calculate the electrical conductivi

calculate the electrical conductivity σ [S·m] of the sample under current
application.
σ ¼ ðI·dÞ=ðV·AÞ ð1Þ
2.6. Sterilization test
The sterilization test was conducted in accordance with the
constant-temperature test and the microbacterial test for retort
food stipulated in the Food Sanitation Act. The test was done five
times. The ohmically heated samples, held at 35 °C for 14 days,
were cooled to 20 °C before their morphology was observed. The
samples whose packaging containers were inflated or from which
there was content leakage were considered microorganism-positive.
The samples considered as microorganism-negative were subjected to
the microorganism test. A portion of each sample, 25 ± 0.1 g, was
collected aseptically and placed in a sterilized bag (PYXON-30, Elmex)
with 225 ml of sterilized water. This mixture was then ground in a
homogenizer (Stomacher 400-T, Organo) for 60 s to obtain a sample
extract; 9ml of sterilized water was added to 1ml of the sample extract
to make a 1:100 diluent. One milliliter of the 1:100 diluent was
dispensed in five tubes, each containing thioglycollate medium (Eiken
Chemical) heat-dissolved in distilled water and sterilized (hereinafter
referred to as the TGC liquid medium). Furthermore, one milliliter of
sterilized water was added to the TGC liquid medium as negative
control. Then, the sample and control solutions were incubated at
35 °C for 48 h to check for any microbial growth.
2.7. Temperature changes during retort heating
To monitor sample temperature during retort heating, a temperature
data logger (button-shaped, diameter 8.675mm, height 6.4mm) (Hyper
Thermochron, KN Laboratories) was inserted into the center of each
sample. The monitoring was done five times.
2.8. F0 measurement
F0 value was calculated as the accumulated thermal death effect on
the spores of Clostridium botulinum, one of the most common food
poisoning-causing bacteria. Lethal rate, L, was calculated using the
following equation:
L ¼ 10  ½ðT–121Þ=10 ð2Þ
where T is temperature (C°).
F0 is calculated using Eq. (2) as follows:
F0 ¼
Z
Ldt ¼
Z
10  ½ðT–121Þ=10dt: ð3Þ
Based on temperature history, F0 was calculated using (3) for ohmic
heating and retort heating.
2.9. Water content measurement
Five different samples were used for the measurements. Differences
between groupswere evaluated using a two-sample t test. Five grams of
each sample was placed in an aluminum cup (Toyo Aluminum Ekco
Products) and was leveled using a medicine spoon. Following drying
by heating at 135 °C for 120 min, the water content of each sample
was measured using infrared moisture testers (FD-600, FD-620, Kett
Electric Laboratory).
2.10. Glutamic acid measurement
Five different samples were used for the measurements.
Differences between groups were evaluated using a two-sample t test.
A YAMASA L-Glutamate Assay Kit II (Yamasa Corporation) was used
for this purpose.
2.11. Inosine monophosphate (IMP) measurement
Five different samples were used for the measurements. Differences
between groups were evaluated using a two-sample t test. High-speed
liquid chromatography was used for measuring IMP. We used a Shodex
Asahipak GS-320 HG column (φ7.6mm× 300mm, Showa Denko) at a
temperature of 30 °C. An 875-UV (JASCO) detector was used, and the
detection wavelength was 260 nm. As the mobile phase, we used
200 mM sodium dihydrogen phosphate (pH2.9) filtered through a
membrane filter (pore diameter 0.20 μm); its flow rate was 0.6ml/min.
A portion of each sample, 2.0±0.3 g, was homogenized in 5ml of
chilled 10% perchloric acid. Then, the solution was centrifuged at
16,000 g using a centrifuge (CF15R, Hitachi Koki). The supernatant
was decanted; 5ml of 10% perchloric acidwas then added to the residue
and mixed well. This mixture was centrifuged for collecting the
supernatant. The supernatant and the 10% perchloric acid were mixed
to obtain a 25-ml supernatant diluent. One milliliter of the diluent was
neutralized using 10M KOH and 1M KOH, and the neutralized diluent
was centrifuged at 14,000 g. The supernatant was decanted, and 1 ml
of Milli-Q was added to the residue and mixed well; the mixture was
then centrifuged at 14,000 g, and the supernatant was collected. The
supernatant was centrifuged again and decanted, and then, Milli-Q
was added to the decanted supernatant to prepare 10 ml of test liquid.
