5 สาขาที่มีศักยภาพมากที่สุดในการต่อต้านจากแอคติโนมัย
และเรือนกระจกศึกษาเพิ่มเติม ประเมินจากศักยภาพของเชื้อ Fusarium
Patancheru ICRISAT รบกวนสนาม , ใน 2009 10 ปลูกพืชฤดู สนามคือ
ยังคงเป็น " พล็อตป่วยตั้งแต่ปี 1980 ( Nene et al . ,1981 ) แยกเป็นเชื้อแอคติโนมัยซีทแต่ละ
4 วิธีที่แตกต่างกัน ได้แก่
M1 ¼เชื้อพันธุ์โดยการแช่ในวัฒนธรรมนั้นๆ แอคติโนมัยซีท
1 h ; ( M2 ¼ของ sprouted เมล็ด
โดยการแช่ในวัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทนั้นๆ 1 H ;
M3 ¼เชื้อดินกับวัฒนธรรม
แอคติโนมัยซีทแต่ละ ( 5 มล. ต่อเมล็ด 108 CFU / ml 1 ) ในเวลาของการปลูกและ
¼ M4 ใส่ต้นกล้าหลังงอกกับ
วัฒนธรรมแอคติโนมัยซีทแต่ละ ( 5 มล. ต่อเมล็ด 108 CFU ml 1 ) .
ดังนั้นการรวมกันของเชื้อแอคติโนมัยซีท สี่วิธีการของการรักษาที่ดี
20 อิสระนอกจากนี้หนึ่งบวกควบคุมที่ไม่มีเชื้อแอคติโนมัยซีทคือ . การรักษาเป็นจำนวน 3 ครั้งแต่ละ
ในแผนการทดลองแบบสุ่มสมบูรณ์
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- ฉันอยากคุยกับเทอทุกวันๆ
- ผลลัพธ์ (ภาษาอังกฤษ) 3:Can choose the ca
- ฉันได้พบเพื่อนใหม่ๆ
- ช่างเทคนิค
- และเป็นและเป็นอาชีพที่ไม่ใช้ความรุนแรง
- For her to steal my heart away. When she
- Situated
- Simply put, the trader’s goal is to iden
- ต้องวางบิลภายในสิ้นเดือนนี้
- ปัจจัย
- ความคืบหน้าการเร่งแก้ปัญหาชาวโรฮิงญาในปร
- การปลูกหอมแดง
- mention
- ใช่ฉันจะสอนคุณ
- คุณเป็นคนที่น่ารักมาก
- Supplier shall develop and maintain a wa
- person at the
- และได้
- under dictator's government
- Realized that revolution
- อะไรที่ไม่ดีก็ปล่อยไป
- We'll be doing the watermelon game, won'
- New bid to break peace talks stalemate
- ผลลัพธ์ (ภาษาอังกฤษ) 3:Can choose the ca
