27◦C (temperature of larviculture t

27◦C (temperature of larviculture tanks at the stocking of the trial)to the temperature corresponding to each treatment at 1◦C/h.In the first trial, all of the experimental units were filled with15 L of biofloc-rich water obtained from a Litopenaeus vannameigrow-out study in nine 35 m3tanks and 135 L of sand filtered natu-ral seawater treated with a chlorine solution (10 ppm measuredimmediately after chlorination) and dechlorinated using ascor-bic acid powder (1 ppm). Dechlorinated municipal freshwater wasused to compensate for evaporative losses and to maintain salinitythroughout the experimental period.Molasses was added as an organic carbon source when the totalammonia levels reached 0.5 mg L−1, aiming the development of themicrobial aggregates. The supplementation of organic carbon wasbased on the addition of 6 g of carbon for each 1 g of total ammo-nium nitrogen (TAN) in the water. This procedure followed themethods described by Avnimelech (2009), Ebeling et al. (2006) andSamocha et al. (2007).The shrimp were fed a 40% crude protein (CP) commercial diet(Potimar 40 J, Guabi®, Brazil) three times a day (0800, 1200 and1800 h). Feeding rates were 100% of shrimp biomass during 7 days,80% of biomass from the 7th to the 14th day, 60% of biomass fromthe 14th to 21st day and 40% of biomass from the 21st day to theend of the experimental period, according to the methodology usedby Ballester et al. (2007).At the end of the nursery study, shrimp were counted, weighedand then restocked at 100 shrimp m−2in the same experimentalunits that were previously used, which began the 15-day compen-satory growth study (Trial 2). The shrimp were acclimated at thesame rate used in Trial 1 from each temperature tested during thenursery phase to 30◦C. This temperature was maintained through-out the experimental period. Thus, the treatments of Trial 2 werenamed: 21◦C (30◦C), 24◦C (30◦C), 27◦C (30◦C), 30◦C (30◦C) and33◦C (30◦C), with five replicates each. The 0.49 m2tanks were filledwith 112.5 L of biofloc-rich water used in the preceding nurserystudy and 37.5 L natural seawater filtered and treated as describedfor Trial 1. The shrimp were fed a 38% CP commercial feed (Poti-mar Active 38, Guabi®, Brazil) three times a day (0800, 1200 and1800 h). The daily feeding rate was adapted from Jory et al. (2001),using 40% of shrimp biomass in the treatment 21◦C (30◦C), 35% in24◦C (30◦C), 30% in 27◦C (30◦C) and 25% in the treatments 30◦C(30◦C) and 33◦C (30◦C) during 7 days. From the 7th to the 14thday the feeding rates were 35% of shrimp biomass in the treatment21◦C (30◦C), 30% in 24◦C (30◦C), 25% in 