The test liquid was filtered through a syringe filter unit (pore diameter
0.20 μm), and 20 μl of the test liquid was injected into the sample for
measurement. An autosampler (Model 09, System Instruments) was
used for injection.
2.12. Sensory test
The sensory test was conducted on about thirty men and women. The
ohmically heated and retort-heated samples, each 2.0±0.1g, were placed
on separate trays and the subjects evaluated them in terms of appearance,
flavor, taste, tenderness, flavor in mouth, and comprehensive evaluation
(six items) on a five-point scale (−2 to 2). As for comprehensive
evaluation, a two-sample preference test was also conducted.
2.13. Statistical analysis
The results were expressed as average±standard deviation, and
a t-test was used for determining statistical significance. Microsoft
Excel was used for this analysis.
3. Results and discussion
3.1. Cold point determination
The changes in temperature at locations A–E inside the cell are
shown in Fig. 2. The average time it took each of the five samples to
reach at 121 °C is shown in Fig. 3. The time taken to reach 121 °C was
the shortest at A, the center of the cell; the time taken was the longest
at D, the upper part of the cell near the electrode. The following reasons
were suggested for these results: temperature increase at A was the
fastest because itwas farthest fromthe cell surface andwas less affected
by heat transfer. In comparison, B, C, D, and E were closer to the cell
surface; D and E were closer to the stainless steel cap than B and C,
making D and E more susceptible to the effect of heat transfer. Thus,
the temperatures at these locations were lower. Furthermore, D was
located higher on the cell than E, thus releasing more heat than E. This

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

คำนวณσค่าการนำไฟฟ้า [S·m] ของตัวอย่างภายใต้ปัจจุบันแอพลิเคชันΣ¼ ðI·dÞ = ðV· AÞ ð1Þ2.6 การฆ่าเชื้อทดสอบการฆ่าเชื้อทดสอบได้ดำเนินการสอดคล้องกับการการทดสอบอุณหภูมิคงและทดสอบ microbacterial ย้อนอาหารที่กำหนดไว้ในพระราชบัญญัติสุขาภิบาลอาหาร ทำการทดสอบ 5ครั้ง ตัวอย่าง ohmically อุ่น จัดที่ 35 ° C ในวันที่ 14ได้ระบายความร้อนด้วยถึง 20 ° C ก่อนสัณฐานวิทยาของพวกเขาถูกตรวจสอบ ที่ตัวอย่างที่ภาชนะบรรจุมีสูงเกินจริง หรือที่มีการรั่วไหลของเนื้อหาก็ถือว่ายังเป็นบวกตัวอย่างที่เป็นลบที่เป็นจุลินทรีย์ที่ถูกต้องการทดสอบจุลินทรีย์ ส่วนของแต่ละตัว อย่าง 25 ± 0.1 g ถูกรวบรวม aseptically และวางในถุง sterilized (PYXON 30, Elmex)มี 225 มล.