3. Results
3.1. General behavior
In general, P. hypophthalmus showed high levels of swimming activity
and were rarely observed stationary in the water column. This species is
known to be sensitive to disturbance, with vigorous swimming and
escape behavior after even the slightest stimulus. Surfacing and air-gulping
were observed infrequently. Young fish (up to 150 g) had a
tendency to surface synchronously in large groups. During air-breathing,
the fish would swim towards the surface at an angle of approximately
45° and, after surfacing where the breathing cycle seemed to be rapidly
completed, turn quickly to submerge. Air bubbles were occasionally seen
to be expelled through the gill slits during the descent from the surface.
When confined in a respirometer without access to air, the fish were
generally agitated for the first hour exhibiting pronounced gill
ventilation. Following this initial period, the fish continued to show
regular bouts of spontaneous activity interspersed with quiescence, even
after many hours in the respirometer. The fish continued to be sensitive
to disturbance, for instance, when the flush pump had to be turned off
during measurement of Pcrit. It was therefore important that human
disturbancewas eliminated duringmeasurement and that the laboratory
was completely undisturbed during this time. The fish seemed to be less
sensitive and calmer in a respirometer where access to air was allowed.
3.2. Forced submergence
When denied access to air in normoxic water, the fish initially made
vigorous attempts to surface, but this behavior subsided within the first
2 h. Swimming movements appeared slower after the first 2 days, and
the fish responded less to disturbance after 4–5 days. At that time, all
submerged fish exhibited intensive gill ventilation. The fish were never
observed sinking towards the bottom but generally positioned
themselves close to the net covering the surface and did thus not
exhibit clear signs of negative buoyancy. All fish survived forced
submergence in normoxia, 90% survived in mild hypoxia (12 kPa),
whereas 45% survived in severe hypoxia (6 kPa) (Fig. 3).
3.3. Aquatic MO2, SMR, and Pcrit
MO2 varied considerably when access to airwas denied in normoxic
(20 kPa) and slightly less when exposed tomildly hypoxic (12–13 kPa)
water. The fish exhibited frequent bouts of spontaneous activity
associated with increased MO2, and as a consequence, the average
MO2 of different fish at different timeswas considerable higher than the
estimated SMR, both in 20 kPa and 12–13 kPa (Figs. 4 and 5B). RMR and
SMR during normoxia (20 kPa), mild hypoxia (12–13 kPa), and severe
hypoxia (6 kPa) are represented in Table 1. The SMR estimated fromthe
10% quantile was not used further, as it was highly variable, and
probably overestimated SMR due to the spontaneous activity. RMRwas
significantly reduced in 12–13 kPa (one-way ANOVA, pb0.05) and
6 kPa (p b 0.0001), when compared to normoxia. RMR was also
significantly reduced in 6 kPa when compared to 12–13 kPa (p b 0.001).
SMR did not differ significantly between the different oxygen levels,
although SMR tended to decrease when air-breathing was prevented in
hypoxicwater (pN0.05). The oxygen levels during the hypoxia exposure
are depicted in Fig. 5A. MO2 decreased gradually when oxygen levels
declined for determination of Pcrit (Fig. 5B). This reductionwas probably
caused by a decline in spontaneous activity. Data froman individual fish
are shown in Fig. 5C, and here it can be seen how MO2 increases
frequently but returns to SMR. It is also evident that MO2 is independent
on PO2w during mild hypoxia. When the PO2w was reduced to close to
Pcrit (6–8 kPa depending on the fish) for 6 h, the MO2 decreased and
remained stable on a level close to SMR but increased and became
variable upon the return to 12–13 kPa O2 (Fig. 5B). There was therefore
no clear indication of an oxygen debt accumulated from anaerobic
metabolism. On average, Pcrit was 7.7±1.2 kPa, and all fish increased
metabolism upon return to 12–13 kPa O2. In Fig. 6A, the mean MO2 for
all fish is shown as a function of PO2. As can be seen in Fig. 6B, some fish
were calm and maintained a MO2 close to their SMR until below Pcrit.
Fig. 6C shows another type of response where MO2 was elevated above
SMR, causing a linear decrease in MO2 with PO2.