27◦C (30◦C) and 20% inthe treatments 30◦C (30◦C) and 33◦C (30◦C).2.3. Growth performance and survivalIn both trials, 50 shrimp were randomly sampled weekly fromeach tank and individually weighed to the nearest 0.01 g. At the endof each trial, the growth performance of F. brasiliensis was evaluatedby the final weight (g), weight gain (g), weekly growth (g week−1),survival (%) and yield (g m−2). In addition, the specific growth rate(SGR; %) was calculated in Trial 2.2.4. Water qualityDissolved oxygen (DO), temperature and pH were measuredtwice daily (0800 and 1700 h) using a YSI 556 MPS meter (YSIInc., Yellow Springs, United States). Total ammonium nitrogen(TAN) (UNESCO, 1983) and nitrite-nitrogen (NO2-N) (Aminot andChaussepied, 1983) were measured twice a week. Weekly mea-surements included salinity (using a manual optical refractometer),nitrate-nitrogen (NO3-N) (Aminot and Chaussepied, 1983), totalsuspended solids (TSS) (Strickland and Parsons, 1972) and alka-linity (APHA, 1998).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

27◦C (อุณหภูมิของถัง larviculture ที่เก็บสต็อกที่ทดลอง) กับอุณหภูมิ ที่สอดคล้องกับแต่ละทรีทเม้นต์ที่ 1◦C/h.In ทดลองแรก หน่วยทดลองทั้งหมดถูกเติม L with15 biofloc อุดมไปด้วยน้ำที่ได้รับจากการศึกษา vannameigrow ออก Litopenaeus m3tanks 35 เก้า และ L 135 ทรายกรอง ral สถานที่สวยงามทะเลถือว่า มีการแก้ไขปัญหาคลอรีน (measuredimmediately 10 ppm หลังจากคลอรีน) และ dechlorinated ใช้ผงกรด ascor-bic (1 ppm) Dechlorinated เทศบาลปลา wasused เพื่อชดเชยสำหรับการขาดทุนทำลม และรักษา salinitythroughout ระยะเวลาทดลอง มีเพิ่มกากน้ำตาลเป็นแหล่งคาร์บอนอินทรีย์เมื่อระดับ totalammonia 0.5 mg L−1 มีเป้าหมายการพัฒนาของผล themicrobial แห้งเสริมของ wasbased อินทรีย์คาร์บอนในแห่ง 6 กรัมของคาร์บอนสำหรับแต่ละ 1 g ของไนโตรเจนรวมกระสุน-nium (TAN) ในน้ำ Themethods ตามขั้นตอนนี้อธิบายไว้ โดย Avnimelech (2009), Ebeling et al. al. et andSamocha (2006) (2007) กุ้งได้รับ 40% โปรตีนหยาบ (CP) อาหารทางการค้า (Potimar 40 J, Guabi ® บราซิล) วัน (0800, 1200 and1800 h) อาหารราคาถูก 100% ของชีวมวลกุ้งในระหว่างวันที่ 7, 80% ของชีวมวลจาก 7 เป็น 14 วัน 60% ของชีวมวลจาก 14-21 วันและ 40% ของชีวมวลจากวัน 21 ไป theend ระยะทดลอง ตาม usedby วิธี Ballester et al. (2007) จบการศึกษาเรือนเพาะชำ กุ้งนับได้ weighedand แล้วฉันทที่กุ้ง 100 m−2in เดียวกัน experimentalunits ที่ก่อนหน้านี้ใช้ เริ่มต้นการศึกษาการเจริญเติบโต 15 วัน compen satory (ทดลอง 2) กุ้งได้ acclimated ที่อัตราเดียวกันที่ใช้ในการทดลอง 1 จากแต่ละอุณหภูมิที่ทดสอบระยะ thenursery กับ 30◦C อุณหภูมินี้ที่รักษาโดยออกระยะเวลาทดลอง จึง รักษา werenamed ทดลอง 2: 21◦C (30◦C), 24◦C (30◦C), 27◦C (30◦C), 30◦C and33◦C (30◦C) (30◦C), มีห้าเหมือนกับแต่ละ 0.49 m2tanks มี filledwith 112.5 L biofloc รวยน้ำใช้ใน nurserystudy และ 37.5 L ข้างทะเลธรรมชาติกรอง และถือว่าเป็น describedfor 1 ทดลอง กุ้งได้รับ 38% CP ค้าอาหาร (Poti-มี.