moved with a cork borer from a seven days old culture and inoculated i การแปล - moved with a cork borer from a seven days old culture and inoculated i ไทย วิธีการพูด

moved with a cork borer from a seve

moved with a cork borer from a seven days old culture and inoculated in 50 mL sterilized PDB in 100 mL flasks and incubated at
25 ± 2 C under orbital shaking at 120 rpm for 10 days. Upon incubation, the culture was filtered through whatman N1 filter paper.
Two hundred and forty healthy bean seeds without cracks and
other visible deformations were selected and surface sterilized
with 3% sodium hypochlorite for 1 min, rinsed three times in sterile distilled water and air dried overnight. The sterile bean seeds
were soaked in F. solani culture filtrate solution prepared in PDB
at 100%, 80%, 60%, and 40% respectively for 6 h. The seeds were
thereafter transferred in Petri dishes (20 seeds/dish) containing filter papers on which 2 ml of respective culture filtrates were pipetted. Seeds soaked in sterile distilled water were used as control.
The test was done in duplicate and the germination percentages
were determined in each treatment as a function of the total number of seeds.
2.3.3.2. Ability of T. atroviridae to promote seeds germination and
protect against F. solani attack. Sterile bean seeds were soaked for
24 h in 20 mL of T. atroviridae conidia suspension prepared at
105, 2  105, 4  105 and 8  105 cells/mL respectively. 24 h after,
beans seeds were transferred onto PDA plates in presence
(4  105 cells/mL) and absence of pathogenic fungus (F. solani).
The control sets consisted of plates containing bean seeds without
any fungi, bean seeds with either pathogenic or BCA. The experiment was performed in duplicate with 20 seeds/dish. The seeds
were observed for 10 days and the percentage of germination
was determined by comparison with the controls (Kumar et al.,
2014).
2.4. Pot experiments
The soil used was classified as Rhodic kanduidlut (according to
the U.S. soil taxonomy) and was collected from the A horizon of
common bean farms around Yaoundé. The soil was air-dried,
R.M.K. Toghueo et al. / Biological Control 96 (2016) 8–20 11
passed through a 4-mm sieve before mixing at a 3:1 v/v proportion
with river sand. The soil-sand mixture was then autoclaved three
times at 121 C for 30 min. The sterilized soil was contaminated
with F. solani conidia and filled in pots (5 kg/pot) with a ratio of
3000 conidia/g of soil (Abawi and Pastor Corrales, 1990). At sowing, surface sterilized bean seeds soaked in the BCA suspension
(2  105 cells/mL) for 24 h were sown in each pot (10 seeds/pot).
Pots contaminated by pathogens only and non-treated ones (without fungal) were considered as controls. The pots were arranged in
a greenhouse (28 ± 2 C) in a randomized block designed in three
replicates, cultivated and watered as needed. The treatments were
as follows: T. atroviridae alone; F. solani alone; T. atroviridae + F.
solani; and control (sterile soil alone). Four weeks after sowing,
growth parameters (root length, shoot length and vigor index)
were recorded. The Disease Severity (DS) and Disease Incidence
(DI) were assessed 28 days after inoculation for each treatment.
DS was estimated visually by assessing necrotic lesions on the
roots and hypocotyls using the 1–9 rating scale of the CIAT
(Abawi and Pastor Corrales, 1990) to score the disease. The DS percentage was determined according to the formula of Filion et a
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
