Stored samples were analysed for a

Stored samples were analysed for a total plate count (TPC), E.
coli, Vibrio spp., Listeria spp. and Total coliform.
For total plate count, E. coli and total coliform, a 10 g sample
was weighed into a stomacher bag containing 90 ml ringers
solution (Oxoid BR0052) and homogenised using a Lab-blender
400 (Seward Laboratory, London) stomacher for 1 min. Serial
dilutions were prepared using ringers solution and these were
inoculated onto duplicate agar plates. 100 ml of respective
dilutions was inoculated onto the agar plates. Total plate count
was enumerated on Plate Count Agar (PCA–Oxoid CM0325)
incubated at 30 8C for 48 h before counting. E. coli was
enumerated on Eosin Methylene Blue (EMB) agar (Oxoid
CM0069) incubated at 37 8C for 48 h and coliforms were
enumerated on Violet Red Bile Glucose Agar (VRBGA – Oxoid
CM0485) incubated at 37 8C for 24–48 h. In the case of Vibrio spp.,
a 25 g sample was weighed into a stomacher bag containing
225 ml Alkaline Peptone Water (Oxoid CM1028), and homo-
genised using a Lab-blender 400 stomacher for 1 min. The
homogenised sample was incubated at 37 8C for 6 h and then
streaked onto Thiosulphate-Citrate-Bile Salts-Sucrose (TCBS)
agar (Oxoid CM0333) and incubated at 35 8C for 24 h. 10 ml of the
incubated homogenised sample was also transferred into 10 ml
Alkaline Peptone Water and incubated at 41.5 8C for a further
18 h and then streaked on to TCBS agar. The plates were
incubated at 35 8C for 24  2 h before observation.
For Listeria spp., a 25 g sample was weighed into a
stomacher bag containing 225 ml ONE Broth-Listeria (Oxoid
CM1066), supplemented with ONE Broth-Listeria Selective
Supplement (Oxoid SR0234) and then homogenised using a
Lab-blender 400 stomacher for 1 min and then incubated at
30 8C for 24  2 h. After the incubation, a 10 ml of the
homogenate was streaked onto Brilliance Listeria Agar (BLA-
Oxoid CM1080) supplemented with Brilliance Listeria Selective
Supplement (Oxoid SR0227) and Brilliance Listeria Differential
Supplement (Oxoid SR0228). The plates were incubated at
37 8C for 24  2 h. Microbiological analysis was conducted in
triplicates.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างที่เก็บไว้ถูก analysed สำหรับจานรวมนับ (สิ่งทอ), อีcoli ปริมาณวิบริโอ ออลิโอ และโคลิฟอร์มทั้งหมดจำนวนแผ่นทั้งหมด E. coli และโคลิฟอร์ม รวมตัวอย่าง 10 กรัมมีน้ำหนักในกระเป๋าแผงประดับหน้าอกประกอบด้วย ringers 90 mlโซลูชัน (Oxoid BR0052) และใช้ห้องปฏิบัติการเบลนเดอร์ homogenised400 (ห้องปฏิบัติการเวิร์ด ลอนดอน) แผงประดับหน้าอกสำหรับนาที 1 ชุดdilutions ถูกเตรียมการใช้โซลูชัน ringers และคนเหล่านี้inoculated บนแผ่นซ้ำ agar 100 ml ของแต่ละdilutions ถูก inoculated บนแผ่น agar จำนวนแผ่นทั้งหมดถูกระบุบนจานนับ Agar (PCA – Oxoid CM0325)incubated ที่ 8C 30 สำหรับ 48 h ก่อนนับ E. coli ได้ระบุใน agar Eosin บลูเมทิลีนได (EMB) (OxoidIncubated CM0069) ที่ 37 8C สำหรับ 48 h และกำจัดได้ระบุบนม่วงแดงน้ำดีกลูโคส Agar (VRBGA – OxoidIncubated CM0485) ที่ 37 8C ใน 24 – 48 h ในกรณีที่ปริมาณวิบริโอตัวอย่าง 25 กรัมเป็นน้ำหนักในการแผงประดับหน้าอกกระเป๋าประกอบด้วย225 ml น้ำ Peptone ด่าง (Oxoid CM1028), และโฮโมgenised ใช้แผงประดับหน้าอกแล็บเบลนเดอร์ 400 1 นาทีตัวอย่าง homogenised ที่ incubated ที่ 8C 37 สำหรับ 6 h แล้วลายบน Thiosulphate ซิเตรตน้ำดีเกลือซูโครส (TCBS)agar (Oxoid CM0333) และ incubated ที่ 8C 35 สำหรับ 24 h. ml 10 ของการตัวอย่าง homogenised incubated ถูกถ่ายโอนมายังเป็น 10 mlน้ำ Peptone ด่าง และ incubated 41.5 8 C สำหรับเป็น18 h และลายระบบ TCBS agar แล้ว แผ่นได้incubated ที่ 8C 35 สำหรับ 24 2 h ก่อนการสังเกตสำหรับออลิโอ ตัวอย่าง 25 กรัมเป็นน้ำหนักในการประกอบด้วย 225 ml ซุปหนึ่งออลิ (Oxoid กระเป๋าแผงประดับหน้าอกCM1066), เสริม ด้วยมาตรการหนึ่งออลิซุปเสริม (Oxoid SR0234) และ homogenised แล้ว ใช้การห้องปฏิบัติการเบลนเดอร์ 400 แผงประดับหน้าอกใน 1 นาทีแล้ว incubated ที่30 8C สำหรับ 24 2 h หลังจากบ่ม ml 10 ของการhomogenate เป็นลายบนความออลิ Agar (ก้าว-Oxoid CM1080) เสริม ด้วยความออลิเลือกอาหารเสริม (Oxoid SR0227) และแตกต่างกันออลิโชติช่วงผลิตภัณฑ์เสริมอาหาร (Oxoid SR0228) แผ่นก็ incubated ที่37 8C สำหรับ 24 2 h. วิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาได้ดำเนินการในtriplicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างที่เก็บไว้ถูกนำมาวิเคราะห์หาปริมาณจุลินทรีย์ทั้งหมด (RDC), E.
coli, เชื้อ Vibrio spp. Listeria spp และโคลิฟอร์มทั้งหมด.
สำหรับปริมาณจุลินทรีย์ทั้งหมดเชื้อ E. coli และโคลิฟอร์มทั้งหมด, ตัวอย่าง 10 กรัม
ได้รับการชั่งน้ำหนักลงในถุงที่มี Stomacher 90 มลวงจรอุบาทว์
การแก้ปัญหา (Oxoid BR0052) และเข้ากันโดยใช้เครื่องปั่น Lab-
400 (เอิร์ดห้องปฏิบัติการลอนดอน) Stomacher เป็นเวลา 1 นาที อนุกรม
เจือจางได้จัดทำขึ้นโดยใช้วิธีการแก้ปัญหาวงจรอุบาทว์และสิ่งเหล่านี้
เชื้อใส่ลงในจานอาหารเลี้ยงเชื้อซ้ำ 100 มิลลิลิตรตามลำดับ
เจือจางได้รับเชื้อใส่ลงในจานอาหารเลี้ยงเชื้อ ปริมาณจุลินทรีย์ทั้งหมด
ได้รับการแจกแจงในจานนับวุ้น (PCA-CM0325 Oxoid)
บ่มที่อุณหภูมิ 30 8C เวลา 48 ชั่วโมงก่อนที่จะนับ เชื้อ E. coli ถูก
แจกแจงใน Eosin สีน้ำเงิน Methylene (EMB) วุ้น (Oxoid
CM0069) บ่มที่อุณหภูมิ 37 8C เวลา 48 ชั่วโมงและโคลิฟอร์มที่ถูก
ระบุในสีแดงม่วงน้ำดีกลูโคสวุ้น (VRBGA - Oxoid
CM0485) บ่มที่อุณหภูมิ 37 8C สำหรับ 24-48 ชั่วโมง ในกรณีที่เชื้อ Vibrio spp.
ตัวอย่าง 25 กรัมได้รับการชั่งน้ำหนักลงในถุงที่มี Stomacher
225 มล. อัลคาไลน์น้ำเปปโตน (Oxoid CM1028) และ homo-
genised ใช้ Lab-400 เครื่องปั่น Stomacher เวลา 1 นาที
ตัวอย่างปั่นถูกบ่มที่อุณหภูมิ 37 8C เวลา 6 ชั่วโมงและจากนั้น
ลงบนลายไซโอ-Citrate-น้ำดีเกลือ-ซูโครส (TCBS)
วุ้น (Oxoid CM0333) และบ่มที่อุณหภูมิ 35 8C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง 10 มิลลิลิตร
ตัวอย่างปั่นบ่มถูกย้ายยังเป็น 10 มล.
อัลคาไลน์เปปโตนน้ำและบ่มที่อุณหภูมิ 41.5 8C ไปอีก
18 ชั่วโมงแล้วลายเพื่อ TCBS agar แผ่นได้รับการ
บ่มที่อุณหภูมิ 35 8C 24? 2 ชั่วโมงก่อนที่จะสังเกต.