ค.งาน 38, Guabi ® บราซิล) วัน (0800, 1200 and1800 h) ทุกวันให้อาหารอัตราถูกดัดแปลงจาก Jory et al. (2001), ใช้ 40% ของชีวมวลกุ้ง 21◦C รักษา (30◦C), 35% in24◦C (30◦C), 30% ใน 27◦C (30◦C) และ 25% ในการรักษา 30◦C(30◦C) และ 33◦C (30◦C) ในระหว่าง 7 วัน จาก 7 ไป 14thday ราคาอาหารได้ 35% ของกุ้งชีวมวลในการ treatment21◦C (30◦C), 30% ใน 24◦C (30◦C), 25% ใน 27◦C (30◦C) และ 20% ในการรักษา 30◦C (30◦C) และ 33◦C (30◦C) .2.3 ประสิทธิภาพการเจริญเติบโตและ survivalIn ทั้งสองการทดลอง กุ้ง 50 ถูกสุ่มตัวอย่างถัง fromeach รายสัปดาห์ และน้ำหนักแต่ละไป 0.01 g ที่ endof แต่ละทดลอง ประสิทธิภาพการเจริญเติบโตของ F. brasiliensis ถูก evaluatedby น้ำหนักสุดท้าย (g), น้ำหนักกำไร (g), เจริญเติบโตทุกสัปดาห์ (g week−1), อยู่รอด (%) และผลผลิต (g m−2) นอกจากนี้ มีคำนวณอัตราการเติบโตเฉพาะ (SGR %) ในทดลอง 2.2.4 น้ำออกซิเจน qualityDissolved (โด), อุณหภูมิ และ pH measuredtwice ทุกวัน (h 0800 และ 1700) โดยใช้เครื่องวัด YSI 556 MPS (YSIInc สปริงสีเหลือง สหรัฐอเมริกา) รวมแอมโมเนีย nitrogen(TAN) (ยูเนสโก 1983) และไนไตรต์ไนโตรเจน (NO2-N) (Aminot andChaussepied, 1983) ที่วัดสองครั้งต่อสัปดาห์ Surements mea รายสัปดาห์รวมเค็ม (ใช้ refractometer แบบออปติคอลด้วยตนเอง), ไนเตรตไนโตรเจน (NO3-N) (Aminot และ Chaussepied, 1983), totalsuspended ของแข็ง (TSS) (Strickland และพาร์สันส์ 1972) และอัล-linity (อาภา 1998)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

27◦C (อุณหภูมิของรถถังอนุบาลปลาวัยอ่อนที่ปล่อยของการพิจารณาคดี) กับอุณหภูมิที่สอดคล้องกับการรักษาแต่ละ1◦C / h.In พิจารณาคดีครั้งแรกทุกหน่วยการทดลองที่เต็มไป with15 L biofloc น้ำที่อุดมไปด้วยที่ได้รับจาก การศึกษาแวนนา vannameigrow ออกในเก้า 35 m3tanks และ 135 ลิตรทรายกรอง Natu-RAL น้ำทะเลรับการรักษาด้วยวิธีการแก้ปัญหาคลอรีน (10 ppm measuredimmediately หลังจากคลอรีน) และฆ่าเชื้อด้วยคลอรีนผงโดยใช้กรด ascor-BIC (1 ppm) เทศบาลน้ำจืดฆ่าเชื้อด้วยคลอรีน wasused เพื่อชดเชยผลขาดทุนระเหยและเพื่อรักษา salinitythroughout period.Molasses ทดลองเพิ่มเป็นแหล่งสารอินทรีย์คาร์บอนเมื่อระดับ totalammonia ถึง 0.5 มก. L-1, เล็งพัฒนาของมวลรวม themicrobial เสริมอินทรีย์คาร์บอนใน wasbased นอกเหนือจาก 6 กรัมของคาร์บอนสำหรับแต่ละ 1 กรัมไนโตรเจนกระสุน-เนียมรวม (TAN) ในน้ำ ขั้นตอนนี้ themethods ตามที่อธิบายไว้โดย Avnimelech (2009), Ebeling et al, (2006) andSamocha et al, (2007) กุ้งได้โดยเริ่มต้นได้รับการเลี้ยงดู 40% โปรตีน (CP) อาหารเชิงพาณิชย์ (Potimar 40 เจGuabi®, บราซิล) วันละสามครั้ง (0800, 1200 and1800 เอช) อัตราการให้อาหารเป็น 100% ของมวลชีวภาพกุ้งในช่วง 7 วัน 80% ของชีวมวลจาก 7 วันที่ 14, 60% ของชีวมวล fromthe 14 ถึงวันที่ 21 และ 40% ของชีวมวลจากวันที่ 21 ที่จะ TheEnd ของระยะเวลาการทดลองตาม