examined (Son, Moon, & Lee, 2001; W

examined (Son, Moon, & Lee, 2001; Wang et al., 2014), although their effect comparatively
with lactic acid on banana flour properties are yet to be highlighted.
The action of polyphenol oxidase (PPO) has been implicated in the degradation of anthocyanins and other phenolic compounds in plant produce (Jiang, 2000). Cultivar variation among fruit has been attributed to the degree of PPO activity during enzymatic browning and degradation of fruit pulp (Ducamp-Collin, Ramarson, Lebrun, Self, & Reynes, 2008). Most literature however reported the effect of two or more organic acid and in combination during inhibition of enzymatic activities. There is scarce information on the activity of individual organic acid treatment and at various concentration levels on unripe banana flour properties. This study therefore reports the effect of ascorbic, citric and lactic acid pretreatment at concentration levels of 10, 15 and 20 g/L on the physical and antioxidant properties of flour of some banana cultivars in South Africa.
2. Materials and methods
2.1. Plant materials and pretreatment
Non-commercial banana cultivars: Luvhele (Musa ABB), Mabonde (Musa AAA) and M-red (Musa balbisiana cv Muomvared) obtained at unripe stage of maturity from household banana farms in Thohoyandou, South Africa were used for the conduct of this research. Fruit pulp from all three non-commercial cultivars was cut to 4 mm size and pretreated with organic acids: ascorbic, citric and lactic acid at concentrations of 10, 15 and 20 g/L for 10 min. The mixture containing pretreated and sliced pulp was allowed to drain for 2 min after which sliced banana fruit pulp was vacuum dried in an oven at a temperature of 70 C for 12 h.
2.2. Unripe banana flour (UBF) production
Vacuum dried pretreated pulp was used to obtain UBF through milling (Retsch ZM 200 miller, Haan, Germany) of dried pulp at 16,000 rpm for 30 s. Flour obtained from homogenized unripe banana pulp was characterized for colour, water and oil holding capacities, total polyphenol content and antioxidant capacity.
2.3. Colour profile of unripe banana flour
Colour attributes of unripe banana flour was measured with a Hunterlab LabScan XE Spectrophotometer CIELAB and CIELCH colour scale with the parameters L⁄a⁄b⁄ and L⁄C⁄H⁄. L⁄ indicates lightness, 0–100 with 0 representing black and 100 representing white. Coordinate a⁄ corresponds to red (+) and green () while b⁄ corresponds to yellow (+) and blue (). C⁄ coordinate is the chroma (Eq. (1)) and H⁄ coordinate the hue (Eq. (2)) (Wrolstad & Smith, 2010). The L⁄a⁄b⁄ values obtained from samples were used for the determination of whiteness and yellowness index. qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2
Chroma C ¼ ðaÞ2 þðbÞ ð1Þ

Hue angle H ¼ tan1 ba ð2Þ
The methods of Rodriguez-Aguilera, Oliveira, Montanez, and Mahajan (2011) and Pathare, Opara, and Al-Said (2013) were used in the determination of whiteness index (WI) and yellowness index (YI) of UBF samples (Eqs. (3) and (4)).
qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2 þb2 ð3Þ
WI ¼ 100 ð100 LÞþa
142:86b
YI ¼ ð4Þ
L
2.4. Water holding capacity
Approximately 1 g of banana flour was weighed into pre-weighed 15 mL centrifuged tubes. To each sample, 10 mL of distilled water was added and mixed for 2 min. Samples were thoroughly wetted and allowed to stand at room temperature for 30 min after which they were centrifuged at 3000 rpm for 20 min. The resulting supernatant was decanted and the centrifuge tube containing sediment was weighed. Water holding capacity; gram of water per gram of protein was calculated thus: ðW2 W1Þ
WHC ¼ ð5Þ
W0
2.5. Oil holding capacity
The oil holding capacity (OHC) of unripe banana flour was determined according to the methods of Larrauri, Ruperez, Borroto, and Saura-Calixto (1996). Approximately 1 g of banana flour was weighed into 15 mL centrifuge tubes and thoroughly mixed with 10 mL of cooking oil. Samples were allowed to stand for 30 min and centrifuged at 3000 rpm for 20 min. After centrifuging, the supernatant was poured into a 10 mL graduated cylinder and the volume recorded. Final OHC values were calculated thus: ðV1 V2Þ
OHC ¼ ð6Þ
W0
2.6. Total polyphenol
Total polyphenols of flour obtained from three non-commercial banana cultivars was determined using the Folin–Ciocalteu colorimetric methods. The method is based on the reduction of MoO4+ to MoO3+ that is detected by colour change from yellow to blue; measured at 760 nm. Approximately 0.2 g of milled sample was weight and 2 mL of acetone was added to the milled sample. The mixture was incubated for 1 h at room temperature, shaking occasionally and centrifuged at 6000 rpm for 5 min at 4 C. To 9 lL of centrifuged sample in a microplate, 109 lL of Folin Ciocalteu solution was added. About 180 lL of 7.5% Na2CO3 was added to the mixture, covered with aluminium foil and incubated at 50 C for 5 min. Absorbance of samples was then read at 760 nm using a UV spectrophotometer microplate reader (Zenyth 200rt Biochrom, UK). Gallic acid was used as the standard phenol compound and acetone used as the extraction solvent. The results were expressed as equivalents of gallic acid (mg GAE/100 g d.w.) from the calibration curve.