น้ำ sterilized ส่วนผสมนี้แล้วมีพื้นในการhomogenizer (แผงประดับหน้าอก 400 T ชำนาญ) 60 s เพื่อขอรับตัวอย่างแยก 9ml sterilized น้ำถูกเพิ่ม 1ml ของสารสกัดตัวอย่างเพื่อให้เป็น 1: 100 diluent มีหนึ่ง milliliter ของ 1: 100 diluentคำในห้าท่อ แต่ละกลาง thioglycollate มี (Eikenเคมี) ความร้อนละลายในน้ำกลั่น และ sterilized (ซึ่งต่อไปนี้เรียกว่าสื่อของเหลว TGC) นอกจากนี้ หนึ่ง milliliter ของเพิ่มน้ำ sterilized ปานกลางเหลว TGC เป็นค่าลบควบคุม แล้ว ตัวอย่างและการควบคุมแก้ไขปัญหาได้ incubated ที่35 ° C สำหรับ h 48 เพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์2.7. อุณหภูมิเปลี่ยนแปลงในช่วงย้อนความร้อนการตรวจสอบตัวอย่างอุณหภูมิระหว่างย้อนความร้อน ไข้คนตัดไม้ข้อมูล (ปุ่มรูป เส้นผ่าศูนย์กลาง 8.675 mm สูงสามีมม.) (ไฮเปอร์Thermochron ห้องปฏิบัติการช็อปปิ้ง) ถูกใส่เข้าไปในตัวของแต่ละตัวอย่างการ การตรวจสอบถูกทำห้าครั้ง2.8 วัด F0ค่า F0 ถูกคำนวณเป็นผลตายสะสมความร้อนในเพาะเฟิร์นของเชื้อ Clostridium botulinum อาหารทั่วไปอย่างใดอย่างหนึ่งแบคทีเรียที่เป็นพิษที่ทำให้เกิด มีคำนวณโดยใช้อัตรายุทธภัณฑ์ L แบบสมการต่อไปนี้:L ¼ 10 ½ðT – 121Þ = 10 ð2Þที่ T คือ อุณหภูมิ (C °)F0 คำนวณโดยใช้ Eq. (2) ดังนี้:F0 ¼ZLdt ¼Z10 ½ðT-121Þ = 10 dt: ð3Þขึ้นอยู่กับอุณหภูมิประวัติ F0 คำนวณใช้ (3) แบบโอห์มมิคความร้อนและความร้อนย้อน2.9 น้ำประเมินเนื้อหาตัวอย่างที่แตกต่างกันห้าถูกใช้สำหรับการประเมิน ความแตกต่างระหว่าง groupswere ที่ถูกประเมินโดยใช้การทดสอบ t สองตัวอย่าง 5 กรัมของแต่ละอย่างถูกวางไว้ในถ้วยตวงอลูมิเนียม (โตโยอลูมิเนียม Ekcoผลิตภัณฑ์) และผ่านการใช้ช้อนยา ต่อการอบแห้งโดยความร้อนที่ 135 ° C สำหรับ 120 นาที ปริมาณน้ำของแต่ละอย่างถูกวัดโดยใช้การทดสอบความชื้นอินฟราเรด (FD-600, FD 620, Kettไฟฟ้าส่วนปฏิบัติการ2.10. วัดกลูตาเมตตัวอย่างที่แตกต่างกันห้าถูกใช้สำหรับการประเมินมีประเมินความแตกต่างระหว่างกลุ่มใช้การทดสอบ t สองตัวอย่างใช้ YAMASA L Glutamate Assay Kit II (Yamasa Corporation)สำหรับวัตถุประสงค์นี้2.11 วัด Inosine monophosphate (IMP)ตัวอย่างที่แตกต่างกันห้าถูกใช้สำหรับการประเมิน ความแตกต่างระหว่างกลุ่มที่ประเมินโดยใช้การทดสอบ t สองอย่าง ความเร็วสูงchromatography ของเหลวที่ใช้สำหรับวัด IMP เราใช้ Shodex การคอลัมน์ Asahipak GS-320 HG (φ7.6mm × 300 มม. Denko โช) ที่เป็นอุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียส ใช้การตรวจจับ (JASCO) 875-UV และตรวจหาความยาวคลื่น 260 nm เป็นเฟสเคลื่อนที่ เราใช้กรอง 200 mM