สำหรับ Listeria spp. 25 กรัมชั่งน้ำหนักตัวอย่างเป็น
ถุงที่มี Stomacher 225 มล. น้ำซุป ONE-Listeria (Oxoid
CM1066) เสริมด้วยน้ำซุป ONE-Listeria เลือก
อาหารเสริม (Oxoid SR0234) และเข้ากันแล้วใช้
Lab -blender 400 Stomacher เวลา 1 นาทีแล้วนำไปบ่มที่
30 8C 24? 2 ชั่วโมง หลังจากการบ่ม, 10 มิลลิลิตร
homogenate ถูกลายลงบน Brilliance Listeria วุ้น (BLA-
Oxoid CM1080) เสริมด้วยความสดใส Listeria เลือก
อาหารเสริม (Oxoid SR0227) และความสดใส Listeria Differential
เสริม (Oxoid SR0228) แผ่นบ่มที่อุณหภูมิ
37 8C 24? 2 ชั่วโมง การวิเคราะห์ทางจุลชีววิทยาได้ดำเนินการใน
triplicates

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

วิเคราะห์ตัวอย่างที่เก็บไว้เพื่อตรวจนับจุลินทรีย์ทั้งหมด ( TPC ) E .
( Vibrio spp . , Listeria spp . และโคลิฟอร์มทั้งหมด
นับจุลินทรีย์ทั้งหมด , E . coli และโคลิฟอร์มรวม จำนวน 10 กรัม มีน้ำหนักเป็นแผงประดับหน้าอก
ถุงบรรจุ 90 ml ringers
โซลูชั่น ( oxoid br0052 ) และ homogenised ใช้เครื่องปั่น ห้องปฏิบัติการ
400 ( ซีเวิร์ดห้องปฏิบัติการ , ลอนดอน ) แผงประดับหน้าอกสำหรับอนุกรม
1 นาทีวิธีการเตรียมการใช้โทรศัพท์และโซลูชั่นเหล่านี้ลงบนแผ่นวุ้น
เชื้อซ้ำ 100 มล. เจือจางแต่ละ
เป็นเชื้อลงบนวุ้นแผ่น นับรวมอยู่ในจาน
แจกแจง Planetmath reference ( PCA ) oxoid cm0325 )
บ่มที่อุณหภูมิ 30 8C 48 ชั่วโมงก่อนนับ E . coli คือ
แจกแจงใน eosin เมทธิลีนบลู ( EMB ) ( oxoid
cm0069 ) บ่มที่ 37 8C 48 H และ Coliforms )
ระบุบนอาหารวุ้นกลูโคสม่วงน้ำดี สีแดง ( vrbga – oxoid
cm0485 ) บ่มที่ 37 8C 24 - 48 ชั่วโมง ในกรณีของ Vibrio spp . ,
25 กรัม จำนวนน้ำหนักเป็นถุงบรรจุ 225 ml แผงประดับหน้าอก
( oxoid cm1028 เปปโตนน้ำอัลคาไลน์ ) , และโฮโม -
genised ใช้แล็บปั่น 400 แผงประดับหน้าอก 1 นาที
homogenised ตัวอย่างที่บ่มที่ 37 8C 6 H แล้ว
ลายบนไทโอซัลเฟตซิเตรตน้ำดีเกลือน้ำตาลทราย ( มาตรฐาน )
( oxoid cm0333 ) และบ่มที่อุณหภูมิ 35 8C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง 10 ml ของ
บ่ม homogenised ตัวอย่างก็โอนเข้า 10 ml
ด่างเปปโตนน้ำและอุณหภูมิ 41.5 8C สำหรับอีก
18 ชั่วโมงแล้ว ลายบนมาตรฐานวุ้น จานถูก
บ่มที่อุณหภูมิ 35 8C 24  ก่อนการสังเกต 2 H .
สำหรับ Listeria spp . , 25 กรัม จำนวน 1 ถุง ในประกอบด้วย 225 ml
แผงประดับหน้าอกหนึ่งซุป Listeria ( oxoid
cm1066 ) เสริมด้วยซุป Listeria เลือก
เสริม ( oxoid sr0234 ) แล้ว homogenised ใช้
ปั่นแล็บ 400 แผงประดับหน้าอก 1 นาทีจากนั้นบ่มที่
30 8C 24  2 ชั่วโมงหลังจากระยะเวลา 10 ml ของ
อนเป็นลายบนประกาย Listeria ( บลา -
oxoid cm1080 ) เสริมด้วยประกาย Listeria selective
เสริม ( oxoid sr0227 ) และความหมายแตกต่างกัน Listeria
เสริม ( oxoid sr0228 ) แผ่นอุณหภูมิ
37 8C 24  2 . จุลชีววิทยาวิเคราะห์วัตถุประสงค์
ล้อม .