2.7. Determination of antioxidant capacity (DPPH Assay)
The ability of UBF samples to scavenge the unstable free radical 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl was determined using the methods of Ribeiro, Barbosa, Queiroz, Knodler, and Schieber (2008). Methanol was used as the extraction solvent and gallic acid used as standard with result of analysis measured in mg GA/g (d.w.). To 0.2 g of milled banana flour, 2 mL of methanol was added to the sample, incubated for 30 min at room temperature and centrifuged at 6000 rpm for 10 min at 4 C. Dilution of different concentrations of 10, 20, 30, 40 and 50 mg/mL of the sample was used to determine the IC50 of the sample. IC50 is the amount of antioxidant necessary to decrease the initial DPPH absorbance by 50%. Final values of IC50 were

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

กล่าวถึง (สน มูน & Lee, 2001 วัง et al., 2014), ถึงแม้ว่าผลความดีอย่างหนึ่งมีกรดในแป้ง คุณสมบัติยังเน้นการของ polyphenol oxidase (PPO) มีการเกี่ยวข้องในการย่อยสลายของ anthocyanins และอื่น ๆ ม่อฮ่อมในโรงงานผลิต (เจียง 2000) บันทึกเปลี่ยนแปลง cultivar ในผลไม้ยังมีกิจกรรม PPO browning และสลายตัวของเยื่อผลไม้ (รับ Ducamp, Ramarson, Lebrun ตนเอง และ Reynes, 2008) เอนไซม์ในระบบ วรรณกรรมส่วนใหญ่อย่างไรก็ตามรายงานผล ของกรดอินทรีย์ น้อยสอง และร่วมในระหว่างการยับยั้งกิจกรรมของเอนไซม์ในระบบ ไม่มีข้อมูลการขาดแคลนในกิจกรรมแต่ละรักษากรดอินทรีย์ และ ที่ระดับความเข้มข้นต่าง ๆ ในคุณสมบัติแป้งกล้วยดิบ ๆ การศึกษานี้รายงานผลของแอสคอร์บิค แอซิด ซิทริกและ pretreatment กรดแลกติกที่ระดับความเข้มข้น 10, 15 และ 20 g/L ในคุณสมบัติทางกายภาพและสารต้านอนุมูลอิสระของแป้งบางพันธุ์กล้วยในประเทศแอฟริกาใต้ดังนั้น2. วัสดุและวิธีการ2.1 การปลูกวัสดุและ pretreatmentพันธุ์กล้วยไม่ใช่เชิงพาณิชย์: Luvhele (Musa ABB), Mabonde (Musa AAA) และสี แดง M (ตานี cv Muomvared) ได้รับในขั้นตอนดิบ ๆ ที่ครบกำหนดจากฟาร์มบ้านกล้วยใน Thohoyandou แอฟริกาใต้ใช้สำหรับปฏิบัติงานวิจัยนี้ ตัดให้ได้ขนาด 4 มม. และ pretreated กับกรดอินทรีย์ผลไม้เยื่อจากทั้งหมด 3 พันธุ์ไม่ใช่การค้า: แอสคอร์บิค แอซิด ซิทริก และแล็กติกกรดที่ความเข้มข้น 10, 15 และ 20 g/L สำหรับ 10 นาที ส่วนผสมประกอบด้วยเยื่อ pretreated และหั่นบาง ๆ ได้รับอนุญาตให้ระบายน้ำใน 2 นาทีหลังจากที่หั่น กล้วยผลไม้เยื่อถูกเครื่องดูดฝุ่นแห้งในเตาอบที่อุณหภูมิ 70 C สำหรับ 12 