วิธีการที่จะ use​​dby Ballester et al, (2007) ในตอนท้ายของการศึกษาสถานรับเลี้ยงเด็กกุ้งนับ weighedand เสริมแล้วที่ 100 กุ้งม 2in experimentalunits เดียวกันกับที่ถูกนำมาใช้ก่อนหน้านี้ซึ่งเริ่มการศึกษาการเจริญเติบโต compen-Satory 15 วัน (Trial 2) กุ้งถูกปรับในอัตรา thesame ที่ใช้ในการทดลองได้ 1 จากอุณหภูมิในแต่ละการทดสอบในระหว่างขั้นตอนการ30◦C thenursery อุณหภูมินี้ก็ยังคงผ่านออกระยะเวลาการทดลอง ดังนั้นการรักษาของการทดลอง 2 werenamed นี้: 21◦C (30◦C) 24◦C (30◦C) 27◦C (30◦C) 30◦C (30◦C) and33◦C (30◦ C) กับห้าซ้ำแต่ละ 0.49 m2tanks เป็น filledwith 112.5 ลิตรน้ำที่อุดมไปด้วย biofloc ใช้ใน nurserystudy ก่อนหน้าและ 37.5 ลิตรน้ำทะเลธรรมชาติกรองและถือว่าเป็นทดลอง describedfor 1. กุ้งเป็นอาหาร 38% CP ฟีดในเชิงพาณิชย์ (โปร์ที่ใช้งาน 38, Guabi®, บราซิล) วันละสามครั้ง (0800, 1200 and1800 เอช) อัตราการให้อาหารในชีวิตประจำวันได้รับการดัดแปลงมาจากรีเอตอัล (2001) โดยใช้ 40% ของมวลชีวภาพกุ้งในการรักษา21◦C (30◦C) 35% in24◦C (30◦C) 30% ใน27◦C (30◦C) และ 25% ในการรักษา 30◦C (30◦C) และ33◦C (30◦C) ในระหว่าง 7 วัน จาก 7 ไป 14thday อัตราการให้อาหาร 35% ของน้ำหนักกุ้งในtreatment21◦C (30◦C) 30% ใน24◦C (30◦C) 25% ใน27◦C (30◦C) และ 20% inthe การรักษา30◦C (30◦C) และ33◦C (30◦C) .2.3 การเจริญเติบโตและ survivalIn ทดลองทั้ง 50 กุ้งสุ่มถัง fromeach รายสัปดาห์และรายบุคคลที่จะชั่งน้ำหนัก 0.01 กรัมที่ใกล้ที่สุด ที่ endof แต่ละการทดลองประสิทธิภาพการเจริญเติบโตของเอฟหลอกลวงเป็น evaluatedby น้ำหนักสุดท้าย (ช) การเพิ่มของน้ำหนัก (ช) การเจริญเติบโตรายสัปดาห์ (g สัปดาห์ 1) การอยู่รอด (%) และผลผลิต (GM-2) นอกจากนี้อัตราการเจริญเติบโตที่เฉพาะเจาะจง (SGR;%) ได้รับการคำนวณในการทดลอง 2.2.4 ออกซิเจนน้ำ qualityDissolved (DO) อุณหภูมิและพีเอชที่ถูก measuredtwice ทุกวัน (0800 และ 1700 เอช) ใช้ YSI MPS 556 เมตร (YSIInc. สีเหลืองสปริงส์, สหรัฐอเมริกา) แอมโมเนียไนโตรเจนรวม (TAN) (ยูเนสโก 1983) และไนไตรท์ไนโตรเจน (NO2-N) (Aminot andChaussepied, 1983) วัดสองครั้งต่อสัปดาห์ กฟน-surements รายสัปดาห์รวมถึงความเค็ม (โดยใช้เครื่องวัดแสงด้วยตนเอง) ไนเตรทไนโตรเจน (NO3-N) (Aminot และ Chaussepied, 1983) ของแข็ง totalsuspended (TSS) (Strickland และพาร์สันส์, 1972) และ Alka-linity (APHA 1998 )

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

27 ◦ C ( อุณหภูมิของถัง larviculture ที่หนาแน่นของการทดลอง ) อุณหภูมิที่สอดคล้องกับแต่ละทรีทเมนต์ที่ 1 ◦ C / h.in ทดลองแรกทุกหน่วยทดลองเติมน้ำ with15 l biofloc รวยได้จากง vannameigrow ออกมาศึกษาในเก้า 35 m3tanks และ 135 ชั้นทรายกรอง Natu RAL น้ำทะเลรักษาด้วยสารละลายคลอรีน 10 ส่วนในล้านส่วน measuredimmediately หลังจากคลอรีน ) และ dechlorinated โดยใช้กรดผง ascor BIC ( 1 ppm )dechlorinated เทศบาลน้ำจืดและชดเชยความเสียหาย การระเหยและการรักษา salinitythroughout ระยะเวลาทดลอง กากน้ำตาล ได้เพิ่มเป็นแหล่งคาร์บอนอินทรีย์เมื่อระดับ totalammonia