3.4. Partitioning of oxygen consumption
The oxygen consumption (MO2w, MO2a, total MO2, and SMR),
partitioning, and air-breathing frequency for hypoxia and normoxia
are summarized in Table 2. There were no significant difference in either
SMR (one-way ANOVA, pN0.05) or totalMO2 (p N 0.5), between the two
treatments. Furthermore, the SMR determined with and without access
to air were not significantly different (one-way ANOVA, p N 0.05). The
MO2a, fb and %oxygen from air was significantly higher in hypoxia
(Kruskal–Wallis, pb0.05) while the MO2w was significantly higher in
normoxia (one-way ANOVA, pb0.001). The partitioning of oxygen
consumption during 22 h in normoxic (20 kPa) and hypoxic (6 kPa)
water is shownin Fig. 7AandB, respectively.TotalMO2 was initially high
in both treatments (200–300 mgO2 kg−1 h−1), but stabilized after 5–6 h
(~ 150 mg O2 kg−1 h−1). In normoxia, MO2a was negligible throughout
the measurement (b7%, Table 2). In hypoxia, MO2a was more important
during the first 15–16 h (8–9 am), after which the fish shifted towards
aquatic respiration within an hour. This shift occurred a few hours after
sunrise (6 am), and coincided with the arrival of staff at 8 am.
3.5. Gill ventilation
Gill ventilation amplitude, frequency, ventilation index, and air-breathing
frequency are depicted in Fig. 8. The overall ventilation
measured as the ventilation index, was significantly reduced below 8 kPa
(Fig. 8C, pb0.01). This reduction was primarily caused by a significant
decrease in ventilation amplitude (Fig. 8A, p b 0.01),while the ventilation
frequency was significantly reduced at 2.7 kPa (Fig. 8B, p b 0.05). The air-breathing
frequency increased significantly at 8 kPa (Fig. 8D, p b 0.01), and
increased even further at 5.3 and 2.7 kPa (p b 0.005).
3. ผลลัพธ์3.1 การลักษณะการทำงานทั่วไปทั่วไป P. hypophthalmus พบกิจกรรมว่ายน้ำระดับสูงและก็ไม่ค่อยสังเกตเครื่องเขียนในคอลัมน์น้ำ นกชนิดนี้เป็นต้องมีความไวต่อการรบกวน มีสระว่ายน้ำคึกคัก และพฤติกรรมหนีหลังแม้กระทั่งกระตุ้นเพียงน้อยนิด ซ่อมแซมผิวหน้าและ gulping อากาศสุภัคขึ้นนาน ๆ ครั้ง หนุ่มปลา (ถึง 150 g) มีการแนวโน้มที่จะผิวพร้อมกันในกลุ่มใหญ่ ระหว่างอากาศหายใจปลาจะว่ายน้ำต่อพื้นที่ที่มุมประมาณ45 องศาและ หลัง จากการซ่อมแซมผิวหน้าที่หายใจนวัฎจักร ได้อย่างรวดเร็วเสร็จสมบูรณ์ เปิดอย่างรวดเร็วมิด บางครั้งได้เห็นฟองอากาศการถูกขับไล่ออก โดย slits เหงือกระหว่างเชื้อสายจากพื้นผิวเมื่อถูกคุมขังใน respirometer ไม่ถึงอากาศ ปลาได้โดยทั่วไปนั้นกระตุ้นทำสำหรับแรกชั่วโมงอย่างมีระดับออกเสียงเหงือกระบายอากาศ ต่อไปนี้เวลานี้เริ่มต้น ปลาต่อการแสดงใหญ่ทางธุรกิจปกติของกิจกรรมอยู่กระจายกับ quiescence แม้แต่หลังจากหลายชั่วโมงในการ respirometer ต่อปลาน้อยการรบกวน เช่น เมื่อปั๊มล้างได้ปิดระหว่างวัด Pcrit