h2.2. โยเกิร์ตกับกล้วยผลิตแป้ง (UBF)สิวแห้ง pretreated เยื่อถูกใช้เพื่อขอรับ UBF ผ่านการกัด (Retsch ZM 200 มิลเลอร์ Haan เยอรมนี) ของเยื่อกระดาษแห้งที่ 16000 rpm สำหรับ 30 s ได้แป้งที่ได้จากเยื่อกล้วยดิบ ๆ homogenized เป็นกลุ่มมีลักษณะสี น้ำ และน้ำมันถือกำลัง รวม polyphenol ผลิตเนื้อหาและสารต้านอนุมูลอิสระ2.3 โพรไฟล์สีของแป้งกล้วยดิบ ๆเป็นวัดคุณลักษณะสีของแป้งกล้วยดิบ ๆ Hunterlab LabScan XE เครื่องทดสอบกรดด่าง CIELAB และสเกลสี CIELCH กับพารามิเตอร์ L⁄a⁄b⁄ และ L⁄C⁄H⁄ L⁄ บ่งชี้ว่า ความสว่าง 0-100 ที่ 0 แสดงถึงสีดำและ 100 แทนสีขาว A⁄ ประสานงานตรง()สีเขียวและสีแดง (+) ในขณะที่ b⁄ ตรงกับสีเหลือง (+) และ(สีฟ้า) พิกัด C⁄ เป็นความ (Eq. (1)) และ H⁄ ประสานงานเว้ (Eq. (2)) (Wrolstad & Smith, 2010) ค่า L⁄a⁄b⁄ ที่ได้จากตัวอย่างที่ใช้สำหรับการกำหนดดัชนี yellowness และขาว qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2ความ C ¼ ðaÞ2 þðbÞ ð1Þเว้มุม H ¼ tan1 บา ð2Þใช้วิธีสติ นาร็อดริเกซ Oliveira, Montanez, Mahajan (2011) และ Pathare, Opara และกล่าวอัล (2013) ในการกำหนดดัชนีขาว (WI) และดัชนี yellowness (YI) ตัวอย่าง UBF (Eqs (3) และ (4)) qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2 þb2 ð3ÞWI ¼ 100 ð100 LÞþa142:86bยี่¼ ð4ÞL2.4 การถือกำลังน้ำประมาณ 1 กรัมของแป้งกล้วยถูกหนักเข้าไปในท่อก่อนชั่งน้ำหนัก 15 mL centrifuged แต่ละอย่าง 10 mL ของน้ำกลั่นที่เพิ่ม และผสมตัวอย่าง 2 นาทีถูกทำ wetted และอนุญาตให้ยืนใน 30 นาทีหลังจากที่พวกเขาถูก centrifuged ที่ 3000 รอบต่อนาทีสำหรับ 20 นาทีที่อุณหภูมิห้อง Supernatant ผลลัพธ์ถูก decanted และท่อเครื่องหมุนเหวี่ยงที่ประกอบด้วยตะกอนถูกชั่งน้ำหนัก น้ำถือกำลัง กรัมน้ำต่อกรัมของโปรตีนไม่ได้ดังนั้น: ðW2 W1ÞWHC ¼ ð5ÞW02.5 การชื้อโฮลดิ้งน้ำมันที่เก็บความจุ (OHC) ของแป้งกล้วยดิบ ๆ ได้กำหนดตามวิธีการของ Larrauri, Ruperez, Borroto และ Saura-Calixto (1996) แป้งกล้วยประมาณ 1 g มีน้ำหนักเป็น 15 mL หลอดเครื่องหมุนเหวี่ยง และอย่างละเอียดผสมกับ 10 mL ของน้ำมันพืช ตัวอย่างที่สามารถยืนใน 30 นาที และ centrifuged ที่ 3000 รอบต่อนาทีสำหรับ 20 นาที หลังจาก centrifuging, supernatant ถูก poured ในถัง 10 mL ที่จบศึกษา และบันทึกเสียง มีคำนวณค่า OHC สุดท้ายดังนั้น: ðV1 V2ÞOHC ¼ ð6ÞW02.6 polyphenol รวมโพลีฟีนรวมของแป้งที่ได้จาก 3 พันธุ์กล้วยพาณิชย์ไม่ถูกกำหนดโดยใช้วิธีเทียบเคียง Folin-Ciocalteu วิธีการขึ้นอยู่กับการลดลงของ MoO4 + การ MoO3 + ที่ตรวจพบ โดยการเปลี่ยนสีจากสีเหลืองเป็นสีน้ำเงิน วัดที่ 760 nm