ถึง 0.5 mg L − 1 การพัฒนาของ themicrobial มวลรวมเล็งเสริมอินทรีย์คาร์บอนจากนอกเหนือจาก 6 กรัมของคาร์บอนในแต่ละ 1 กรัมไนโตรเจนทั้งหมดของกระสุน Condo ( Tan ) ในน้ำ ขั้นตอนนี้ตามวิธีการที่อธิบายโดย avnimelech ( 2009 ) , เอเบอลิ่ง et al . ( 2006 ) andsamocha et al . ( 2550 ) . กุ้งได้รับ 40% โปรตีน ( CP ) อาหารเชิงพาณิชย์ ( potimar 40 J , guabi ® , บราซิล ) วันละ 3 ครั้ง ( 0800 , 1200 and1800 H )อัตราการให้อาหารกุ้ง 100% ของชีวมวลใน 7 วัน , 80% ของชีวมวลจาก 7 ถึง 14 วัน , 60% ของชีวมวลจาก 14 ถึง 21 วัน และ 40 เปอร์เซ็นต์ของชีวมวลจากวันที่ 21 ปลายระยะเวลาการทดลองตามวิธีการ usedby ballester et al . ( 2550 ) . ในตอนท้ายของการอนุบาลศึกษา กุ้งถูกนับweighedand แล้ว restocked 100 m − 2in กุ้งที่ experimentalunits เดียวกันที่ถูกใช้ก่อนหน้านี้ ซึ่งเริ่มวันที่ 15 satory มีระบบชดเชยการศึกษา ( การทดลองที่ 2 ) กุ้งเป็น acclimated ในอัตราเดียวกันที่ใช้ในการทดลองที่ 1 จากการทดสอบในแต่ละอุณหภูมิ thenursery ระยะ 30 ◦ C อุณหภูมินี้ไว้ตลอดระยะเวลาทดลอง ดังนั้น การรักษาของการทดลองที่ 2 werenamed :21 ◦ C ( 30 ◦ C ) , 24 ◦ C ( 30 ◦ C ) , 27 ◦ C ( 30 ◦ C ) 30 ◦ C ( 30 ◦ C ) and33 ◦ C ( 30 ◦ C ) มี 5 ซ้ำ ที่ 0.49 m2tanks ถูกผสม 112.5 l biofloc น้ำรวยใช้ในภาคอุตสาหกรรม nurserystudy 37.5 ผมธรรมชาติและน้ำทะเลกรอง และถือว่าเป็น describedfor ทดลอง 1 กุ้งที่ได้รับอาหารโปรตีนอาหารสัตว์ 38% พาณิชย์ ( โปตีมี.ค. งาน 38 , guabi ® , บราซิล ) วันละ 3 ครั้ง ( 0800 ,1200 and1800 H ) อัตราให้อาหารทุกวัน ปรับจอรี่และคนอื่นๆ ( 2001 ) , การใช้ชีวมวล 40% ของกุ้งในการรักษา 21 ◦ C ( 30 ◦ C ) 35% in24 ◦ C ( 30 ◦ C ) 30% ใน 27 ◦ C ( 30 ◦ C ) และ 25% ในการรักษา 30 ◦ C ( 30 ◦ C ) และ 33 ◦ C ( 30 ◦ C ) ในช่วง 7 วัน จาก 7 ไป 14thday ให้อาหารเป็นกุ้งอัตรา 35% ของชีวมวลใน treatment21 ◦ C ( 30 ◦ C ) 30% ใน 24 ◦ C ( 30 ◦ C )25% ใน 27 ◦ C ( 30 ◦ C ) และ 20% ในการรักษา 30 ◦ C ( 30 ◦ C ) และ 33 ◦ C ( 30 ◦ C ) 2.3 การเจริญเติบโตและ survivalin ทั้งการทดลองสุ่มเก็บตัวอย่างกุ้ง 50 รายสัปดาห์ของถังและแบบหนักไปที่ 0.01 กรัม เมื่อสิ้นแต่ละการทดลอง , การเจริญเติบโตของ F . ธรรมคือ evaluatedby น้ำหนักสุดท้าย ( กรัม ) น้ำหนัก ( กรัม ) ( กรัมต่อสัปดาห์สัปดาห์− 1 )การอยู่รอด ( % ) และผลผลิต ( g m − 2 ) นอกจากนี้ อัตราการเจริญเติบโตจำเพาะ ( SGR ; % ) คำนวณได้ในการทดลอง 2.2.4 . น้ำ qualitydissolved ออกซิเจน ( DO ) อุณหภูมิและ pH เท่ากับ measuredtwice ทุกวัน ( 0800 1700 และ H ) โดยใช้ ysi มีส.ส. เมตร ( ysiinc . สีเหลือง , สปริง , สหรัฐอเมริกา ) ไนโตรเจนแอมโมเนียรวม ( ตัน ) ( UNESCO , 1983 ) และไนไตรท์ ( no2-n ) ( andchaussepied aminot ,1983 ) มีการวัดสองครั้งต่อสัปดาห์ รายสัปดาห์ กฟน. รวม surements ความเค็มโดยใช้คู่มือแสง Refractometer ) ไนเตรท ( no3-n ) ( aminot และ chaussepied , 1983 ) , totalsuspended ของแข็ง ( Strickland และพาร์สัน , 1972 ) และ alka linity ( apha , 1998 )