The first obvious object in leaf explants cultured was the initiation of roots from brown and compact mass of tissue treated by hormone-free (CIM0) in genotype 436. There was not any root initiation in IC genotype leaf explants in similar medium and almost all tissues were necrotized. Figure 3 shows the root initiation was also observed in Hypocotyl explants cultured in both IC and 436 varieties cultured in CIM0.
Table 2-4 show the early results of callus formation from leaf, hypocotyl and cotyledon explants, respectively. All primary parameters of callus formation were observed and calculated were recorded in mentioned tables. Figure 4 shows the callus induction in genotype 436 was significantly more than IC genotype in leaf explants in CIM9 when 0.1 mg L-1 NAA was combined with 1 mg L-1 TDZ. According to the Figure 4, effective culture medium hormone concentrations upon IC leaf explants was CIM8 with 0.1 mg L-1 2, 4-D+1 mg L-1 TDZ but the induced callus masses were compact and unable to form shoot based on results on Table 2. Figure 4 shows the significant callus initiation from cotyledon explants of IC genotype in CIM1 with 0.5 mg L-1 TDZ only as well as callus formation in hypocotyl explants of IC genotype was significant in CIM11. The produced callus inducted by CIM1 in cotyledon explants of IC cultivar was soft and compact callus which was unable for shoot organogenesis. Figure 4 showed callus formation was significantly high in cotyledon and leaf explants of genotype 436 than IC genotype. Callus induction from hypocotyl explants of two sugar beet genotype was almost equal overall. Table 5 shows the mean callus formation in genotype 436 was more than IC overall. According to Table 5, cotyledon and leaf explants of genotype 436 produced more callus than IC genotype but hypocotyl explants of IC produced more callus than genotype 436 overall. Based on observation and early results of Table 2-4, the genotype 436 was more eligible in callus production than IC genotype particularly in cotyledon and leaf explants cultured in vitro. CIM9 was able to induced high amount of competent callus able to produce shoot in leaf explants of genotype 436; therefore this medium was selected as the best growth regulator combination in MS medium for competent callus production in this experiment. Figure 5 shows different types of initiated callus including friable, compact and greenish callus masses.
The effect of hormone concentrations in medium were affected on the number of explants produced callus masses. Figure 6 shows, CIM9, CIM7 and CIM1 were more effective in number of leaf explants produced callus in genotype 436 respectively. In IC genotype CIM8, CIM3 and CIM1 concentration were shown more effective on leaf explants callus formation (Fig. 6). Hypocotyl cultured-explants in IC genotype showed the higher number of callus production in CIM11, CIM12, CIM13 and CIM0. In genotype 436, CIM0 and CIM9 showed the higher number of hypocotyl explants produced callus.