ประมาณ 0.2 g ของสารตัวอย่างมีน้ำหนัก และเพิ่มอย่างสาร 2 mL ของอะซิโตน ส่วนผสมคือ incubated สำหรับ h 1 ที่อุณหภูมิห้อง สั่นเป็นครั้งคราว และ centrifuged ที่ 6000 รอบต่อนาทีสำหรับ 5 นาทีที่ 4 ค ถึง 9 จะอย่าง centrifuged ใน microplate, 109 จะ Folin Ciocalteu โซลูชันเพิ่ม ประมาณ 180 จะ 7.5% Na2CO3 ได้เพิ่มส่วนผสม ปกคลุม ด้วยอลูมิเนียมฟอยล์ และ incubated ที่ 50 C 5 นาที Absorbance ของตัวอย่างที่ได้อ่านแล้วที่ 760 nm ใช้เครื่อง UV เครื่องทดสอบกรดด่าง microplate อ่าน (Zenyth 200rt Biochrom, UK) มีใช้กรด gallic เป็นสารประกอบวางมาตรฐานและใช้เป็นตัวทำละลายสกัดอะซิโตน ผลลัพธ์ได้แสดงเป็นเทียบเท่ากรด gallic (mg GAE/100 g d.w.) จากเส้นโค้งการปรับเทียบ2.7 การกำหนดกำลังการผลิตสารต้านอนุมูลอิสระ (DPPH Assay)สามารถอย่าง UBF scavenge อนุมูลอิสระเสถียร 1.1 ฟีนิลได-2-picrylhydrazyl ถูกกำหนดโดยใช้วิธีของ Ribeiro, Barbosa, Queiroz, Knodler และ Schieber (2008) ใช้เมทานอลเป็นตัวทำละลายสกัดและกรด gallic ที่ใช้เป็นมาตรฐานกับผลการวิเคราะห์ใน mg GA/g (d.w.) 0.2 g ของสารแป้ง mL 2 ของเมทานอลที่เพิ่มอย่าง incubated ใน 30 นาทีที่อุณหภูมิห้อง และ centrifuged ที่ 6000 รอบต่อนาทีใน 10 นาทีที่ 4 C. เจือจางของความเข้มข้นแตกต่างกัน 10, 20, 30, 40 และ 50 มิลลิกรัม/มิลลิลิตรของตัวอย่างที่ใช้ในการกำหนด IC50 ของตัวอย่าง IC50 คือ ยอดของสารต้านอนุมูลอิสระจำเป็นต้องลด absorbance DPPH เริ่มต้น 50% สุดท้ายค่า IC50 ได้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การตรวจสอบ (บุตรดวงจันทร์และลี 2001;. วังและคณะ, 2014) แม้ว่าผลของพวกเขาเปรียบเทียบ
. ด้วยกรดแลคติกกับคุณสมบัติแป้งกล้วยจะยังไม่ได้มีการเน้น
การกระทำของ polyphenol oxidase (PPO) ได้รับการที่เกี่ยวข้องในการย่อยสลาย ของ anthocyanins และสารประกอบฟีนอลอื่น ๆ ในการผลิตพืช (เจียง, 2000) การเปลี่ยนแปลงในหมู่พันธุ์ไม้ได้รับการบันทึกในระดับของกิจกรรม PPO ในระหว่างการเกิดสีน้ำตาลของเอนไซม์และการเสื่อมสภาพของเยื่อไม้ (Ducamp-Collin, Ramarson, Lebrun ตนเองและ Reynes 2008) วรรณคดีส่วนใหญ่อย่างไรก็ตามรายงานผลของสองคนหรือมากกว่ากรดอินทรีย์และในการรวมกันระหว่างการยับยั้งการทำงานของเอนไซม์กิจกรรม มีข้อมูลเกี่ยวกับกิจกรรมที่หายากของการรักษากรดอินทรีย์ของแต่ละบุคคลและในระดับความเข้มข้นต่างๆเกี่ยวกับคุณสมบัติของแป้งกล้วยสุก การศึกษาครั้งนี้จึงรายงานผลของวิตามินซี, ซิตริกและปรับสภาพกรดแลคติกในระดับความเข้มข้น 10, 15 และ 20 กรัม / ลิตรต่อสมบัติทางกายภาพและสารต้านอนุมูลอิสระของแป้งบางสายพันธุ์กล้วยในแอฟริกาใต้.
