The application of artificial insem

The application of artificial insemination (AI) with liquid stored-semen of improved breed of boar is of paramount importance for upgradation of indigenous pigs in most of the developing countries. The advantages of AI could be maximized if spermatozoa were cryopreserved, since it is the best alternative for long-range distribution of high quality genetic material (Roca et al., 2006). Frozen semen could also be used to establish genetic resource banks for conservation of genetic diversity and even for reserve supplies in response to sudden disease outbreak (Yoshida, 2000). Although frozen boar semen has been available since long, a very low proportion of the commercial artificial inseminations are carried out in the pig utilizing frozen semen due to its lower survival post thaw that results in low farrowing rates and litter sizes (Roca et al., 2006 and Hernandez et al., 2007). However, there is diversity of opinion regarding fertility status of frozen boar semen.

The low fertility of frozen thawed boar semen could result from the damage sustained by the sperm cells during cooling, freezing and thawing processes of cryopreservation (Holt, 2000 and Watson, 2000) since boar spermatozoa are highly sensitive to cold shock when exposed to temperature below 15 °C (Gilmore et al., 1996). Boar sperm damage during freezing could be related to the lipid composition of sperm plasma membrane, oxidative stress and Reactive Oxygen Species (ROS) formation. An increased understanding of cryodamage is of utmost importance that could lead to improved cryopreservation methods rendering superior quality frozen semen and resultant higher fertility. The in vitro evaluation of sperm motility, sperm livability, membrane integrity, acrosome status, mitochondrial membrane potential (MMP) and lipid peroxidation (LPO) during cryopreservation process are good indicator of sperm quality and fertility status of spermatozoa.

Now-a-days cryopreservation method for boar semen has emphasized on various freezing strategies to improve the quality of post thawed spermatozoa, increase the number of spermatozoa for oocytes fertilization and reduced the sperm damage. It has been documented that sperm damages emanated during cryopreservation procedures could be mitigated to some extent through improvement in freezing strategies (Fiser and Fairfull, 1990, Woelders and Besten, 1993 and Roca et al., 2006). Adoption of suitable freezing protocol has resulted in improvement of cryopreservation technique in the boar (Eriksson and Rodriguez-Martinez, 2000). It has been reported that controlled rate of freezing method yielded superior post thaw sperm quality as compared to conventional freezing method (Verheyen et al., 1993, Petyim et al., 2007 and Kaeoket et al., 2008). A comparative study of different freezing methods helps find out a superior freezing method for production of frozen boar semen; moreover, few studies have been conducted in this aspect earlier. Therefore, a study was designed to assess the effect of conventional, and controlled freezing methods adopting freezing rates either of 20, 40 or 60 °C/min on sperm motility, live sperm, live intact acrosome, plasma membrane integrity, mitochondrial membrane potential and lipid peroxidation in order to find out a suitable freezing method for cryopreservation of boar semen.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