ดังนั้นจึงเป็นสิ่งสำคัญที่มนุษย์disturbancewas ตัด duringmeasurement และที่ห้องปฏิบัติการได้อีกทั้งในช่วงเวลานี้ ปลาที่ดูเหมือน จะน้อยสำคัญ และน้องใน respirometer เป็นที่ได้รับอนุญาตเข้าถึงอากาศ3.2 การบังคับ submergenceเมื่อถูกปฏิเสธการเข้าถึงอากาศใน normoxic น้ำ ปลาเริ่มทำพยายามผิว แต่การทำงานนี้คึกคัก subsided ภายในครั้งแรก2 h. ว่ายน้ำเคลื่อนไหวปรากฏช้าลงหลังจาก 2 วันแรก และปลาตอบน้อยไปรบกวนหลังจาก 4-5 วัน ในขณะนั้น ทั้งหมดน้ำท่วมปลาจัดแสดงเหงือกแบบเร่งระบาย ปลาไม่เคยสังเกตจมสู่ด้านล่าง แต่โดยทั่วไปทั้งหมดใกล้กับสุทธิครอบคลุมพื้นผิว และไม่ทำแสดงสัญญาณที่ชัดเจนของพยุงค่าลบ ปลาทั้งหมดรอดชีวิตบังคับsubmergence ใน normoxia, 90% รอดชีวิตในอ่อน hypoxia (12 kPa),ในขณะที่ 45% รอดชีวิตใน hypoxia รุนแรง (6 kPa) (Fig. 3)3.3. น้ำ MO2, SMR และ PcritMO2 แตกต่างกันมากเมื่อเข้าถึงปฏิเสธใน normoxic airwas(20 kPa) และน้อยกว่าเล็กน้อยเมื่อสัมผัสแปร tomildly (12-13 kPa)น้ำ ปลาใหญ่ทางธุรกิจบ่อยขาดกิจกรรมที่จัดแสดงเชื่อมโยงเพิ่ม MO2 และ เป็น สัจจะ ค่าเฉลี่ยMO2 ของปลาแตกต่างกันที่ timeswas ที่แตกต่างกันมากสูงกว่าประมาณ SMR ทั้ง 20 kPa และ 12 – 13 kPa (Figs. 4 และ 5B) RMR และSMR ระหว่าง normoxia (20 kPa), อ่อน hypoxia (12 – 13 kPa), และรุนแรงhypoxia (6 kPa) จะแสดงในตารางที่ 1 SMR ที่ประเมินจากการไม่ใช้ 10% quantile เพิ่มเติม ก็ผันแปรสูง และSMR overestimated อาจเนื่องจากกิจกรรมอยู่ RMRwasลด 12 – 13 kPa (การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว pb0.05) และ6 kPa (p b มาก 0.0001), เมื่อเทียบกับ normoxia ยัง RMR เป็นลดลงอย่างมีนัยสำคัญใน 6 kPa เมื่อเทียบกับ 12-13 kPa (p b 0.001)SMR ได้ไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญระหว่างระดับออกซิเจนแตกต่างกันแม้ว่า SMR มีแนวโน้มลดลงเมื่ออากาศหายใจถูกป้องกันในhypoxicwater (pN0.05) ระดับออกซิเจนในระหว่างการเปิดรับแสง hypoxiaมีแสดงใน Fig. ของ 5A MO2 ลดลงเรื่อย ๆ เมื่อระดับออกซิเจนปฏิเสธในเรื่องของ Pcrit (Fig. 5B) Reductionwas นี้คงเกิดจากการลดลงในกิจกรรมอยู่ ข้อมูล froman ปลาแต่ละตัวแสดงใน Fig. 5C และที่นี่จะเห็นได้ว่าการเพิ่มขึ้นของ MO2แต่กลับสู่ SMR บ่อย ก็ยังเห็นได้ชัดว่า MO2 อิสระใน PO2w ในช่วง hypoxia อ่อน เมื่อ PO2w ที่ถูกลดลงพักPcrit (6-8 kPa ตามปลา) สำหรับ 6 h, MO2 ลดลง และมั่นคงก่อนหน้าในระดับใกล้กับ SMR แต่เพิ่มขึ้น และกลายเป็นตัวแปรตามกลับไป 12-13 kPa O2 (Fig. 5B) ดังนั้นจึงมีข้อบ่งชี้ไม่ชัดเจนเป็นหนี้ออกซิเจนที่สะสมจากการไม่ใช้ออกซิเจนเผาผลาญ โดยเฉลี่ย Pcrit มี 7.7±1.2 kPa และปลาทั้งหมดเพิ่มขึ้นเผาผลาญเมื่อกลับไป 12-13 kPa O2 ใน Fig. 6A, MO2 หมายถึงสำหรับปลาทั้งหมดจะแสดงเป็นฟังก์ชันของ PO2 สามารถเห็นได้ใน Fig. 6B บางปลามีความสงบ และรักษา MO2 ใกล้ของ SMR จนด้านล่าง PcritFig. 