2 วัสดุและวิธีการ
2.1 วัสดุอาคารและการปรับสภาพ
พันธุ์กล้วยที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์: Luvhele (มูซา ABB) Mabonde (มูซา AAA) และ M-สีแดง (กล้วยตานีพันธุ์ Muomvared) ที่ได้รับในขั้นตอนของการกำหนดดิบจากฟาร์มกล้วยครัวเรือนใน Thohoyandou, แอฟริกาใต้ถูกนำมาใช้สำหรับ การดำเนินการวิจัยครั้งนี้ เยื่อไม้จากทั้งสามสายพันธุ์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ถูกตัดถึง 4 ขนาดมิลลิเมตรและปรับสภาพด้วยกรดอินทรีย์: ซีซิตริกและกรดแลคติกที่ความเข้มข้น 10, 15 และ 20 กรัม / ลิตรเป็นเวลา 10 นาที ส่วนผสมบรรจุปรับสภาพและเยื่อกระดาษหั่นได้รับอนุญาตให้ระบายน้ำสำหรับ 2 นาทีหลังจากที่หั่นเนื้อผลไม้กล้วยถูกสูญญากาศแห้งในเตาอบที่อุณหภูมิ 70 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมง.
2.2 แป้งกล้วยสุก (UBF) การผลิต
เครื่องดูดฝุ่นเยื่อกระดาษปรับสภาพแห้งถูกนำมาใช้เพื่อให้ได้ UBF ผ่านโม่ (Retsch ZM 200 มิลเลอร์, Haan, เยอรมนี) เยื่อกระดาษแห้งที่ 16,000 รอบต่อนาที 30 วินาที แป้งที่ได้จากเยื่อกล้วยสุกหดหายก็มีลักษณะสีน้ำและน้ำมันถือความจุเนื้อหาทั้งหมดโพลีฟีนและสารต้านอนุมูลอิสระ.
2.3 รายละเอียดสีของแป้งกล้วยสุก
คุณลักษณะสีของแป้งกล้วยสุกได้รับการวัดที่มี Hunterlab LabScan XE Spectrophotometer CIELAB และขนาดสี CIELCH กับพารามิเตอร์ L/a/b/ และ L/C/H/ L/ บ่งบอกว่าเบา, 0-100 กับ 0 ที่เป็นตัวแทนของสีดำและสีขาวที่เป็นตัวแทนของ 100 a/ ประสานสอดคล้องกับสีแดง (+) และสีเขียว () ในขณะที่ b/ สอดคล้องกับสีเหลือง (+) และสีฟ้า () C/ ประสานงานเป็นสีมา (สม. (1)) และ H/ ประสานงานสี (สม. (2)) (Wrolstad และสมิ ธ , 2010) ค่า L/a/b/ ที่ได้รับจากกลุ่มตัวอย่างที่ถูกนำมาใช้ในการตรวจวัดและดัชนีความขาวเหลือง qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2
Chroma C ¼ðaÞ2þðbÞð1Þ เว้มุม H ¼ BA tan1 ð2Þ วิธีการของ Rodriguez-Aguilera, Oliveira, Montanez และจัน (2011) และ Pathare, Opara และอัลซาอิด (2013) ถูกนำมาใช้ในการกำหนดดัชนีความขาว (WI) และดัชนีความเหลือง (Yi) ของกลุ่มตัวอย่าง UBF (สม. (3) และ บาท 2 ð3Þ WI ¼ 100 D100 LÞþa 142: 86b YI ¼ð4Þ L . 2.4 ความจุน้ำที่ถือประมาณ 1 กรัมแป้งกล้วยได้รับการชั่งน้ำหนักเป็นก่อนชั่งน้ำหนัก 15 มิลลิลิตรหลอดหมุนเหวี่ยงเพื่อแต่ละตัวอย่าง, 10 มิลลิลิตรของน้ำกลั่นถูกบันทึกและผสม. . 2 นาทีตัวอย่างถูกเปียกอย่างทั่วถึงและได้รับอนุญาตให้ยืนที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 นาทีหลังจากที่พวกเขาถูกหมุนเหวี่ยงที่ 3000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 20 นาทีใสผลถูก decanted และหลอด centrifuge ที่มีตะกอนได้รับการชั่งน้ำหนักอุ้มน้ำ.. กรัมของน้ำ ต่อกรัมของโปรตีนที่คำนวณได้ดังนี้: DW2 W1Þ WHC ¼ð5Þ W0 2.5 น้ำมันถือความจุ. กำลังการผลิตน้ำมันที่ถือครอง (OHC) ของแป้งกล้วยสุกถูกกำหนดตามวิธีการของ Larrauri, Ruperez, Borroto และ Saura-Calixto (1996) . ประมาณ 1 กรัมแป้งกล้วยได้รับการชั่งน้ำหนักเป็น 15 มิลลิลิตรหลอด centrifuge และผสมกับ 10 มลของน้ำมันปรุงอาหาร. ตัวอย่างได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา 30 นาทีและหมุนเหวี่ยงที่ 3000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 20 นาที. หลังจากการปั่นแยก, ใสถูกเทลงใน 10 มลกระบอกจบการศึกษาและปริมาณที่บันทึกไว้ ค่า OHC