โซเดียมไฮโดรเจนฟอสเฟต (pH2.9) ผ่านการตัวกรองเมมเบรน (μm รูเส้นผ่าศูนย์กลาง 0.20); อัตราการไหลได้ 0.6 ml/minส่วนของแต่ละตัวอย่าง 2.0±0.3 g ถูก homogenized เป็นกลุ่มใน 5 ml ของเย็น 10% perchloric กรด จากนั้น การแก้ปัญหาถูก centrifuged ที่g 16000 ใช้เครื่องหมุนเหวี่ยง (CF15R, Koki ฮิตาชิ) Supernatantมี decanted 5ml ของ 10% perchloric acidwas เพิ่มเข้าไปตกค้างและแบบผสมด้วย ส่วนผสมนี้ถูก centrifuged สำหรับการรวบรวมการsupernatant ผสมใน supernatant และกรด perchloric 10%รับการ diluent supernatant 25 ml หนึ่ง milliliter ของ diluent ถูกใช้เกาะ 10 เมตร และ 1 เมตรเกาะ และ neutralized diluent neutralizedมี centrifuged ที่ 14000 g Supernatant ถูกมล decanted และ 1ของ Q ถูกเพิ่มตกค้าง และผสมดี มีส่วนผสมcentrifuged แล้ว ที่ 14000 g และ supernatant รวบรวมไว้ ที่supernatant centrifuged อีก และ decanted แล้ว Qมีเพิ่มการ supernatant decanted เตรียม 10 ml ของน้ำยาทดสอบทดสอบของเหลวถูกกรองผ่านหน่วยกรองเข็ม (ขนาดรูขุมขน0.20 μm), และ μl 20 ของน้ำยาทดสอบถูกฉีดเข้าไปในตัวอย่างสำหรับวัด Autosampler การ (09 รุ่น เครื่องมือระบบ)ใช้สำหรับฉีด2.12 การทดสอบรับความรู้สึกการทดสอบทางประสาทสัมผัสได้ดำเนินในชายและหญิงประมาณสามสิบ ที่ohmically อุ่น และ ร้อนย้อนตัวอย่าง g แต่ละ 2.0±0.1 ถูกวางถาดแยกและหัวข้อประเมินพวกเขาในรูปลักษณ์รส รสชาติ เจ็บ รสในปาก และการประเมินผลที่ครอบคลุม(6 รายการ) ในระดับที่ห้าแฉก (−2 2) เป็นการครบวงจรนอกจากนี้ยังมีดำเนินการประเมิน การทดสอบสองอย่างชอบ2.13. สถิติวิเคราะห์ผลลัพธ์ถูกแสดงเป็น average±standard ความแตกต่าง และt-ทดสอบถูกใช้สำหรับการกำหนดนัยสำคัญทางสถิติ Microsoftมีใช้ Excel สำหรับการวิเคราะห์นี้3. ผลลัพธ์ และสนทนา3.1 การกำหนดจุดเย็นมีการเปลี่ยนแปลงในอุณหภูมิที่ตำแหน่ง A – E ภายในเซลล์แสดงใน Fig. 2 เวลาเฉลี่ยที่ใช้ตัวอย่างที่ 5 ให้แต่ละถึงที่ 121 ° C จะแสดงใน Fig. 3 เวลาที่ใช้ถึง 121 ° C เป็นสั้นที่ A ศูนย์กลางของเซลล์ เวลาที่ใช้ได้ยาวที่สุดที่ดี ส่วนบนของเซลล์ใกล้การไฟฟ้า ประการต่อไปนี้ไม่แนะนำสำหรับผลลัพธ์เหล่านี้: เพิ่มอุณหภูมิที่ A ได้เร็วที่สุดเนื่องจากเป็น farthest from andwas ผิวเซลล์น้อยได้รับผลกระทบโดยการถ่ายเทความร้อน ในการเปรียบเทียบ B, C, D และ E ได้ใกล้ชิดกับเซลล์ผิว D และ E ใกล้ชิดกับฝาสเตนเลสกว่า B และ Cทำให้ D และ E อ่อนแอมากขึ้นไปผลของการถ่ายเทความร้อน ดังนั้นต่ำกว่าอุณหภูมิในสถานเหล่านี้ได้ นอกจากนี้ D ถูกตั้งอยู่สูงบนเซลล์กว่า E จึง ปล่อยความร้อนมากขึ้นกว่าอีนี้

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

คำนวณการนำไฟฟ้าσ [S · m]
ของกลุ่มตัวอย่างในปัจจุบันภายใต้การประยุกต์ใช้.