6C แสดงตอบที่ MO2 ถูกยกระดับสูงกว่าชนิดอื่นSMR ก่อให้เกิดการลดลงแบบเส้นตรง MO2 กับ PO23.4 การแบ่งพาร์ทิชันของปริมาณการใช้ออกซิเจนปริมาณการใช้ออกซิเจน (MO2w, MO2a รวม MO2 และ SMR),พาร์ทิชัน และความถี่ของอากาศหายใจ hypoxia และ normoxiaได้สรุปไว้ในตารางที่ 2 มีไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในSMR (การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว pN0.05) หรือ totalMO2 (p N 0.5), ระหว่างสองรักษา นอกจากนี้ SMR ที่กำหนดด้วย และ ไม่เข้าเพื่อได้ไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญ (ทางเดียวการวิเคราะห์ความแปรปรวน p N 0.05) ที่MO2a, fb และ%ออกซิเจนจากอากาศสูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญใน hypoxia(Kruskal – วาลลิ pb0.05) ในขณะ MO2w สูงขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในnormoxia (การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว pb0.001) พาร์ทิชันของออกซิเจนปริมาณการใช้ในระหว่าง h 22 normoxic (20 kPa) และแปร (6 kPa)น้ำคือ shownin Fig. 7AandB ตามลำดับ TotalMO2 ได้เริ่มต้นสูงในการรักษาทั้งสอง (200 – 300 mgO2 h−1 kg−1), แต่เสถียรหลัง 5 – 6 h(~ 150 มิลลิกรัม O2 kg−1 h−1) ใน normoxia, MO2a เป็นระยะตลอดวัด (b7% ตารางที่ 2) สำคัญใน hypoxia, MO2aในระหว่างการแรก 15 – 16 h (8-9 น.), หลังจากปลาเปลี่ยนไปหายใจน้ำภายในหนึ่งชั่วโมง การเปลี่ยนแปลงนี้เกิดขึ้นไม่กี่ชั่วโมงหลังจากซันไรส์ (น. 6), และร่วมกับการมาถึงของเจ้าหน้าที่เวลา 8 น.3.5. เหงือกระบายเหงือกระบายคลื่น ความถี่ ระบายอากาศดัชนี และอากาศหายใจความถี่ที่แสดงใน Fig. 8 ระบายอากาศโดยรวมวัดเป็นดัชนีระบาย ถูกลดลงอย่างมีนัยสำคัญด้านล่าง 8 kPa(Fig. 8C, pb0.01) ที่ลดลงนี้ส่วนใหญ่เกิดจากเป็นสำคัญลดระบายคลื่น (Fig. 8A, p b 0.01), ในขณะที่การระบายอากาศความถี่ลดลงอย่างมีนัยสำคัญที่ 2.7 kPa (Fig. 8B, p b 0.05) การหายใจอากาศความถี่เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ 8 kPa (Fig. 8D, p b 0.01), และเพิ่มขึ้นยิ่งที่ 5.3 และ 2.7 kPa (p b 0.005)
การแปล กรุณารอสักครู่..

3 . ผลลัพธ์
3.1 . พฤติกรรมทั่วไปในทั่วไป , หน้า Hypophthalmus แสดงระดับสูงของกิจกรรมและไม่ค่อยสังเกตว่าย
เครื่องเขียนในน้ำ . สายพันธุ์นี้เป็นที่รู้จักกันเป็นไว
รบกวน , ว่ายน้ำแข็งแรงและพฤติกรรมหลบหนีหลังจากการกระตุ้นเพียงเล็กน้อย พื้นผิวและอากาศกลืนน้ำลาย
พบไม่บ่อย ปลาหนุ่ม ( 150 กรัม ) มี
มีแนวโน้มที่จะผิว synchronously ในกลุ่มใหญ่ ในอากาศหายใจ
ปลาจะว่ายน้ำไปยังพื้นผิวเป็นมุมประมาณ 45 องศา
และหลังจากพื้นผิวที่ดูเหมือนจะหายใจรอบอย่างรวดเร็ว
เสร็จ เปิดเร็วๆ จม . ฟองอากาศถูกเห็นเป็นครั้งคราว
ถูกกรีดผ่านเหงือกในระหว่างการสืบเชื้อสายจากพื้นผิว .
เมื่ออยู่ใน respirometer โดยไม่ต้องเข้าถึงอากาศ ปลามักจะตื่นเต้น
ครั้งแรกชั่วโมงจัดแสดงอ่านว่ากิล
ระบายอากาศ ต่อไปนี้ระยะเวลาแรกนี้ ปลายังคงแสดง
ปกติ bouts ของกิจกรรมที่เกิดขึ้นสลับกับการหยุดการเจริญเติบโตชั่วคราว แม้
หลังจากหลายชั่วโมงใน respirometer . ปลายังคงอ่อนไหว
การรบกวน เช่นเมื่อปั๊มล้างต้องปิด
ในระหว่างการวัด pcrit . มันจึงสำคัญว่า มนุษย์
disturbancewas ตกรอบ duringmeasurement และห้องปฏิบัติการ
อย่างสิ้นเชิง โดยในช่วงเวลานี้ ปลาดูเหมือนจะน้อยกว่า
ไว และเงียบสงบใน respirometer ที่เข้าถึงอากาศก็อนุญาต . . .