รอบชิงชนะเลิศจะถูกคำนวณดังนี้: DV1 V2Þ OHC ¼ð6Þ W0 2.6 รวมโพลีฟีนโพลีฟีนทั้งหมดของแป้งที่ได้จากสามสายพันธุ์กล้วยที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ได้รับการพิจารณาโดยใช้ Folin-Ciocalteu วิธีการสี วิธีการจะขึ้นอยู่กับการลดลงของหมู่ 4 + เพื่อหมู่ 3 + ที่ถูกตรวจพบโดยการเปลี่ยนสีจากสีเหลืองเป็นสีฟ้า; วัดที่ 760 นาโนเมตร ประมาณ 0.2 กรัมของตัวอย่างแป้งเป็นน้ำหนักและ 2 มิลลิลิตรของอะซิโตนถูกบันทึกอยู่ในตัวอย่างข้าวสาร ส่วนผสมที่ถูกบ่มเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องสั่นเป็นครั้งคราวและหมุนเหวี่ยงที่ 6000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาทีที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสถึง 9 lL ของตัวอย่างหมุนเหวี่ยงใน microplate, 109 lL ของการแก้ปัญหา Folin Ciocalteu ถูกเพิ่มเข้ามา ประมาณ 180 lL 7.5% Na2CO3 ถูกบันทึกอยู่ในส่วนผสมที่ปกคลุมด้วยกระดาษฟอยล์อลูมิเนียมและบ่มที่อุณหภูมิ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาที การดูดกลืนแสงของกลุ่มตัวอย่างได้อ่านแล้วที่ 760 นาโนเมตรโดยใช้ผู้อ่าน Spectrophotometer UV microplate (Zenyth 200rt Biochrom สหราชอาณาจักร) กรดแกลลิคถูกใช้เป็นสารประกอบฟีนอลและอะซีโตนมาตรฐานที่ใช้เป็นตัวทำละลายในการสกัด ผลการวิจัยแสดงเป็นรายการเทียบเท่าของกรดแกลลิ (GAE มิลลิกรัม / 100 กรัม DW) จากกราฟมาตรฐาน. 2.7 การวิเคราะห์หาปริมาณสารต้านอนุมูลอิสระ (DPPH Assay) ความสามารถของกลุ่มตัวอย่าง UBF ไล่ไม่แน่นอนอนุมูลอิสระ 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl ถูกกำหนดโดยใช้วิธีการของแบร์โตแป Queiroz, KNÖDLERและชีเบอร์ (2008) เมทานอลที่ใช้เป็นตัวทำละลายในการสกัดกรดและลิกที่ใช้เป็นมาตรฐานกับผลของการวิเคราะห์การวัดในมิลลิกรัม GA / g (DW) 0.2 กรัมของแป้งกล้วยข้าวสาร 2 มิลลิลิตรของเมทานอลถูกบันทึกอยู่ในตัวอย่างบ่มเป็นเวลา 30 นาทีที่อุณหภูมิห้องและหมุนเหวี่ยงที่ 6000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาทีที่อุณหภูมิ 4 องศาเซลเซียสเจือจางความเข้มข้นแตกต่างกันของ 10, 20, 30, 40 และ 50 mg / ml ของกลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการกำหนดค่า IC50 ของกลุ่มตัวอย่าง IC50 คือปริมาณของสารต้านอนุมูลอิสระที่จำเป็นเพื่อลดการดูดกลืนแสง DPPH เริ่มต้น 50% ค่าสุดท้ายของ IC50 อยู่

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตรวจสอบ ( ลูกชาย , ดวงจันทร์ , &ลี , 2001 ; Wang et al . , 2014 ) แม้ว่าผลของพวกเขาเมื่อเทียบกับกรดแลคติก
ต่อสมบัติของแป้งกล้วยยังถูกเน้น
การกระทําของ polyphenol oxidase ( PPO ) เข้าไปพัวพัน กับการสลายตัวของ anthocyanins และสารประกอบฟีนอลิกในการผลิตพืช ( เจียง 2000 )การแปรพันธุ์ของผลไม้ที่ได้รับมาประกอบกับระดับกิจกรรมของเอนไซม์ PPO ในสีน้ำตาลและการย่อยสลายของเยื่อไม้ ( ducamp Collin ramarson , ตัวแทน , ตนเอง , & reynes , 2008 ) วรรณกรรมมากที่สุด อย่างไรก็ตาม รายงานผลของกรดอินทรีย์และสองหรือมากกว่าในการรวมกันระหว่างยับยั้งกิจกรรมเอนไซม์ .มีข้อมูลที่หายากในกิจกรรมของแต่ละบุคคลการรักษากรดอินทรีย์และที่ระดับความเข้มข้นต่างๆต่อแป้งกล้วยดิบ คุณสมบัติ การศึกษานี้จึงได้รายงานผลของวิตามินซี และกรดซิตริก , ภาวะที่ระดับความเข้มข้น 10 , 15 และ 20 กรัม / ลิตร ต่อคุณสมบัติทางกายภาพและฤทธิ์ต้านออกซิเดชันของแป้งกล้วยบางพันธุ์ในแอฟริกาใต้ .
