- ข้อความ
- ประวัติศาสตร์
2.2. Sampling and microscopyAt 3-da
2.2. Sampling and microscopy
At 3-day intervals, we collected samples for microscopic analysis
and preserved them immediately with 5% glutaraldehyde, v/v.
We used settling chambers and inverted phase-contrast microscopy
for phytoplankton identification (at least to the level of Genus)
and enumeration (Utermo¨ hl, 1958). Using 200 and 400 magnification,
between 20 and 40 fields of view were randomly selected
and counted, typically resulting in 200–300 units counted, where
a unit was an individual phytoplankton cell or a single colony/
filament. We used this same technique (Utermo¨ hl, 1958) for
microzooplankton identification and enumeration counting at least
for 100 individuals or the entire settled area. We categorized
microzooplankton into protozoa (separated into tintinnids and all
other protozoa), rotifers, and copepod nauplii and copepodids.
Adult copepods were visible to the naked eye in the incubators.
Therefore, counts of copepod adults were taken for the entire
incubator volume, but were not identified to species level. For
estimation of phytoplankton biomass, we measured in vivo fluorescence
every third day of unpreserved, unextracted water
samples using a Turner Designs 10-AU fluorometer (Pinto et al.,
2001). Microzooplankton and phytoplankton individual body
volumes were estimated by measuring dimensions of common
geometric shapes which best fit the shape of the individual
zooplankter (Wetzel and Likens, 1991). For the purposes of this
manuscript, we assumed that changes in biovolume reflected
changes in biomass. As our primary goal for microscopic analysis
was to assess relative changes in community composition, biovolume
is a more useful measurement over carbon due to its
resolution power, simplicity, and low error (Hillebrand et al., 1999).
Use of carbon:volume ratios to convert from biovolume to carbon
are problematic, as these ratios have not been empirically determined
for all taxa (Mullin et al., 1966; Menden-Deuer and Lessard,
2000). Finally, we only report on phytoplankton assemblage
composition from microscopic counts performed on day 6 and 9 of
the experiments, a period which typically captured succession
dynamics and large changes in biovolume. All other analyses are
based on data collected over the entire 24-day experiments.
At 3-day intervals, we collected samples for microscopic analysis
and preserved them immediately with 5% glutaraldehyde, v/v.
We used settling chambers and inverted phase-contrast microscopy
for phytoplankton identification (at least to the level of Genus)
and enumeration (Utermo¨ hl, 1958). Using 200 and 400 magnification,
between 20 and 40 fields of view were randomly selected
and counted, typically resulting in 200–300 units counted, where
a unit was an individual phytoplankton cell or a single colony/
filament. We used this same technique (Utermo¨ hl, 1958) for
microzooplankton identification and enumeration counting at least
for 100 individuals or the entire settled area. We categorized
microzooplankton into protozoa (separated into tintinnids and all
other protozoa), rotifers, and copepod nauplii and copepodids.
Adult copepods were visible to the naked eye in the incubators.
Therefore, counts of copepod adults were taken for the entire
incubator volume, but were not identified to species level. For
estimation of phytoplankton biomass, we measured in vivo fluorescence
every third day of unpreserved, unextracted water
samples using a Turner Designs 10-AU fluorometer (Pinto et al.,
2001). Microzooplankton and phytoplankton individual body
volumes were estimated by measuring dimensions of common
geometric shapes which best fit the shape of the individual
zooplankter (Wetzel and Likens, 1991). For the purposes of this
manuscript, we assumed that changes in biovolume reflected
changes in biomass. As our primary goal for microscopic analysis
was to assess relative changes in community composition, biovolume
is a more useful measurement over carbon due to its
resolution power, simplicity, and low error (Hillebrand et al., 1999).
Use of carbon:volume ratios to convert from biovolume to carbon
are problematic, as these ratios have not been empirically determined
for all taxa (Mullin et al., 1966; Menden-Deuer and Lessard,
2000). Finally, we only report on phytoplankton assemblage
composition from microscopic counts performed on day 6 and 9 of
the experiments, a period which typically captured succession
dynamics and large changes in biovolume. All other analyses are
based on data collected over the entire 24-day experiments.
0/5000
2.2 การสุ่มตัวอย่าง และ microscopyในช่วงเวลา 3 วัน เรารวบรวมตัวอย่างการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์และรักษาได้ทันทีกับ 5% glutaraldehyde, v/vเราใช้ตกตะกอนหอ และกลับ microscopy ระยะความคมชัดรหัส phytoplankton (น้อยระดับของสกุล)และแจงนับ (Utermo¨ hl, 1958) ใช้อัตราส่วน 200 และ 400ระหว่าง 20 และ 40 เขตข้อมูลของมุมมองถูกสุ่มเลือกและตรวจ นับ ผล 200 – 300 หน่วยนับ ซึ่งโดยทั่วไปหน่วยมีการเซลล์ละ phytoplankton หรือโคโลนีเดี่ยว /ใย เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ (Utermo¨ hl, 1958)รหัส microzooplankton และแจงนับนับน้อย100 บุคคลหรือพื้นที่ชำระทั้งหมด เราแบ่งmicrozooplankton เป็นโพรโทซัว (แบ่งออกเป็น tintinnids และทั้งหมดอื่น ๆ โพรโทซัว), rotifers และ copepod nauplii และ copepodidsCopepods ที่ผู้ใหญ่มองเห็นตาเปล่าในการผลิตและได้ดังนั้น การตรวจนับของ copepod ผู้ใหญ่ที่ถ่ายสำหรับทั้งหมดบ่มเพาะวิสาหกิจเสียง แต่ไม่ได้ระบุระดับสายพันธุ์ สำหรับการประเมินของชีวมวล phytoplankton เราวัด fluorescence ในสัตว์ทดลองทุก ๆ สามวันน้ำ unpreserved, unextractedตัวอย่างการใช้เทอร์เนอร์ออก 10-อู fluorometer (Pinto et al.,2001) . Microzooplankton และ phytoplankton แต่ละตัวไดรฟ์ข้อมูลถูกประเมิน โดยการวัดขนาดของทั่วไปรูปทรงเรขาคณิตที่ดีที่สุดให้พอดีกับรูปร่างของแต่ละบุคคลzooplankter (Wetzel และ Likens, 1991) สำหรับวัตถุประสงค์นี้ฉบับ เราสันนิษฐานว่า การเปลี่ยนแปลงใน biovolume ผลการเปลี่ยนแปลงในชีวมวล เป็นเป้าหมายหลักของเราสำหรับการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์มีการ ประเมินการเปลี่ยนแปลงในองค์ประกอบชุมชน biovolume สัมพันธ์มีการประเมินประโยชน์กว่าคาร์บอนเนื่องของแก้ปัญหาพลังงาน เรียบง่าย และข้อผิดพลาดต่ำ (Hillebrand et al., 1999)ใช้อัตราส่วนคาร์บอน: ไดรฟ์ข้อมูลเพื่อแปลงจาก biovolume คาร์บอนมีปัญหา เป็นอัตราส่วนเหล่านี้ไม่ได้รับการกำหน empiricallyสำหรับทั้งหมด taxa (Mullin et al., 1966 Menden Deuer และ Lessard2000) ในที่สุด เราเพียงรายงาน phytoplankton ผสมผสานดำเนินการองค์ประกอบจากการตรวจนับด้วยกล้องจุลทรรศน์ในวันที่ 6 และ 9 ของการทดลอง รอบระยะเวลาซึ่งโดยทั่วไปยึดบัลลังก์dynamics และการเปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ใน biovolume วิเคราะห์อื่น ๆ ได้ตามข้อมูลที่รวบรวมผ่านการทดลอง 24 วันทั้งหมด
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.2. Sampling and microscopy
At 3-day intervals, we collected samples for microscopic analysis
and preserved them immediately with 5% glutaraldehyde, v/v.
We used settling chambers and inverted phase-contrast microscopy
for phytoplankton identification (at least to the level of Genus)
and enumeration (Utermo¨ hl, 1958). Using 200 and 400 magnification,
between 20 and 40 fields of view were randomly selected
and counted, typically resulting in 200–300 units counted, where
a unit was an individual phytoplankton cell or a single colony/
filament. We used this same technique (Utermo¨ hl, 1958) for
microzooplankton identification and enumeration counting at least
for 100 individuals or the entire settled area. We categorized
microzooplankton into protozoa (separated into tintinnids and all
other protozoa), rotifers, and copepod nauplii and copepodids.
Adult copepods were visible to the naked eye in the incubators.
Therefore, counts of copepod adults were taken for the entire
incubator volume, but were not identified to species level. For
estimation of phytoplankton biomass, we measured in vivo fluorescence
every third day of unpreserved, unextracted water
samples using a Turner Designs 10-AU fluorometer (Pinto et al.,
2001). Microzooplankton and phytoplankton individual body
volumes were estimated by measuring dimensions of common
geometric shapes which best fit the shape of the individual
zooplankter (Wetzel and Likens, 1991). For the purposes of this
manuscript, we assumed that changes in biovolume reflected
changes in biomass. As our primary goal for microscopic analysis
was to assess relative changes in community composition, biovolume
is a more useful measurement over carbon due to its
resolution power, simplicity, and low error (Hillebrand et al., 1999).
Use of carbon:volume ratios to convert from biovolume to carbon
are problematic, as these ratios have not been empirically determined
for all taxa (Mullin et al., 1966; Menden-Deuer and Lessard,
2000). Finally, we only report on phytoplankton assemblage
composition from microscopic counts performed on day 6 and 9 of
the experiments, a period which typically captured succession
dynamics and large changes in biovolume. All other analyses are
based on data collected over the entire 24-day experiments.
At 3-day intervals, we collected samples for microscopic analysis
and preserved them immediately with 5% glutaraldehyde, v/v.
We used settling chambers and inverted phase-contrast microscopy
for phytoplankton identification (at least to the level of Genus)
and enumeration (Utermo¨ hl, 1958). Using 200 and 400 magnification,
between 20 and 40 fields of view were randomly selected
and counted, typically resulting in 200–300 units counted, where
a unit was an individual phytoplankton cell or a single colony/
filament. We used this same technique (Utermo¨ hl, 1958) for
microzooplankton identification and enumeration counting at least
for 100 individuals or the entire settled area. We categorized
microzooplankton into protozoa (separated into tintinnids and all
other protozoa), rotifers, and copepod nauplii and copepodids.
Adult copepods were visible to the naked eye in the incubators.
Therefore, counts of copepod adults were taken for the entire
incubator volume, but were not identified to species level. For
estimation of phytoplankton biomass, we measured in vivo fluorescence
every third day of unpreserved, unextracted water
samples using a Turner Designs 10-AU fluorometer (Pinto et al.,
2001). Microzooplankton and phytoplankton individual body
volumes were estimated by measuring dimensions of common
geometric shapes which best fit the shape of the individual
zooplankter (Wetzel and Likens, 1991). For the purposes of this
manuscript, we assumed that changes in biovolume reflected
changes in biomass. As our primary goal for microscopic analysis
was to assess relative changes in community composition, biovolume
is a more useful measurement over carbon due to its
resolution power, simplicity, and low error (Hillebrand et al., 1999).
Use of carbon:volume ratios to convert from biovolume to carbon
are problematic, as these ratios have not been empirically determined
for all taxa (Mullin et al., 1966; Menden-Deuer and Lessard,
2000). Finally, we only report on phytoplankton assemblage
composition from microscopic counts performed on day 6 and 9 of
the experiments, a period which typically captured succession
dynamics and large changes in biovolume. All other analyses are
based on data collected over the entire 24-day experiments.
การแปล กรุณารอสักครู่..
2.2 . ตัวอย่างและการใช้กล้องจุลทรรศน์ในช่วงเวลา 3 วัน
เราได้เก็บตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์ด้วยรักษาพวกเขาทันที 5 % glutaraldehyde , V / V .