σ¼ di · DTH = DV · Ath ð1Þ
2.6 การทดสอบการฆ่าเชื้อทดสอบการฆ่าเชื้อได้ดำเนินการให้สอดคล้องกับการทดสอบที่อุณหภูมิคงที่และการทดสอบmicrobacterial โต้สำหรับอาหารตามที่กำหนดไว้ในพระราชบัญญัติการสุขาภิบาลอาหาร การทดสอบได้ทำห้าครั้ง กลุ่มตัวอย่างอุ่น ohmically จัดขึ้นที่ 35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 14 วันได้รับการระบายความร้อนถึง20 องศาเซลเซียสก่อนที่จะสัณฐานของพวกเขาถูกตั้งข้อสังเกต ตัวอย่างที่มีภาชนะบรรจุภัณฑ์ที่ได้รับสูงขึ้นหรือจากการที่มีการรั่วไหลของเนื้อหาได้รับการพิจารณาจุลินทรีย์บวก. กลุ่มตัวอย่างที่ถือได้ว่าเป็นจุลินทรีย์ที่ลบได้ภายใต้การทดสอบจุลินทรีย์ เป็นส่วนหนึ่งของแต่ละตัวอย่าง 25 ± 0.1 กรัมถูกเก็บรวบรวมปลอดเชื้อและวางไว้ในถุงฆ่าเชื้อ(PYXON-30, Elmex) 225 ml ของน้ำผ่านการฆ่าเชื้อ ส่วนผสมนี้แล้วพื้นดินในโฮโมจีไน (Stomacher 400-T, ออกาโน่) เป็นเวลา 60 วินาทีที่จะได้รับตัวอย่างสารสกัด; 9ml น้ำฆ่าเชื้อถูกบันทึกอยู่ใน 1ml ของสารสกัดจากตัวอย่างที่จะทำให้1: 100 เจือจาง หนึ่งมิลลิลิตร 1: 100 เจือจางได้รับการยกเว้นในห้าหลอดแต่ละที่มีthioglycollate ปานกลาง (Eiken เคมี) ความร้อนละลายในน้ำกลั่นและการฆ่าเชื้อ (ต่อไปนี้จะเรียกว่าเป็นอาหารเหลวTGC) นอกจากนี้หนึ่งมิลลิลิตรของน้ำฆ่าเชื้อถูกเพิ่มลงในอาหารเหลว TGC เป็นเชิงลบการควบคุม จากนั้นกลุ่มตัวอย่างและการแก้ปัญหาการควบคุมถูกบ่มที่35 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 48 ชั่วโมงเพื่อตรวจสอบการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์ใด ๆ . 2.7 การเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิความร้อนในช่วงโต้เพื่อตรวจสอบอุณหภูมิความร้อนในช่วงตัวอย่างโต้, อุณหภูมิเครื่องบันทึกข้อมูล(ปุ่มรูป 8.675mm เส้นผ่าศูนย์กลาง 6.4 มมความสูง) (ไฮเปอร์Thermochron, KN ห้องปฏิบัติการ) ถูกใส่เข้าไปในศูนย์กลางของแต่ละตัวอย่าง การตรวจสอบก็ทำห้าครั้ง. 2.8 F0 วัดค่าF0 ที่คำนวณได้เป็นผลตายความร้อนสะสมในสปอร์ของเชื้อClostridium botulinum ซึ่งเป็นหนึ่งในอาหารที่พบมากที่สุดเป็นพิษที่ก่อให้เกิดเชื้อแบคทีเรีย อัตราการตาย, L, ที่คำนวณโดยใช้สมการดังต่อไปนี้: L 10 ¼? ½ðT-121Þ = 10? ð2Þที่ T คืออุณหภูมิ (° C). F0 คำนวณโดยใช้สมการ (2) เป็นดังนี้: F0 ¼ Z Ldt ¼ Z 10 ½ðT-121Þ = 10 dt: ð3Þจากประวัติศาสตร์อุณหภูมิF0 ที่คำนวณโดยใช้ (3) สำหรับ ohmic. ความร้อนและความร้อนโต้2.9 ปริมาณน้ำวัดห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด ความแตกต่างระหว่าง groupswere การประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบที ห้ากรัมของแต่ละตัวอย่างถูกวางไว้ในถ้วยอลูมิเนียม (Toyo อลูมิเนียม Ekco ผลิตภัณฑ์) และได้รับการปรับระดับการใช้ช้อนยา ต่อไปนี้การอบแห้งด้วยความร้อนที่ 135 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 120 นาทีปริมาณน้ำของแต่ละตัวอย่างถูกวัดโดยใช้การทดสอบความชื้นอินฟราเรด(FD-600, FD-620, Kett ไฟฟ้าในห้องปฏิบัติการ). 2.10 วัดกรดกลูตามิห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด. ความแตกต่างระหว่างกลุ่มที่ได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบ t. Yamasa L-กลูตาเมต Assay Kit II (Yamasa คอร์ปอเรชั่น) ถูกนำมาใช้เพื่อการนี้. 