2วัสดุและวิธีการ
2.1 . วัสดุโรงงานและการบำบัด
ในเชิงพาณิชย์กล้วยพันธุ์ : luvhele ( Musa ( ABB ) mabonde Musa AAA ) และ m-red ( กล้วยตานี CV muomvared ) ที่ได้ในขั้นตอนของความดิบจากฟาร์มในบ้านกล้วย โทโฮยานดัว แอฟริกาใต้ ที่ใช้สำหรับการวิจัยนี้ผลไม้เยื่อกระดาษจากทั้งสามพันธุ์ที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ถูกตัดขนาด 4 มม. และได้รับกรดอินทรีย์ : แอสซิตริกและกรดแลกติกที่ความเข้มข้น , 10 , 15 และ 20 กรัม / ลิตร นาน 10 นาที ส่วนผสมที่มีเนื้อและหั่นบาง ๆ ที่ได้รับอนุญาตให้ระบายสำหรับ 2 นาทีหลังจากที่หั่นกล้วยผลไม้เยื่อกระดาษเป็นสูญญากาศอบแห้งใน เตาอบที่อุณหภูมิ 70 องศาเซลเซียส เป็นเวลา 12 ชั่วโมง
2.2 .แป้งกล้วยดิบ ( ubf ) เครื่องดูดฝุ่นแห้งที่ผ่านการผลิต
เยื่อถูกใช้เพื่อขอรับ ubf ผ่านการสี ( retsch ZM 200 มิลเลอร์ , แฮน , เยอรมนี ) เยื่อแห้งที่ 16000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 30 วินาที แป้งที่ได้จากเยื่อบดกล้วยดิบมีลักษณะสี น้ำ และน้ำมัน ที่ถือโดยเนื้อหา polyphenol ทั้งหมดและสารต้านอนุมูลอิสระ .
2.3 สีแป้ง
โปรไฟล์ของกล้วยดิบสีคุณสมบัติของแป้งกล้วยดิบ เป็นวัดที่มี hunterlab labscan XE วัสดุแข็งขนาดสีและ cielch ที่มีค่า L ⁄เป็น⁄ B ⁄และฉัน⁄ C ⁄ H ⁄ . ผม⁄บ่งชี้ความสว่าง 0 – 100 0 แทน 100 แทนสีดำและสีขาว ประสานงาน⁄สอดคล้องกับสีแดง ( ) และสีเขียว ( ) ในขณะที่ B ⁄สอดคล้องกับสีเหลืองและสีฟ้า ( ) ( ) C ⁄ประสานงานเป็น Chroma ( อีคิว( 1 ) H ⁄ประสานงานเว้ ( อีคิว ( 2 ) ) ( wrolstad & สมิธ , 2010 ) L ⁄เป็น⁄ B ⁄ค่าที่ได้จากกลุ่มตัวอย่างที่ใช้ในการหาดัชนีความขาว และสีเหลือง . qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2
Chroma C ¼ðเป็นÞ 2 þð B Þð 1 Þ

สีสันมุม H ¼สีแทน 1color บาð 2 Þ
วิธีการ Rodriguez Aguilera , Oliveira , montanez และ mahajan pathare ( 2011 ) ,opara และอัล ( 2013 ) สถิติที่ใช้ในการหาค่าดัชนีความขาว ( WI ) และดัชนีค่าสีเหลือง ( อี ) ของตัวอย่าง ubf ( EQS . ( 3 ) และ ( 4 ) )
qffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffiffi2 þ B2 ð 3 Þ
วี¼ 100 ð 100 ลิตรÞþเป็น

142:86b อี¼ð 4 Þ
L
2.4 . น้ำความจุถือ
ประมาณ 1 กรัมของแป้งกล้วยเป็นหนักเป็นหนัก 15 ml ระดับ pre หลอด ตัวอย่าง 10 มิลลิลิตร ผสมน้ำกลั่นเพิ่ม และ 2 นาทีจำนวนอย่างละเอียด เปียก และได้รับอนุญาตให้ยืนที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 นาที หลังจากที่พวกเขาได้ระดับที่ 3 , 000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 20 นาทีและนำผลคือริน centrifuge หลอดที่มีตะกอนถูกชั่งน้ำหนักน้ำความจุถือ ; กรัมของน้ำต่อกรัมของโปรตีนที่คำนวณได้ดังนี้ ð W1 W2