moved with a cork borer from a seven days old culture and inoculated in 50 mL sterilized PDB in 100 mL flasks and incubated at25 ± 2 C under orbital shaking at 120 rpm for 10 days. Upon incubation, the culture was filtered through whatman N1 filter paper.Two hundred and forty healthy bean seeds without cracks andother visible deformations were selected and surface sterilizedwith 3% sodium hypochlorite for 1 min, rinsed three times in sterile distilled water and air dried overnight. The sterile bean seedswere soaked in F. solani culture filtrate solution prepared in PDBat 100%, 80%, 60%, and 40% respectively for 6 h. The seeds werethereafter transferred in Petri dishes (20 seeds/dish) containing filter papers on which 2 ml of respective culture filtrates were pipetted. Seeds soaked in sterile distilled water were used as control.The test was done in duplicate and the germination percentageswere determined in each treatment as a function of the total number of seeds.2.3.3.2. Ability of T. atroviridae to promote seeds germination andprotect against F. solani attack. Sterile bean seeds were soaked for24 h in 20 mL of T. atroviridae conidia suspension prepared at105, 2  105, 4  105 and 8  105 cells/mL respectively. 24 h after,beans seeds were transferred onto PDA plates in presence(4  105 cells/mL) and absence of pathogenic fungus (F. solani).The control sets consisted of plates containing bean seeds withoutany fungi, bean seeds with either pathogenic or BCA. The experiment was performed in duplicate with 20 seeds/dish. The seedswere observed for 10 days and the percentage of germinationwas determined by comparison with the controls (Kumar et al.,2014).2.4. Pot experimentsThe soil used was classified as Rhodic kanduidlut (according tothe U.S. soil taxonomy) and was collected from the A horizon ofcommon bean farms around Yaoundé. The soil was air-dried,R.M.K. Toghueo et al. / Biological Control 96 (2016) 8–20 11passed through a 4-mm sieve before mixing at a 3:1 v/v proportionwith river sand. The soil-sand mixture was then autoclaved threetimes at 121 C for 30 min. The sterilized soil was contaminatedwith F. solani conidia and filled in pots (5 kg/pot) with a ratio of3000 conidia/g of soil (Abawi and Pastor Corrales, 1990). At sowing, surface sterilized bean seeds soaked in the BCA suspension(2  105 cells/mL) for 24 h were sown in each pot (10 seeds/pot).Pots contaminated by pathogens only and non-treated ones (without fungal) were considered as controls. The pots were arranged ina greenhouse (28 ± 2 C) in a randomized block designed in threereplicates, cultivated and watered as needed. The treatments wereas follows: T. atroviridae alone; F. solani alone; T. atroviridae + F.solani; and control (sterile soil alone). Four weeks after sowing,growth parameters (root length, shoot length and vigor index)were recorded. The Disease Severity (DS) and Disease Incidence(DI) were assessed 28 days after inoculation for each treatment.DS was estimated visually by assessing necrotic lesions on theroots and hypocotyls using the 1–9 rating scale of the CIAT(Abawi and Pastor Corrales, 1990) to score the disease. The DS percentage was determined according to the formula of Filion et a
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
ย้ายที่มีหนอนเจาะก๊อกจากวัฒนธรรมอายุได้เจ็ดวันและเชื้อใน 50 มลฆ่าเชื้อ PDB ในขวด 100 มิลลิลิตรและบ่มที่อุณหภูมิ
25 ± 2 องศาเซลเซียสภายใต้การโคจรเขย่าที่ 120 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 วัน เมื่อบ่มเพาะวัฒนธรรมที่ถูกกรองผ่าน Whatman N? กระดาษ 1 ตัวกรอง.
สองร้อยสี่สิบเมล็ดถั่วมีสุขภาพดีโดยไม่ต้องรอยแตกและ
รูปร่างที่มองเห็นได้อื่น ๆ ที่ได้รับการคัดเลือกและพื้นผิวที่ผ่านการฆ่าเชื้อ
ด้วยโซเดียมไฮโปคลอไรต์ 3% เป็นเวลา 1 นาทีล้างสามครั้งในน้ำกลั่นผ่านการฆ่าเชื้อและ อากาศแห้งในชั่วข้ามคืน เมล็ดถั่วหมัน
ถูกแช่ในสารละลายวัฒนธรรมกรอง solani เอฟเตรียมใน PDB
ที่ 100%, 80%, 60% และ 40% ตามลำดับเวลา 6 ชั่วโมง เมล็ดถูก
โอนหลังจากนั้นในจานเลี้ยงเชื้อ (20 เมล็ด / จาน) ที่มีเอกสารตัวกรองที่ 2 มิลลิลิตรกรองวัฒนธรรมตามลำดับปิเปต เมล็ดแช่ในน้ำกลั่นปลอดเชื้อถูกนำมาใช้เป็นตัวควบคุม.
การทดสอบได้ทำในที่ซ้ำกันและเปอร์เซ็นต์การงอก
ได้รับการพิจารณาในการรักษาแต่ละครั้งเป็นหน้าที่ของจำนวนเสียงทั้งหมดของเมล็ด.
2.3.3.2 ความสามารถของ T. atroviridae เพื่อส่งเสริมเมล็ดงอกและการ
ป้องกันการโจมตีเอฟ solani เมล็ดถั่วหมันถูกแช่
24 ชั่วโมงใน 20 มลที atroviridae ระงับ conidia เตรียมที่
105, 2 หรือไม่? 105, 4? 105 และ 8? 105 เซลล์ / มิลลิลิตรตามลำดับ 24 ชั่วโมงหลังจากนั้น
เมล็ดถั่วถูกโอนไปยังแผ่น PDA ในการแสดงตน
(4? 105 เซลล์ / มิลลิลิตร) และการขาดของเชื้อราที่ทำให้เกิดโรค (เอฟ solani).