วัตถุชัดเจนครั้งแรกใน explants ใบอ่างเริ่มต้นของรากจากน้ำตาล และกระทัดรัดมวลของเนื้อเยื่อที่รับการรักษา โดยฮอร์โมนฟรี (CIM0) ในลักษณะทางพันธุกรรม 436 ยังไม่มีการเริ่มต้นมีรากใน explants ใบลักษณะทางพันธุกรรม IC ในคล้ายกัน และเนื้อเยื่อเกือบทั้งหมดถูก necrotized รูปที่ 3 แสดงการเริ่มต้นรากยังไม่สังเกตใน explants Hypocotyl อ่างใน IC ทั้งสองอ่างใน CIM0 พันธุ์ 436ตาราง 2-4 แสดงผลต้นกำเนิดแคลลัสจากใบ hypocotyl และต่อ explants ตามลำดับ ตรวจสอบ และคำนวณพารามิเตอร์หลักทั้งหมดของผู้แต่งให้บันทึกในตารางดังกล่าว รูปที่ 4 แสดงการเหนี่ยวนำให้ในลักษณะทางพันธุกรรม 436 ได้อย่างมีนัยสำคัญมากกว่าลักษณะทางพันธุกรรม IC ใน explants ใบใน CIM9 เมื่อมี L-1 NAA 0.1 mg รวมกับ 1 mg TDZ L 1 ตามรูป 4 ความเข้มข้นของฮอร์โมนสื่อวัฒนธรรมมีประสิทธิภาพตาม explants ใบ IC ถูก CIM8 กับ 0.1 mg 2 L-1, 4-D + 1 มิลลิกรัม TDZ L-1 แต่มวลชนอาจให้มีขนาดกะทัดรัด และสามารถยิงแบบฟอร์มที่ยึดตามผลลัพธ์ในตารางที่ 2 รูปที่ 4 แสดงเริ่มต้นอย่างมีนัยสำคัญให้จาก explants ต่อลักษณะทางพันธุกรรม IC ใน CIM1 กับ 0.5 มิลลิกรัม TDZ L-1 เท่านั้นเป็นผู้แต่งให้ใน hypocotyl explants ของ IC ลักษณะทางพันธุกรรมสำคัญใน CIM11 แคลลัสผลิตที่ได้รับเข้า โดย CIM1 ใน explants ต่อของ IC cultivar ให้นุ่ม และกระชับซึ่งการเกิดของอวัยวะยิงไม่ได้ รูปที่ 4 แสดงให้เห็นว่า ให้ก่อตัวได้สูงมากใน explants ต่อและใบไม้ของลักษณะทางพันธุกรรม 436 กว่า IC ลักษณะทางพันธุกรรม เหนี่ยวนำแคลลัสจาก hypocotyl explants ของสองนทานลักษณะทางพันธุกรรมถูกเกือบเท่าโดยรวม ตาราง 5 แสดงการก่อตัวให้หมายถึงในลักษณะทางพันธุกรรม 436 เป็น IC โดยรวมมากกว่า ตามตาราง 5, explants ต่อและใบไม้ของลักษณะทางพันธุกรรม 436 ผลิตให้มากขึ้นกว่าลักษณะทางพันธุกรรม IC แต่ explants hypocotyl ของ IC ผลิตให้มากขึ้นกว่าลักษณะทางพันธุกรรมโดยรวม 436 ขึ้นอยู่กับการสังเกตและช่วงผลลัพธ์ของตาราง 2-4 ลักษณะทางพันธุกรรม 436 ได้เพิ่มสิทธิ์ในการผลิตแคลลัสกว่า IC ลักษณะทางพันธุกรรมโดยเฉพาะอย่างยิ่งใน explants ใบและต่ออ่างในหลอด CIM9 ได้จำนวนสูงอาจสามารถผลิตยิงใน explants ใบของลักษณะทางพันธุกรรม 436 ให้เชี่ยวชาญ สื่อประเภทนี้จึง ถูกเลือกเป็นชุดควบคุมเจริญเติบโตดีใน MS สำหรับการผลิตแคลลัสที่มีอำนาจในการทดลองนี้ รูปที่ 5 แสดงชนิดต่าง ๆ ของแคลลัสที่ริเริ่มรวมทั้งแคลลัส friable ขนาดกะทัดรัด และลูกฝูงผลของฮอร์โมนที่ความเข้มข้นในระดับปานกลางได้รับผลกระทบจำนวน explants ผลิตให้มวลชน รูปที่ 6 แสดง CIM9, CIM7 และ CIM1 มีประสิทธิภาพจำนวนให้ผลิต explants ใบในลักษณะทางพันธุกรรม 436 ตามลำดับ ใน IC ลักษณะทางพันธุกรรม CIM8, CIM3 และ CIM1 ความเข้มข้นที่แสดงมีประสิทธิภาพมากขึ้นในใบ explants ก่อแคลลัส (Fig. 6) Hypocotyl อ่าง-explants ใน IC ลักษณะทางพันธุกรรมแสดงให้เห็นว่าจำนวนผลิตให้สูงขึ้นใน CIM11, CIM12, CIM13 และ CIM0 ในลักษณะทางพันธุกรรม 436, CIM0 และ CIM9 พบจำนวน hypocotyl explants สูงผลิตแคลลัส
การแปล กรุณารอสักครู่..