Þอุ้มน้ำ¼ð 5 Þ
W0
2.5 น้ำมันความจุถือ
น้ำมันความจุถือ ( OHC ) ของแป้งกล้วยดิบถูกกำหนดตามวิธีการของ larrauri ruperez borroto , , , และ saura calixto ( 1996 )ประมาณ 1 กรัมของแป้งกล้วยคือหนักใน 15 ml หลอดปั่นเหวี่ยงและทั่วถึงผสม 10 มล. ของน้ำมันปรุงอาหาร ตัวอย่างที่ได้รับอนุญาตให้ยืนเป็นเวลา 30 นาทีและระดับที่ 3 , 000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 20 นาที หลังจากนำสาร , ถูกเทลงในกระบอกตวง 10 มิลลิลิตร และปริมาณการบันทึก สุดท้าย OHC ค่าได้ดังนี้ ð V1 V2 Þ
OHC ¼ðÞ
6 W0
2.6
โพลีฟีนอลทั้งหมดโพลีฟีนอลทั้งหมดของแป้งที่ได้จากสามพันธุ์กล้วยที่ไม่ใช่เชิงพาณิชย์ถูกกำหนดโดยใช้ folin – ciocalteu 7.4 วิธี โดยอาศัยการลดหมู่ที่หมู่ 3 ที่ถูกตรวจพบโดยการเปลี่ยนสีจากสีเหลืองเป็นสีน้ำเงิน วัดที่ 760 นาโนเมตร ประมาณ 0.2 กรัม น้ำหนักของข้าวสารจำนวน 2 มิลลิลิตร สำหรับเพิ่มให้สารตัวอย่างส่วนผสมจะถูกบ่มเป็นเวลา 1 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง สั่นเป็นครั้งคราว และระดับที่ 6 , 000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 5 นาทีที่ 4 C . 9 จะใช้ไฟฟ้าในพื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย 109 จะหาทาง ciocalteu folin ถูกเพิ่มเข้ามา ประมาณ 180 จะ 7.5 Na2CO3 คือเพิ่มส่วนผสม , ปกคลุมด้วยอลูมิเนียมฟอยล์และบ่มที่อุณหภูมิ 50 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 5 นาทีการดูดกลืนแสงของตัวอย่างที่ถูกอ่านแล้ว 760 nm ใช้ UV Spectrophotometer พื้นที่ภาคเหนือของประเทศไทย ( อ่าน zenyth 200rt biochrom , UK ) เพิ่มขึ้นมาใช้เป็นมาตรฐานและใช้สารประกอบฟีนอลอะซีโตนเป็นตัวทำละลายในการสกัด ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นเทียบเท่าของเพิ่มขึ้น ( มิลลิกรัม / 100 กรัม d.w. เก ) จากรูปโค้ง .
2.7 . การหาปริมาณสารต้านอนุมูลอิสระ ( dpph assay )
ความสามารถของตัวอย่าง ubf เพื่อหาแน่นอนอนุมูลอิสระ 1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl ถูกกำหนดโดยใช้วิธีการ ริเบโร่ บาร์โบซา เคยรอซ knodler , , , และชิเบอร์ ( 2008 ) ที่ใช้เมทานอลเป็นตัวทำละลายในการสกัดเพิ่มขึ้นและใช้เป็นมาตรฐานกับผลที่ได้จากการวิเคราะห์วัดในมิลลิกรัม / กรัม ( GA d.w. ) 0.2 กรัม บดแป้งกล้วย 2 ml ของเมทานอล ได้เพิ่มการตัวอย่างบ่มเป็นเวลา 30 นาที ที่อุณหภูมิห้อง และที่ระดับ 6 , 000 รอบต่อนาที เป็นเวลา 10 นาทีที่ 4 C . การเจือจางของระดับความเข้มข้น 10 , 20 , 30 , 40 และ 50 มิลลิกรัม / มิลลิลิตรของตัวอย่างที่ใช้ในการตรวจสอบ ic50 ของตัวอย่าง ic50 คือปริมาณของสารต้านอนุมูลอิสระที่จำเป็นเพื่อลดการดูดกลืนแสง dpph เริ่มต้น 50% ค่าสุดท้ายของ ic50 ถูก