ชุดควบคุมประกอบด้วยแผ่นที่มีเมล็ดถั่วโดยไม่ต้อง
เชื้อราใด ๆ เมล็ดถั่วมีทั้งที่ทำให้เกิดโรค หรือเก็บกวาด การทดลองดำเนินการในที่ซ้ำกันมี 20 เมล็ด / จาน เมล็ด
ถูกตั้งข้อสังเกตเป็นเวลา 10 วันและร้อยละของการงอก
ถูกกำหนดโดยการเปรียบเทียบกับการควบคุม (Kumar et al.,
2014).
2.4 การทดลองหม้อ
ดินที่ใช้ถูกจัดเป็น Rhodic kanduidlut (ตาม
อนุกรมวิธานดินสหรัฐ) และได้รับการเก็บรวบรวมจากขอบฟ้าของ
ฟาร์มถั่วแขกรอบยาอุนเด ดินเป็นอากาศแห้ง,
RMK Toghueo et al, / การควบคุมทางชีวภาพ 96 (2016) 8-20 11
ผ่าน 4 มมตะแกรงก่อนที่จะผสมที่ 3: สัดส่วน 1 V / V
ด้วยทรายแม่น้ำ ผสมดินทรายอิฐแล้วสาม
ครั้งที่ 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที ดินที่ผ่านการฆ่าเชื้อปนเปื้อน
กับเอฟ solani สปอร์และเต็มไปในกระถาง (5 กก. / กระถาง) มีอัตราส่วนของ
3000 ปอร์ / กรัมของดิน (Abawi และบาทหลวงกอร์ราเล, 1990) ที่หว่านพื้นผิวที่ผ่านการฆ่าเชื้อเมล็ดถั่วแช่ในการระงับการเก็บกวาด
(2? 105 เซลล์ / มิลลิลิตร) เป็นเวลา 24 ชั่วโมงถูกหว่านในแต่ละหม้อ (10 เมล็ด / หม้อ).
กระถางปนเปื้อนจากเชื้อโรคเท่านั้นและคนที่ไม่ได้รับการรักษา (ไม่เชื้อรา) เป็น ถือว่าเป็นตัวควบคุม หม้อถูกจัดให้อยู่ใน
เรือนกระจก (28 ± 2 องศาเซลเซียส) ในบล็อกสุ่มออกแบบในสาม
ซ้ำปลูกและรดน้ำตามความจำเป็น การรักษามี
ดังนี้ T. atroviridae คนเดียว; F. solani คนเดียว; T. atroviridae + F.
solani; และการควบคุม (ดินหมันคนเดียว) สี่สัปดาห์หลังหยอดเมล็ด,
การเจริญเติบโต (ความยาวรากยิงยาวและดัชนีความแข็งแรง)
ถูกบันทึกไว้ โรคความรุนแรง (DS) และโรคอุบัติการณ์
(DI) ได้รับการประเมิน 28 วันหลังจากการฉีดวัคซีนสำหรับการรักษาแต่ละ.