. . บังคับน้ำ
เมื่อปฏิเสธการเข้าถึง normoxic อากาศในน้ำปลาเริ่มทำ
พยายามเข้มแข็งขึ้น แต่พฤติกรรมนี้ทุเลาลงภายในครั้งแรก
2 H . ว่ายความเคลื่อนไหวปรากฏช้า หลังจาก 2 วันแรก และปลาน้อยรบกวนตอบ
หลังจาก 4 – 5 วัน ตอนนั้นทุกคน
มิดมีเหงือกปลาแบบระบายอากาศ ปลาไม่เคยจม
สังเกตทางด้านล่าง แต่โดยทั่วไปวาง
ตัวเองอยู่ใกล้กับสุทธิครอบคลุมพื้นผิวและไม่ได้แสดงสัญญาณที่ชัดเจนจึงไม่
ลอยลบ ปลารอดบังคับ
ดำน้ำในวิทยาศาสตร์ 90% รอดในภาวะที่ไม่รุนแรง ( 12 กิโลปาสคาล )
ส่วน 45% รอดขาดออกซิเจนรุนแรง ( 6 กิโลปาสคาล ) ( รูปที่ 3 ) .
. . mo2 ถึงน้ำ , และ pcrit
mo2 แตกต่างกันมาก เมื่อเข้าถึง airwas ปฏิเสธใน normoxic
( 20 กิโลปาสคาล ) และน้อยกว่าเล็กน้อย เมื่อสัมผัส tomildly ติดตั้ง ( 12 – 13 กิโลปาสคาล )
น้ำ ปลามีวงจรอุบาทว์ของธรรมชาติกิจกรรม
เกี่ยวข้องกับการเพิ่ม mo2 , และเป็นผล , mo2 เฉลี่ยของปลาที่แตกต่างกันที่แตกต่างกัน
ประมาณ timeswas มากสูงกว่า ซึ่งทั้ง 20 kPa และ 12 – 13 กิโลปาสคาล ( Figs 4 และ 5B ) ซึ่งระหว่างวิทยาศาสตร์และ RMR
( 20 กิโลปาสคาล )อ่อนขาดออกซิเจน ( 12 – 13 กิโลปาสคาล ) และอาการรุนแรง
( 6 กิโลปาสคาล ) จะแสดงในตารางที่ 1 ที่ประมาณ 10% ซึ่งจาก
ควอนไทล์ไม่ใช้ต่อไป มันคือตัวแปรอย่างสูงและ
อาจประเมินค่า ซึ่งจากเหตุการณ์ที่เกิดขึ้น . rmrwas
ลด 12 กิโลปาสคาล– 13 ( One-Way ANOVA และ pb0.05 )
6 กิโลปาสคาล ( P B 0.0001 ) เมื่อเทียบกับวิทยาศาสตร์ . RMR ยัง
ลดได้ 6 กิโลปาสคาลเมื่อเทียบกับ 12 – 13 กิโลปาสคาล ( P B 0.001 ) .
ซึ่งไม่แตกต่างอย่างมีนัยสำคัญระหว่างระดับออกซิเจนที่แตกต่างกัน
ถึงแม้ว่าซึ่งมีแนวโน้มลดลงเมื่ออากาศหายใจถูกขัดขวางใน
hypoxicwater ( pn0.05 ) ออกซิเจน ในภาวะแสง
เป็นที่ปรากฎในรูปที่ 43 . mo2 ลดลงเมื่อระดับออกซิเจน
ลดลงสำหรับการกำหนด pcrit ( มะเดื่อ 5B )นี้อาจเกิดจาก reductionwas
ลดลงในกิจกรรมธรรมชาติ . ข้อมูล โฟรแมนแต่ละปลา
แสดงในรูปที่ 5 และที่นี่จะเห็นได้ว่า mo2 เพิ่ม
บ่อยแต่กลับไปถึง . และยังถือว่าเป็นอิสระในช่วง mo2
po2w อ่อนไม่ได้ เมื่อ po2w ลดลงปิด
pcrit ( 6 – 8 kpa ขึ้นอยู่กับปลา ) 6 H ,
mo2 ลดลงยังคงทรงตัวในระดับใกล้เคียงกับ Smooth Criminal แต่เพิ่มขึ้นและกลายเป็น
ตัวแปรเมื่อกลับไป 12 – 13 กิโลปาสคาล ค่า O2 ( มะเดื่อ 5B ) มีข้อบ่งชี้ชัดเจนของดังนั้น
อากาศออกซิเจนหนี้สะสมจากการเผาผลาญอาหาร เฉลี่ย pcrit คือ 7.7 ± 1.2 กิโลปาสคาล และปลาเพิ่มขึ้น
การเผาผลาญเมื่อกลับถึง 12 – 13 กิโลปาสคาล ค่า O2 . ในรูปที่ 6 , หมายถึง mo2 สำหรับ
ปลาทั้งหมดจะแสดงเป็นฟังก์ชันของ po2 .ที่สามารถเห็นได้ในรูปที่ 6B , บางปลา
สงบและยังคงปิดจนกว่าจะถึง mo2 ด้านล่าง pcrit .
รูปที่ 6 แสดงประเภทอื่นของการตอบสนองที่ mo2 ถูกยกระดับขึ้นไป
ซึ่งก่อให้เกิดการลดลงเชิงเส้นใน mo2 กับ po2
3.4 . การใช้ออกซิเจน
การใช้ออกซิเจน ( mo2w mo2a mo2 , , , และรวมถึง )
พาร์ทิชันและความถี่อากาศหายใจเพราะขาดออกซิเจนและวิทยาศาสตร์
สรุปได้ในตารางที่ 2 ไม่มีความแตกต่างเช่นกัน
ซึ่ง ( One-Way ANOVA pn0.05 ) หรือ totalmo2 ( P ( , 0.5 ) ระหว่างสอง
บําบัด นอกจากนี้ ซึ่งกำหนดและไม่มีการเข้าถึง
อากาศไม่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญทางสถิติ ( One-Way ANOVA , P ( 0.05 )
mo2a FB , และปริมาณออกซิเจนจากอากาศสูงกว่าในสังคม
( Kruskal - Wallis pb0 , .05 ) ส่วน mo2w สูงกว่าใน
วิทยาศาสตร์ ( One-Way ANOVA pb0.001 ) แบ่งพาร์ติชันของการใช้ออกซิเจน
ในระหว่าง 22 ชั่วโมงใน normoxic ( 20 กิโลปาสคาล ) และติดตั้ง ( 6 กิโลปาสคาล )
น้ำ shownin รูป 7aandb respectively.totalmo2 , ตอนแรกสูง
ทั้งการรักษา ( 200 – 300 mgo2 กก− 1 H − 1 ) แต่มีเสถียรภาพหลังจาก 5 – 6 H
( ~ 150 มก. O2 −฿ 1 H − 1 ) ในวิทยาศาสตร์ mo2a สำคัญตลอด
,การวัด ( B7 ( ตารางที่ 2 ) ในภาวะ mo2a สำคัญ
ในช่วง 15 – 16 H ( 8 – 9 ) หลังจากที่ปลาขยับต่อ
การหายใจของสัตว์น้ำภายในหนึ่งชั่วโมง การเปลี่ยนแปลงนี้เกิดขึ้นไม่กี่ชั่วโมงหลังจาก
พระอาทิตย์ขึ้น ( 6 โมงเช้า ) และสอดคล้องกับการมาถึงของพนักงานที่ 8 am .
3 . เหงือกเหงือกการระบายอากาศการระบายอากาศ
คลื่น ความถี่ และดัชนีการระบาย อากาศหายใจ
ความถี่จะปรากฎในรูปที่ 8
รวมเป็นดัชนีวัดการระบายระบาย คือลดลง 8 กิโลปาสคาล ( รูปด้านล่าง pb0.01 8C
, ) นี้เป็นหลักที่เกิดจากการลดลงอย่างมีนัยสำคัญในขนาด ( รูประบายอากาศ
8A , P B 0.01 ) ในขณะที่การระบาย
ความถี่ลดลง ( รูปที่ 2.7 กิโลปาสคาล 8B , P B ตามลำดับ อากาศหายใจ
ความถี่ลดลง 8 กิโลปาสคาล ( รูป 8D , P B 0.01 ) และเพิ่มมากยิ่งขึ้นที่
5.3 และ 2.7 กิโลปาสคาล ( P B 0.005 )
การแปล กรุณารอสักครู่..