เราใช้จ่ายเงินห้องคว่ำสำปั้นกล้องจุลทรรศน์
ชนิดแพลงก์ตอนพืช ( อย่างน้อยในระดับสกุล ) และ ( utermo
แจงตั้ง HL , 1958 ) ใช้ 200 และ 400 ขยาย
,ระหว่าง 20 และ 40 ไร่วิวสุ่ม
นับมักจะเป็นผลใน 200 – 300 หน่วยนับที่หน่วยเป็นแพลงก์ตอนพืช
แต่ละเซลล์หรือเส้นใยโคโลนี /
โสด เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ ( utermo ตั้ง HL , 1958 ) การแจงนับและ microzooplankton
อย่างน้อย 100 บุคคลหรือทั้งจัดการพื้นที่ เราแบ่ง
microzooplankton เป็นโปรโตซัว ( แยกเป็น tintinnids และทั้งหมดอื่น ๆ (
) , โรติเฟอร์ และ nauplii และสัตว์ copepodids .
โคพิปอดผู้ใหญ่ถูกมองเห็นได้ด้วยตาเปล่าในตู้ฟักไข่ .
ดังนั้นนับจากผู้ใหญ่เขตถ่ายหาปริมาตรตู้ทั้งหมด
, แต่ไม่ได้ระบุชนิดระดับ สำหรับการประมาณค่ามวลชีวภาพของแพลงก์ตอนพืช
เราวัดได้ในสิ่งมีชีวิตเรืองแสงทุก 3 วัน unpreserved unextracted , น้ำ
ตัวอย่างโดยใช้เทอร์เนอร์การออกแบบ 10-au ฟลู โรมิเตอร์ ( ปิ่นโต et al . ,
2001 ) microzooplankton และปริมาณแพลงก์ตอนพืชร่างกาย
บุคคลประมาณโดยการวัดมิติของรูปทรงเรขาคณิตที่พบ
ที่ดีที่สุดเหมาะสมกับรูปร่างของแต่ละ zooplankter
( ดาวน์โหลด และ likens , 1991 ) สำหรับวัตถุประสงค์ของบทความนี้
,เราสันนิษฐานว่า การเปลี่ยนแปลงใน biovolume สะท้อน
เปลี่ยนแปลงมวลชีวภาพ เป็นเป้าหมายหลักของเราสำหรับการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์ เพื่อประเมินการเปลี่ยนแปลง
biovolume องค์ประกอบญาติในชุมชน เป็นอีกวัดที่มีประโยชน์กว่าคาร์บอนเนื่องจาก
มติพลัง ความเรียบง่าย และผิดพลาดน้อย ( ฮิลลีเบรินด์ et al . , 1999 ) .
ใช้คาร์บอน : ปริมาณอัตราส่วนการแปลงจาก biovolume คาร์บอน
มีปัญหาขณะที่อัตราส่วนเหล่านี้ไม่ได้ถูกใช้เพื่อกำหนด
ซ่า ( มัลลิน et al . , 1966 ; เมนเด้น และตัว
deuer , 2000 ) เราก็รายงานเฉพาะในองค์ประกอบของประชาคมแพลงก์ตอนพืชจากนับด้วยกล้องจุลทรรศน์
แสดงในวันที่ 6 และ 9 ของ
การทดลองช่วงที่มักจะจับพลวัตและการเปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ใน biovolume
. การวิเคราะห์ทั้งหมดนี้
ขึ้นอยู่กับข้อมูลที่รวบรวมมาทั้งหมด 24 วัน การทดลอง
เราได้เก็บตัวอย่างเพื่อการวิเคราะห์ด้วยรักษาพวกเขาทันที 5 % glutaraldehyde , V / V .
เราใช้จ่ายเงินห้องคว่ำสำปั้นกล้องจุลทรรศน์
ชนิดแพลงก์ตอนพืช ( อย่างน้อยในระดับสกุล ) และ ( utermo
แจงตั้ง HL , 1958 ) ใช้ 200 และ 400 ขยาย
,ระหว่าง 20 และ 40 ไร่วิวสุ่ม
นับมักจะเป็นผลใน 200 – 300 หน่วยนับที่หน่วยเป็นแพลงก์ตอนพืช
แต่ละเซลล์หรือเส้นใยโคโลนี /
โสด เราใช้เทคนิคเดียวกันนี้ ( utermo ตั้ง HL , 1958 ) การแจงนับและ microzooplankton
อย่างน้อย 100 บุคคลหรือทั้งจัดการพื้นที่ เราแบ่ง
microzooplankton เป็นโปรโตซัว ( แยกเป็น tintinnids และทั้งหมดอื่น ๆ (
) , โรติเฟอร์ และ nauplii และสัตว์ copepodids .
โคพิปอดผู้ใหญ่ถูกมองเห็นได้ด้วยตาเปล่าในตู้ฟักไข่ .
ดังนั้นนับจากผู้ใหญ่เขตถ่ายหาปริมาตรตู้ทั้งหมด
, แต่ไม่ได้ระบุชนิดระดับ สำหรับการประมาณค่ามวลชีวภาพของแพลงก์ตอนพืช
เราวัดได้ในสิ่งมีชีวิตเรืองแสงทุก 3 วัน unpreserved unextracted , น้ำ
ตัวอย่างโดยใช้เทอร์เนอร์การออกแบบ 10-au ฟลู โรมิเตอร์ ( ปิ่นโต et al . ,
2001 ) microzooplankton และปริมาณแพลงก์ตอนพืชร่างกาย
บุคคลประมาณโดยการวัดมิติของรูปทรงเรขาคณิตที่พบ
ที่ดีที่สุดเหมาะสมกับรูปร่างของแต่ละ zooplankter
( ดาวน์โหลด และ likens , 1991 ) สำหรับวัตถุประสงค์ของบทความนี้
,เราสันนิษฐานว่า การเปลี่ยนแปลงใน biovolume สะท้อน
เปลี่ยนแปลงมวลชีวภาพ เป็นเป้าหมายหลักของเราสำหรับการวิเคราะห์ด้วยกล้องจุลทรรศน์ เพื่อประเมินการเปลี่ยนแปลง
biovolume องค์ประกอบญาติในชุมชน เป็นอีกวัดที่มีประโยชน์กว่าคาร์บอนเนื่องจาก
มติพลัง ความเรียบง่าย และผิดพลาดน้อย ( ฮิลลีเบรินด์ et al . , 1999 ) .
ใช้คาร์บอน : ปริมาณอัตราส่วนการแปลงจาก biovolume คาร์บอน
มีปัญหาขณะที่อัตราส่วนเหล่านี้ไม่ได้ถูกใช้เพื่อกำหนด
ซ่า ( มัลลิน et al . , 1966 ; เมนเด้น และตัว
deuer , 2000 ) เราก็รายงานเฉพาะในองค์ประกอบของประชาคมแพลงก์ตอนพืชจากนับด้วยกล้องจุลทรรศน์
แสดงในวันที่ 6 และ 9 ของ
การทดลองช่วงที่มักจะจับพลวัตและการเปลี่ยนแปลงขนาดใหญ่ใน biovolume
. การวิเคราะห์ทั้งหมดนี้
ขึ้นอยู่กับข้อมูลที่รวบรวมมาทั้งหมด 24 วัน การทดลอง
การแปล กรุณารอสักครู่..
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.
- ไม่แต่งตัว ไม่แต่งหน้า
- รอคุณมาเมืองไทยค่อยว่ากัน
- Last night you back?
- If you have any question
- รักแท้ไม่มีอยู่จริง
- มันทำให้ฉันขาวขึ้น
- ซอยหมู่บ้านเขาน้อย
- Tom yum Kung, just mention the name, it
- Wir sehen uns heute Abend
- นั่งคุยกับเพื่อนๆ
- The incubation period is around 24 to 48
- จากรูปที่27พบว่ามีเพียงgraphene coated P
- ท่านสามารถตรวจสอบการบันทึกลายนิ้วมือได้
- สามารถตรวจสอบได้จากตัวติดตาม
- ก็
- I Know I have A Heart Because I Feel Tha
- A mercurial.
- How long would it take ?
- จึงจะสามารถ
- พ่อฉันเป็นคนจีน แม่เป็นไทยภาคอีสาน
- Tumors
- IP rating
- Hume Studies (semiannual) updates biblio
- But instead u send me pictures of u play