DS เป็นที่คาดสายตาโดยการประเมินแผลฉีกใน
รากและลำต้นใต้ใบเลี้ยงใช้ขนาด 1-9 คะแนนของ CIAT
(Abawi และบาทหลวงกอร์ราเล , 1990) ที่จะทำคะแนนโรค ร้อยละ DS ถูกกำหนดตามสูตรของ Filion และการให้
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
ย้ายกับหนอนจุกจาก 7 วันวัฒนธรรมและหัวเชื้อใน 50 ml ในขวดฆ่าเชื้อ PDB 100 มล. บ่มที่25 ± 2 C ภายใต้สั่นโคจรที่ 120 รอบต่อนาที เป็นเวลา 10 วัน เมื่อบ่ม , วัฒนธรรม whatman N1 กรองผ่านกระดาษกรองสองร้อยสี่สิบ มีสุขภาพดี ไม่มีรอยแตก และถั่วเมล็ดรูปที่มองเห็นอื่น ๆเพื่อนำมาฟอกฆ่าเชื้อ3 % โซเดียมไฮโปคลอไรด์ 1 นาที , ล้าง 3 ครั้งฆ่าเชื้อน้ำและอากาศแห้งข้ามคืน เมล็ดถั่วที่ปลอดเชื้อเปียกโชกใน F . solani เส้นใยเตรียมสารละลายโดยวัฒนธรรมที่ 100% , 80% , 60% และ 40% ตามลำดับ 6 . เมล็ดคือหลังจากนั้นย้ายไปในจานเลี้ยงเชื้อ ( 20 เม็ด / จาน ) ที่มีตัวกรองเอกสารที่ 2 มิลลิลิตร สารละลายแต่ละวัฒนธรรมมี pipetted . เมล็ดที่แช่ในน้ำกลั่นปลอดเชื้อที่ใช้ควบคุมการทดลองได้กระทำในที่ซ้ำกันและความงอกมีความตั้งใจในการรักษาแต่ละครั้งเป็นฟังก์ชันของจํานวนของเมล็ด2.3.3.2 . ความสามารถของ atroviridae ส่งเสริมพันธุ์ และป้องกัน F . solani โจมตี เมล็ดถั่วหมันเปียกโชกสำหรับ24 ชั่วโมง 20 ml ของ atroviridae โคนิแขวนเตรียมไว้ที่105 , 105 , 4 และ 8 ) เซลล์ / มิลลิลิตร ตามลำดับ 24 ชั่วโมงหลังจากเมล็ดถั่วที่ถูกโอนไปยังจานอยู่ในพีดีเอ( 4 ) เซลล์ / มิลลิลิตร ) และการขาดของโรคเชื้อรา ( F . solani )การควบคุมชุดประกอบด้วยแผ่นบรรจุเมล็ดถั่วไม่มีใด ๆเมล็ดถั่ว มีทั้งเชื้อโรค เชื้อรา หรือ BCA . ทดสอบในที่ซ้ำกันกับ 20 เม็ด / จาน เมล็ดจำนวน 10 วัน และเปอร์เซ็นต์ความงอกถูกกำหนดโดยการเปรียบเทียบกับการควบคุม ( Kumar et al . ,2014 )2.4 . หม้อการทดลองดินที่ใช้จัดเป็น rhodic kanduidlut ( ตามอนุกรมวิธานของดิน ) และรวบรวมจากขอบฟ้าของไร่ถั่วทั่วไปรอบๆยาอุนเด . ดิน คือ อากาศแห้งr.m.k. toghueo et al . ควบคุมทางชีววิทยา / 96 ( 2016 ) 8 – 20 11ผ่านตะแกรงก่อน 4-mm ผสมที่สัดส่วน 3 : 1 v / Vกับทรายแม่น้ำ . ดินผสมทราย แล้วสังเคราะห์ 3ครั้ง ใน 121 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 30 นาที โดยดินที่ปนเปื้อนกับ F . solani โคนิบรรจุในกระถาง ( 5 กก. / หม้อ ) ด้วยอัตราส่วนของ3000 conidia / กรัมของดิน ( abawi กับบาทหลวง Corrales , 2533 ) ที่เพาะเมล็ด , ฟอกฆ่าเชื้อเมล็ดถั่วแช่ใน BCA ระงับ( 2 ) เซลล์ / มิลลิลิตร ) ตลอด 24 ชั่วโมง ( 10 เมล็ดหว่านในแต่ละหม้อหม้อ / )กระถางที่ปนเปื้อนจากเชื้อโรคเท่านั้น และไม่ถือว่าคน ( ไม่มีเชื้อรา ) ก็ถือเป็นการควบคุม ถูกจัดอยู่ในหม้อเรือนกระจก ( 28 ± 2 C ) ในการศึกษาออกแบบสามบล็อกได้แก่ การเพาะเลี้ยง และรดน้ำตามต้องการ การรักษาคือดังนี้ ต. atroviridae คนเดียว ; F . solani คนเดียว atroviridae + F ; Tเลท และการควบคุม ( หมันดินเพียงอย่างเดียว ) สี่สัปดาห์หลังจากเพาะเมล็ด ,พารามิเตอร์การเติบโต ( ความยาวราก ความยาวยอดและดัชนีความแข็งแรง )มีการบันทึก โรคความรุนแรง ( DS ) และการเกิดโรค( ตี้ ) มีการประเมิน 28 วันหลังจากที่ได้รับการรักษาแต่ละDS ประมาณสายตา โดยประเมินแผลเนื้อเยื่อตายในรากและสารโดยใช้ 1 – 9 ระดับของเกี๊ยต( abawi กับบาทหลวง Corrales , 2533 ) ให้คะแนน โรค DS เป็นแน่วแน่ตามสูตรของฟิลเยิ่น และ เป็น
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2025 I Love Translation. All reserved.

E-mail: