Biological variables- Chl a measure

Biological variables- Chl a measurement: For Chl a determination, 305 ml of water was withdrawn from each bag at each subsampling time. The water was filtered through 25 mm GF/F filters at ≤ 70 mm Hg vacuum and filters were frozen at –20c until analysis. Acetone (90) was added to extract the pigments 24h prior to analysis Pigments were quantified with a Turner 10AU fluorometer as described in Strickland and Parsons (1972)
Primary production: Total primary production (PP) was measured with the dual labeling technique after Slawyk et al. (1977). Separate incubations were run on aliquots taken from each treatment bag 24 h after the ash or Fe addition (at time equals I d [T1]) and at the end of the 6 d incubation period (T6). For each experiment, 500 mL, of water was withdrawn from the respective treatment bag and transferred to a 500 ml, polycarbonate(PC) bottle. For T1 , a PC bottle was also filled with seawater collected from 10m depth with the Teflon diaphragm pump at the same time as the treatment bag to serve as a blank. At T6, one extra 500 mL, sample was withdrawn from one bag of each treatment to serve as a blank. The PC bottles were inoculated with NaH13CO3 to obtain a final concentration of 200 umol L-1. The blanks were filtered immediately on precombusted 25 mm GF/F filters. The parallel incubation bottles were placed in the incubators for a period of 4-6 h (between 17:00 h and 23:00 h Pacific Daylight Time) and ended with sunset. The experiment was stopped by filtering the water through precombusted Whatman 25 mm GF/F filters. The filters were placed in open cryovials were then capped and kept in Drierite until onshore analysis. The 13C enrichment of the organic material on dried filters was measured in the laboratory using an isotope-ratio mass spectrometer (Delta V advantage, Thermo Electron) coupled to an elemental analyzer (Costech ECS-4010) following the procedures described in Blais et al. (2012).
DMS and DMSP concentrations: DMS and DMSP concentrations were measured following the techniques.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ชีวภาพแปร-Chl การประเมิน: กำหนด 305 ml น้ำสำหรับ Chl ถูกถอนจากกระเป๋าแต่ละเวลาแต่ละ subsampling น้ำที่กรองผ่านตัวกรอง GF/F 25 มม.ที่≤ 70 mm Hg ดูด และกรองถูกแช่แข็งที่ –20 c จนถึงการวิเคราะห์ อะซีโตน (90) ถูกเพิ่มเข้ามาเพื่อแยกสี 24 ชมก่อนวิเคราะห์สีได้ quantified กับ fluorometer 10AU เทอร์เนอร์ใน Strickland และพาร์สันส์ (1972)ผลิตหลัก: ผลิตหลักรวม (PP) ถูกวัด ด้วยเทคนิคการติดฉลากคู่หลัง Slawyk et al. (1977) Incubations แยกถูกเรียกใช้บน aliquots มาเถ้าหรือ Fe เพิ่มจากถุงละรักษา 24 ชม (เวลาเท่ากับฉัน d [T1]) และ เมื่อสิ้นสุดระยะฟักตัวของ 6 d (T6) สำหรับการทดลองแต่ละ 500 mL น้ำถูกถอนจากกระเป๋ารักษาที่เกี่ยวข้อง และโอนย้ายไปเป็นขนาด 500 มล. ขวด polycarbonate(PC) สำหรับ T1 ขวด PC ถูกเติม ด้วยน้ำทะเลที่รวบรวมจากความลึก 10 เมตร มีปั๊มกะบังลมเทฟลอนกันเป็นกระเป๋ารักษาเป็นช่องว่างด้วย ที่ T6, mL พิเศษ 500 หนึ่ง อย่างถูกถอนจากถุงของแต่ละทรีทเม้นต์เพื่อเป็นช่องว่าง ขวด PC มี inoculated กับ NaH13CO3 เพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้ายของ umol 200 L-1 ช่องว่างที่มีกรองทันทีบนกรอง GF/F 25 มม. precombusted ขวดขนานบ่มถูกวางในการผลิตและในระยะ 4-6 h (ระหว่าง h 17:00 และ 23:00 h เวลาตามฤดูกาลแปซิฟิก) และสิ้นสุด ด้วยพระอาทิตย์ตกดิน การทดลองถูกทำให้หยุด โดยการกรองน้ำผ่านตัวกรอง precombusted Whatman 25 มม. GF/F ตัวกรองไว้ในเปิด cryovials แล้วปรบมือ และเก็บไว้ใน Drierite จนกว่าจะวิเคราะห์พลังงาน