2.11 inosine โมโน (IMP) วัดห้าตัวอย่างที่แตกต่างกันถูกนำมาใช้สำหรับการวัด ความแตกต่างระหว่างกลุ่มที่ได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างการทดสอบที ความเร็วสูงของเหลว chromatography ถูกนำมาใช้สำหรับการวัดภูตผีปีศาจ เราใช้ Shodex Asahipak GS-320 HG คอลัมน์ (φ7.6mm× 300 มม, Showa Denko) ที่อุณหภูมิ30 องศาเซลเซียส รังสียูวี 875 (JASCO) ถูกนำมาใช้ตรวจจับและความยาวคลื่นการตรวจสอบ260 นาโนเมตร ในฐานะที่เป็นเฟสเคลื่อนที่เราใช้โซเดียม 200 มิลลิฟอสเฟต dihydrogen (pH2.9) กรองผ่านตัวกรองเมมเบรน(เส้นผ่าศูนย์กลางรูพรุน 0.20 ไมครอน); อัตราการไหลของมันคือ 0.6ml / นาที. ส่วนหนึ่งของแต่ละตัวอย่าง 2.0 ± 0.3 กรัมถูกปั่นใน 5ml ของแช่เย็น10% กรดเปอร์คลอริก แล้ววิธีการแก้ปัญหาที่ถูกหมุนเหวี่ยงที่16,000 กรัมใช้หมุนเหวี่ยง (CF15R ฮิตาชิกิ) ใสถูก decanted; 5ml 10% acidwas เปอร์คลอริกแล้วเพิ่มไปยังตกค้างและผสมกัน ส่วนผสมนี้ได้รับการหมุนเหวี่ยงในการเก็บรวบรวมใส สารละลายและ 10% กรดเปอร์คลอริกถูกผสมเพื่อให้ได้เจือจางใส25 มล. หนึ่งมิลลิลิตรเจือจางถูกลบล้างโดยใช้ 10M เกาะและเกาะ 1M และเจือจางเป็นกลางถูกหมุนเหวี่ยงที่14,000 กรัม ใสถูก decanted และ 1 มิลลิลิตรของMilli-Q ถูกบันทึกอยู่ในสารตกค้างและผสมกัน ส่วนผสมที่ถูกปั่นแล้วที่ 14,000 กรัมและใสถูกเก็บรวบรวม ใสได้รับการหมุนเหวี่ยงอีกครั้งและ decanted แล้ว Milli-Q ถูกเพิ่มลงในสารละลาย decanted เพื่อเตรียมความพร้อม 10 มล. ของของเหลวการทดสอบ. ของเหลวทดสอบถูกกรองผ่านเข็มฉีดยาหน่วยกรอง (เส้นผ่าศูนย์กลางรูพรุน0.20 ไมครอน) และ 20 ไมโครลิตรของ ของเหลวทดสอบฉีดเข้าไปในตัวอย่างสำหรับการวัด ฉีดตัวอย่างอัตโนมัติ (รุ่น 09 ระบบ Instruments) ถูกใช้สำหรับการฉีด. 2.12 การทดสอบทางประสาทสัมผัสการทดสอบทางประสาทสัมผัสได้ดำเนินการในประมาณสามสิบชายและหญิง ตัวอย่าง ohmically ร้อนและโต้ร้อนแต่ละ 2.0 ± 0.1g, ถูกวางไว้บนถาดแยกต่างหากและวิชาที่ประเมินพวกเขาในแง่ของลักษณะรสชาติรสนุ่มรสชาติในปากและการประเมินผลที่ครอบคลุม(หกรายการ) ในวันที่ห้า -point ขนาด (-2 ถึง 2) ในฐานะที่เป็นที่ครอบคลุมการประเมินผลการทดสอบความพึงพอใจของกลุ่มตัวอย่างทั้งสองยังได้ดำเนินการ. 2.13 การวิเคราะห์ทางสถิติผลการวิจัยแสดงเป็นค่าเฉลี่ย±ค่าเบี่ยงเบนมาตรฐานและเสื้อทดสอบที่ใช้สำหรับการกำหนดนัยสำคัญทางสถิติ Microsoft Excel ที่ใช้สำหรับการวิเคราะห์นี้. 3 และการอภิปรายผล3.1 การกำหนดจุดเย็นการเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิในสถานที่ A-E ภายในเซลล์ที่มีการแสดงในรูป 2. เวลาเฉลี่ยจะเอาแต่ละห้าตัวอย่างที่จะถึง121 ° C แสดงในรูป 3. เวลาที่จะไปให้ถึง 121 องศาเซลเซียสเป็นระยะเวลาที่สั้นที่A, ศูนย์ของเซลล์; เวลาที่เป็นที่ยาวที่สุดที่ D, ส่วนบนของเซลล์ที่อยู่ใกล้อิเล็กโทรดที่ เหตุผลดังต่อไปนี้ได้รับการแนะนำเพื่อให้ได้ผลลัพธ์เหล่านี้: การเพิ่มขึ้นของอุณหภูมิที่ A เป็นที่เร็วที่สุดเพราะitwas ไกลเซลล์ผิว fromthe andwas รับผลกระทบน้อยจากการถ่ายเทความร้อน ในการเปรียบเทียบ, B, C, D, E และอยู่ใกล้กับเซลล์ผิว D และ E อยู่ใกล้กับฝาสแตนเลสกว่า B และ C, ทำให้ D และ E อ่อนแอมากขึ้นเพื่อผลของการถ่ายเทความร้อน ดังนั้นอุณหภูมิในสถานที่เหล่านี้ลดลง นอกจาก D ถูกตั้งอยู่ที่สูงขึ้นในเซลล์กว่าE จึงปล่อยความร้อนมากขึ้นกว่านี้อี

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

คำนวณค่าการนำไฟฟ้าσ [ S ] M ด้วย จากการศึกษาภายใต้การประยุกต์ใช้ในปัจจุบัน
.