วัตถุที่เห็นได้ชัดเป็นครั้งแรกในใบชิ้นเลี้ยงเป็นการเริ่มต้นของรากจากมวลสีน้ำตาลและมีขนาดกะทัดรัดของเนื้อเยื่อรับการรักษาโดยฮอร์โมนฟรี (CIM0) ในจีโนไทป์ 436. ไม่มีการเริ่มต้นรากใด ๆ ใน IC ชิ้นใบจีโนไทป์อยู่ในขนาดกลางและเนื้อเยื่อที่คล้ายกันเกือบทั้งหมด ถูก necrotized รูปที่ 3 แสดงให้เห็นถึงการเริ่มต้นรากนอกจากนี้ยังพบว่าในชิ้น hypocotyl เลี้ยงทั้งในและ IC 436 สายพันธุ์ที่เพาะเลี้ยงใน CIM0. ตารางที่ 2-4 แสดงผลในช่วงต้นของการสร้างแคลลัสจากใบ hypocotyl และใบเลี้ยงชิ้นตามลำดับ พารามิเตอร์หลักทั้งหมดของการสร้างแคลลัสถูกตั้งข้อสังเกตและการคำนวณที่ถูกบันทึกไว้ในตารางที่กล่าวถึง รูปที่ 4 แสดงให้เห็นถึงการเหนี่ยวนำแคลลัสในจีโนไทป์ 436 อย่างมีนัยสำคัญมากกว่าจีโนไทป์ IC ในชิ้นใบใน CIM9 เมื่อ 0.1 มก. L-1 NAA รวมกับ 1 มิลลิกรัม L-1 TDZ ตามรูปที่ 4 วัฒนธรรมที่มีประสิทธิภาพความเข้มข้นของฮอร์โมนกลางเมื่อ IC ใบชิ้นเป็น CIM8 0.1 มก. L-1 2, 4-D + 1 มิลลิกรัม L-1 TDZ แต่ฝูงแคลลัสเกิดมีขนาดกะทัดรัดและสามารถที่จะสร้างยิงบนพื้นฐานของผล ในตารางที่ 2 รูปที่ 4 แสดงให้เห็นถึงการเริ่มต้นแคลลัสมีนัยสำคัญจากชิ้นใบเลี้ยงของยีนใน IC CIM1 0.5 มก. L-1 TDZ เพียงเช่นเดียวกับการสร้างแคลลัสในชิ้น hypocotyl ของจีโนไทป์ IC อย่างมีนัยสำคัญใน CIM11 แคลลัสที่ผลิตโดยแต่งตั้ง CIM1 ในชิ้นใบเลี้ยงของพันธุ์ IC เป็นแคลลัสที่อ่อนนุ่มและมีขนาดกะทัดรัดซึ่งก็ไม่สามารถที่สำหรับการถ่ายอวัยวะ รูปที่ 4 แสดงให้เห็นว่าการสร้างแคลลัสอย่างมีนัยสำคัญในระดับสูงในใบเลี้ยงใบและชิ้นส่วนของจีโนไทป์ 436 กว่าจีโนไทป์ IC การเหนี่ยวนำแคลลัสจากชิ้น hypocotyl สองจีโนไทป์น้ำตาลหัวผักกาดโดยรวมเท่ากับเกือบ ตารางที่ 5 แสดงให้เห็นถึงการสร้างแคลลัสเฉลี่ยในจีโนไทป์ 436 เป็นมากกว่า IC โดยรวม ตามตารางที่ 5, ใบเลี้ยงใบและชิ้นส่วนของยีนที่ผลิต 436 แคลลัสมากกว่าจีโนไทป์ IC แต่ hypocotyl ชิ้นส่วนของ IC ผลิตแคลลัสมากกว่า 436 พันธุ์โดยรวม ขึ้นอยู่กับผลการสังเกตและการเริ่มต้นของตาราง 2-4 จีโนไทป์ 436 มีคุณสมบัติที่เหมาะสมในการผลิตมากขึ้นกว่าแคลลัสจีโนไทป์ IC โดยเฉพาะอย่างยิ่งในชิ้นใบเลี้ยงและใบที่เพาะเลี้ยงในหลอดทดลอง CIM9 ก็สามารถที่จะเหนี่ยวนำจำนวนเงินที่สูงของแคลลัสที่มีอำนาจสามารถที่จะผลิตถ่ายในใบชิ้นส่วนของจีโนไทป์ 436; จึงสื่อนี้ได้รับเลือกเป็นชุดควบคุมการเจริญเติบโตที่ดีที่สุดในสูตร MS สำหรับการผลิตแคลลัสที่มีอำนาจในการทดลองนี้ รูปที่ 5 แสดงให้เห็นถึงความแตกต่างของแคลลัสเริ่มต้นรวมทั้งเปราะขนาดกะทัดรัดและฝูงแคลลัสสีเขียว. ผลของความเข้มข้นของฮอร์โมนในระยะกลางได้รับผลกระทบกับจำนวนของชิ้นส่วนที่ผลิตฝูงแคลลัส รูปที่ 6 แสดง CIM9, CIM7 CIM1 และมีประสิทธิภาพมากขึ้นในจำนวนของชิ้นส่วนใบที่ผลิตแคลลัสในจีโนไทป์ 436 ตามลำดับ ในจีโนไทป์ IC CIM8, CIM3 และความเข้มข้น CIM1 ที่มีการแสดงที่มีประสิทธิภาพมากขึ้นในการสร้างชิ้นส่วนใบแคลลัส (รูปที่. 6) hypocotyl เลี้ยง-ชิ้นในจีโนไทป์ IC แสดงให้เห็นว่าจำนวนที่สูงขึ้นของการผลิตแคลลัสใน CIM11, CIM12, CIM13 และ CIM0 ในจีโนไทป์ 436, CIM0 CIM9 และแสดงให้เห็นว่าจำนวนที่สูงขึ้นของชิ้นส่วน hypocotyl ผลิตแคลลัส
การแปล กรุณารอสักครู่..