ขอ 13C วัสดุอินทรีย์ในกรองแห้งถูกวัดในห้องปฏิบัติการโดยใช้อัตราส่วนไอโซโทปโดยรวมสเปกโตรมิเตอร์ (Delta V ประโยชน์ เทอร์โมอิเล็กตรอน) ควบคู่กับการธาตุวิเคราะห์ (Costech ECS-4010) ตามขั้นตอนที่อธิบายไว้ใน Blais et al. (2012)ความเข้มข้นของ DMS และ DMSP: ความเข้มข้นของ DMS และ DMSP ถูกวัดตามเทคนิคต่าง ๆ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ทางชีวภาพ variables- Chl วัด: สำหรับ Chl กำหนด 305 ml ของน้ำถูกถอนออกจากกระเป๋าแต่ละที่แต่ละครั้ง subsampling น้ำที่ถูกกรองผ่าน 25 มม GF / F ตัวกรองที่≤ 70 มิลลิเมตรปรอทสูญญากาศและตัวกรองที่ถูกแช่แข็ง -20C จนการวิเคราะห์ อะซิโตน (90) ถูกบันทึกอยู่ในสารสกัดจากเม็ดสี 24 ชั่วโมงก่อนที่จะมีรงควัตถุวิเคราะห์ถูกวัดด้วยเทอร์เนอ 10AU fluorometer ที่อธิบายไว้ใน Strickland และพาร์สันส์ (1972)
การผลิตหลัก: การผลิตหลักรวม (PP) วัดด้วยเทคนิคการติดฉลากคู่หลังจาก Slawyk et อัล (1977) ฟักตัวของเชื้อที่แยกทำงานใน aliquots นำมาจากการรักษาแต่ละถุง 24 ชั่วโมงหลังจากเถ้าหรือนอกจากเฟ (ในเวลาเท่ากับฉัน d [T1]) และในตอนท้ายของระยะฟักตัว d 6 (T6) สำหรับการทดสอบแต่ละ 500 มิลลิลิตรน้ำถูกถอนออกจากถุงรักษาตนและโอนไปยัง 500 มลโพลีคาร์บอเนต (PC) ขวด สำหรับ T1, ที่เต็มไปยังเครื่องคอมพิวเตอร์ที่มีขวดน้ำทะเลที่เก็บได้จากระดับความลึก 10 เมตรมีปั๊มไดอะแฟรมเทฟลอนในเวลาเดียวกับการรักษาถุงเพื่อทำหน้าที่เป็นที่ว่างเปล่า ที่ T6 หนึ่งพิเศษ 500 มิลลิลิตรตัวอย่างถูกถอนออกจากถุงหนึ่งของการรักษาแต่ละคนที่จะทำหน้าที่เป็นที่ว่างเปล่า ขวดเครื่องคอมพิวเตอร์ได้รับเชื้อด้วย NaH13CO3 เพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้าย 200 UMOL L-1 ช่องว่างที่ถูกกรองทันทีใน precombusted 25 มม GF / F ตัวกรอง ขวดบ่มขนานถูกวางไว้ในตู้อบเป็นระยะเวลา 4-6 ชั่วโมง (ระหว่าง 17:00 23:00 และเอชเอชแปซิฟิกเวลาตามฤดูกาล) และจบลงด้วยพระอาทิตย์ตก การทดลองก็หยุดโดยการกรองน้ำผ่าน precombusted เบอร์ 25 มม GF / F ตัวกรอง ตัวกรองถูกวางไว้ใน cryovials เปิดถูกปกคลุมแล้วและเก็บไว้ใน Drierite จนการวิเคราะห์บนบก เพิ่มคุณค่า 13C ของสารอินทรีย์ในกรองแห้งวัดในห้องปฏิบัติการโดยใช้ไอโซโทปอัตราส่วนสเปกโตรมิเตอร์มวล (Delta ประโยชน์วีเทอร์โมอิ) คู่กับวิเคราะห์ธาตุ (Costech ECS-4010) ทำตามขั้นตอนที่อธิบายไว้ใน Blais et al, (2012).
DMS และความเข้มข้น DMSP: DMS และความเข้มข้น DMSP วัดต่อไปนี้เทคนิค

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ตัวแปรชีวภาพ CHL การวัด : CHL การกําหนด , 305 มิลลิลิตรของน้ำถูกถอนออกจากกระเป๋าแต่ละใบในแต่ละค่าเวลา น้ำกรองผ่านตัวกรอง GF 25 มม. / F ที่≤ 70 มม. ปรอท และตัวกรองสูญญากาศถูกแช่แข็งที่ - 20C ถึงการวิเคราะห์อะซิโตน ( 90 ) เพิ่มสารสกัดจากเม็ดสี 24 ชั่วโมงก่อนที่จะวิเคราะห์วัดสีด้วยเทอร์เนอร์ 10au ฟลู โรมิเตอร์ตามที่อธิบายไว้ใน Strickland และพาร์สัน ( 1972 )
การผลิตหลัก : การผลิตหลัก ( PP ) วัดด้วยระบบการติดฉลากเทคนิคหลัง slawyk et al . ( 1977 )แยก incubations กำลังวิ่งเฉยๆ ถ่ายจากกระเป๋า 24 ชั่วโมงหลังจากการรักษาแต่ละเถ้าหรือเหล็ก 2 ( เวลาเท่ากับ d [ T1 ] ) และที่จุดสิ้นสุดของระยะเวลาการบ่ม 6 D ( T6 ) สำหรับการทดลองแต่ละ 500 มล. ของน้ำที่ถูกถอนออกจากถุงรักษาที่เกี่ยวข้องและโอนไป 500 มิลลิลิตร โพลีคาร์บอเนต ( PC ) ขวด สำหรับ T1 ,พีซีขวดยังเต็มไปด้วยน้ำทะเลจำนวน 10 เมตรความลึกด้วย Teflon ปั๊มในเวลาเดียวกันเป็นถุงรักษาเพื่อใช้เป็นช่องว่าง ที่ T6 หนึ่งพิเศษ 500 มิลลิลิตร ตัวอย่างที่ถูกถอนออกจากถุงหนึ่งของการรักษาแต่ละครั้งจะใช้เป็นเปล่า พีซีขวดปลูกเชื้อด้วย nah13co3 เพื่อให้ได้ความเข้มข้นสุดท้าย 200 โดยวิธี L-1 .ช่องว่างได้ทันทีบน precombusted 25 มม. กรองกรอง GF / F . ขวดการบ่มขนานอยู่ในตู้เป็นเวลา 4-6 ชั่วโมง ( ระหว่าง 17 : 00 ชั่วโมงและ 23 : 00 h แปซิฟิกเวลากลางวัน ) และสุดท้ายกับพระอาทิตย์ตก การทดลองที่ถูกหยุดโดยการกรองน้ำผ่าน precombusted whatman 25 มม. GF / F ตัวกรอง