σ¼ðฉันด้วย = D Þð V ด้วย เป็นÞð 1 Þ
2.6 ทดสอบการฆ่าเชื้อฆ่าเชื้อ
ทดสอบดำเนินการตาม
อุณหภูมิทดสอบและทดสอบ microbacterial สำหรับฆ่าเชื้อ
อาหารที่ระบุไว้ในพระราชบัญญัติสุขาภิบาลอาหาร . สอบเสร็จ 5
ครั้ง ตัวอย่าง ohmically อุ่นขึ้นที่ 35 ° C
14 วันจำนวน 20 ° C ก่อนเย็น ลักษณะของพวกเขาสังเกต
ตัวอย่างที่มีบรรจุภัณฑ์เป็นพองหรือซึ่งมีเนื้อหารั่ว

ถือว่าเป็นจุลินทรีย์ที่เป็นบวก เป็นลบ จำนวนจุลินทรีย์จะถูก
จุลินทรีย์ทดสอบ ส่วนของแต่ละกลุ่มตัวอย่าง 25 ± 0.1 g ,
เก็บ aseptically และวางไว้ในถุง ( pyxon-30 ฆ่าเชื้อ ,
elmex )กับ 225 มิลลิลิตร ฆ่าเชื้อในน้ำ ส่วนผสมนี้ถูกบดในเครื่องปั่น ( แผงประดับหน้าอก
400-t , Organo ) 60 s เพื่อให้ได้ตัวอย่าง
สกัด ; 9ml ของฆ่าเชื้อน้ำเพิ่ม 1ml ของตัวอย่างสกัด
ให้เจือจาง 1 : 100 . หนึ่งใน 100 มิลลิลิตรเจือจางเป็น 5
จ่ายหลอดแต่ละที่มี thioglycollate ขนาดกลาง ( eiken
เคมี ) ความร้อนละลายในน้ำกลั่นและฆ่าเชื้อ ( ต่อไปนี้
เรียกว่า TGC อาหารเหลว ) นอกจากนี้หนึ่งมิลลิลิตรของ
ฆ่าเชื้อน้ำถูกเพิ่มลงในอาหารเหลว เช่น การควบคุม TGC ลบ

งั้น , ตัวอย่างและโซลูชั่นการควบคุมอุณหภูมิ 35 องศา C
48 ชั่วโมง เพื่อตรวจสอบการเจริญของจุลินทรีย์ .
2.7 . การเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิระหว่าง
ความร้อนฆ่าเชื้อตรวจสอบอุณหภูมิของตัวอย่างในเครื่องฆ่าเชื้อ , เครื่องบันทึกข้อมูล อุณหภูมิ
( ปุ่มรูปขนาด 8.675mm 6.4mm , ความสูง ) ( ห้องปฏิบัติการในไฮเปอร์
thermochron ) ถูกแทรกลงในศูนย์ของแต่ละ
ตัวอย่าง การทำ 5 ครั้ง
2.8 . ละละค่าการวัด
คำนวณเป็นสะสมความร้อนความตายมีผลต่อ
สปอร์ของสีลบหนึ่ง
อาหารที่พบบ่อยที่สุดพิษของแบคทีเรีย คะแนน ฉันได้ถูกคำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้ :

ผม¼ 10  ½ðที– 121 Þ = 10  ð 2 Þ
เมื่อ t คืออุณหภูมิ ( C ° ) .
ละคำนวณโดยใช้อีคิว ( 2 ) ดังนี้ ¼
z

ละ ldt ¼
z
10  ½ðที– 121 Þ = 10  DT : ð 3 Þ
ตามประวัติอุณหภูมิละ ( 3 ) คำนวณโดยใช้ความร้อนและความร้อนฆ่าเชื้อค่า
.
2.9 .
การวัดปริมาณน้ำห้าตัวอย่างต่าง ๆที่ใช้สำหรับการวัด ความแตกต่างระหว่างกลุ่ม ประเมิน โดยใช้ 2
t ตัวอย่างทดสอบ ห้ากรัม
แต่ละตัวอย่างถูกวางไว้ในถ้วยอลูมิเนียม ( TOYO อลูมิเนียม ekco
ผลิตภัณฑ์ ) และระดับการใช้ยาช้อน ต่อไปนี้แห้ง
โดยความร้อนที่ 135 ° C เป็นเวลา 120 นาที ปริมาณน้ำของแต่ละตัวอย่างถูกวัดโดยใช้เครื่องวัดความชื้น
( fd-600 fd-620 , อินฟราเรด ,เขตปฏิบัติการไฟฟ้า )
.
2.10 . กรดกลูตามิก
วัดห้าที่แตกต่างกันกลุ่มตัวอย่างที่ใช้สำหรับการวัด .
ความแตกต่างระหว่างกลุ่มได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างทดสอบเป็นชุดของการทดสอบ yamasa .
2 ( yamasa Corporation ) ถูกใช้สำหรับวัตถุประสงค์นี้
.
2.11 . โนซีนโมโนฟอสเฟต ( IMP ) การวัด
ห้าที่แตกต่างกันกลุ่มตัวอย่างที่ใช้สำหรับการวัด ความแตกต่าง
ระหว่างกลุ่มที่ได้รับการประเมินโดยใช้สองตัวอย่างทดสอบที วิธีโครมาโทกราฟีของเหลวความเร็วสูงที่ใช้สำหรับการวัด
. เราใช้ shodex
asahipak gs-320 HG คอลัมน์ ( φ 7.6mm × 300 มม. Showa Denko , ) ที่อุณหภูมิ 30 องศา C .
เป็น 875-uv ( jasco ) เครื่องตรวจจับที่ใช้ตรวจจับคลื่นและ
เป็น 260 นาโนเมตร เป็นเฟสเคลื่อนที่ เราใช้
200 มิลลิเมตรโซเดียมฟอสเฟต dihydrogen ( ph2.9 ) กรองผ่าน
ไส้กรองเมมเบรน ( รูขุมขนขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 0.20 μ M ) ; อัตราการไหลเป็น 0.6ml / min
ส่วนของแต่ละกลุ่มตัวอย่าง 2.0 ± 0.3 กรัม ถูกบดใน 5ml ของ
แช่เย็น 10% เปอร์คลอริกแอซิด . แล้วทางออกคือระดับที่ใช้เพื่อ 16 , 000 g
( cf15r , Hitachi Koki ) และน่าน
เป็น decanted ; 5 10% perchloric acidwas แล้วเพิ่มกาก
และผสมดีส่วนผสมนี้เป็นระดับในการเก็บรวบรวม
น่าน . และน่าน และ 10 % เปอร์คลอริกแอซิดผสม
ขอรับ 25 ml สูงเจือจาง . หนึ่งมิลลิลิตรของเจือจางคือ
เป็นกลางใช้ 10M 1 เกาะและเกาะและเป็นกลางเจือจาง
คือระดับที่ 14000 กรัมสูงเป็นริน และ 1 ml
ของ milli-q ถูกเพิ่มเข้าไปกาก และผสมส่วนผสม
;แล้วระดับที่ 500 กรัม และนำกำลังรวบรวม
สูงคือระดับอีกครั้ง และริน แล้ว milli-q
ถูกเพิ่มไปยังรินนำเตรียม 10 มล. ทดสอบของเหลว
ทดสอบของเหลวกรองผ่านตัวกรองเข็มหน่วย ( รูขุมขนขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 0.20 μ
m ) และ 20 μ l ทดสอบของเหลวที่ฉีดเข้าไปเพื่อ
การวัด . การ autosampler ( รุ่น 09 ,