แอพลิเคชันของกองผสมเทียม (AI) มีของเหลวเก็บไว้น้ำเชื้อของหมูป่าปรับปรุงพันธุ์มีความสำคัญยิ่งสำหรับ upgradation ของสุกรพื้นเมืองในประเทศกำลังพัฒนาส่วนใหญ่ ข้อดีของ AI สามารถขยายได้ถ้าตัวอสุจิถูก cryopreserved เนื่องจากเป็นทางเลือกที่ดีที่สุดสำหรับการกระจายระยะไกลของสารพันธุกรรมคุณภาพสูง (โรกา et al. 2006) น้ำเชื้อแช่แข็งสามารถใช้ในการสร้างธนาคารทรัพยากรพันธุกรรมเพื่อ การอนุรักษ์ความหลากหลายทางพันธุกรรม และแม้กระทั่ง สำหรับอุปกรณ์สำรองในการตอบสนองอย่างฉับพลันโรคระบาด (โยชิดะ 2000) แม้ว่าน้ำเชื้อสุกรแช่แข็งตั้งแต่มียาว สัดส่วนต่ำมากของ inseminations การประดิษฐ์เชิงพาณิชย์ ที่ง ๆ ในหมูใช้น้ำเชื้อแช่แข็งเนื่องจาก thaw โพสต์การอยู่รอดต่ำที่ทำให้ปัญหาในเล้าคลอดราคาและขนาดครอก (โรกา et al. 2006 และว่ายน้ำ et al. 2007) อย่างไรก็ตาม มีหลากหลายความเห็นเกี่ยวกับสถานะความอุดมสมบูรณ์ของน้ำเชื้อสุกรแช่แข็งการสืบพันธุ์ของแช่แข็งเตรียมน้ำเชื้อสุกรต่ำอาจส่งผลเสียหายที่ยั่งยืน โดยเซลล์อสุจิระหว่างการทำความเย็น แช่แข็ง และละลายกระบวนการของการช่วย (โฮลท์ 2000 และ Watson, 2000) ตั้งแต่หมูป่าตัวอสุจิมีการช็อตเย็นเมื่อสัมผัสกับอุณหภูมิต่ำกว่า 15 ° C (Gilmore et al. 1996) หมูสเปิร์มความเสียหายในระหว่างการแช่แข็งอาจจะเกี่ยวข้องกับองค์ประกอบไขมันของเยื่อหุ้มเซลล์สเปิร์ม เครียด และก่อปฏิกิริยาชนิดออกซิเจน (ROS) ความเข้าใจที่เพิ่มขึ้นของ cryodamage เป็นความสำคัญสูงสุดที่อาจทำให้ช่วยปรับปรุงวิธีแสดงคุณภาพแช่แข็งน้ำเชื้อและเอาสูงความอุดมสมบูรณ์ ตัวบ่งชี้ที่ดีของสเปิร์มสถานะคุณภาพและความอุดมสมบูรณ์ของตัวอสุจิในหลอดทดลองประเมินการเคลื่อนไหวของอสุจิ อสุจิ livability ความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์ สถานะอะโครโซม ยลเมมเบรนที่มีศักยภาพ (MMP) และไขมัน peroxidation (LPO) ในระหว่างกระบวนการเพื่อช่วยได้วิธีช่วยตอนนี้มีวันสำหรับสุกรมีเน้นกลยุทธ์เยือกแข็งต่าง ๆ เพื่อปรับปรุงคุณภาพของตัวอสุจิที่เตรียมลงรายการบัญชี เพิ่มจำนวนของตัวอสุจิการปฏิสนธิเซลล์ไข่ และลดความเสียหายของสเปิร์ม มันได้รับการรับรองว่าหายอสุจิเล็ดลอดออกมาในระหว่างกระบวนการเพื่อช่วยอาจจะบรรเทาได้บ้างผ่านการปรับปรุงในกลยุทธ์ (Fiser และ Fairfull, 1990, Woelders และ Besten, 1993 และโรกา et al. 2006) การแช่แข็ง ของโพรโทคอลแช่แข็งที่เหมาะสมมีผลในการปรับปรุงเทคนิคช่วยในหมู (Eriksson และมาร์ติเนเกซ 2000) มีการรายงานอัตราที่ควบคุมวิธีการแช่แข็งให้ผลเหนือกว่าโพสต์ thaw สเปิร์มที่มีคุณภาพเมื่อเทียบกับวิธีการแช่แข็งทั่วไป (Verheyen et al. 1993, Petyim et al. 2007 และ Kaeoket et al. 2008) ศึกษาเปรียบเทียบวิธีแช่แข็งช่วยค้นหาห้องที่แช่แข็งวิธีการสำหรับการผลิตน้ำเชื้อสุกรแช่แข็ง นอกจากนี้ ศึกษาน้อยเป็นผู้ดำเนินการในลักษณะนี้ก่อนหน้านี้ ดังนั้น การศึกษาถูกออกแบบมาเพื่อประเมินผลของธรรมดา และควบคุมวิธีใช้แช่แข็งราคาพิเศษอย่างใดอย่างหนึ่ง ของ 20, 40 หรือ 60 ° C/นาที บนการเคลื่อนไหวของอสุจิ การแช่แข็งอสุจิสด สดเหมือนเดิมอะโครโซม ความสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์ ยลเมมเบรนที่มีศักยภาพ และ peroxidation ของไขมันเพื่อที่จะหาวิธีการแช่แข็งเหมาะสำหรับการช่วยของสุกร

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การประยุกต์ใช้การผสมเทียม (AI) ด้วยของเหลวที่เก็บไว้-น้ำอสุจิของสายพันธุ์ที่ดีขึ้นของหมูป่ามีความสำคัญยิ่งสำหรับ upgradation ของสุกรพื้นเมืองในส่วนใหญ่ของประเทศที่กำลังพัฒนา ข้อดีของ AI อาจจะขยายถ้าตัวอสุจิแช่แข็งเป็นเพราะมันเป็นทางเลือกที่ดีสำหรับการกระจายในระยะยาวของสารพันธุกรรมที่มีคุณภาพสูง (Roca et al., 2006) น้ำเชื้อแช่แข็งยังสามารถนำมาใช้ในการสร้างธนาคารทรัพยากรพันธุกรรมเพื่อการอนุรักษ์ความหลากหลายทางพันธุกรรมและแม้กระทั่งสำหรับอุปกรณ์สำรองในการตอบสนองต่อการระบาดของโรคอย่างฉับพลัน (โยชิดะ, 2000) แม้ว่าน้ำเชื้อแช่แข็งได้รับการบริการตั้งแต่ยาวเป็นสัดส่วนที่ต่ำมากของ inseminations เทียมในเชิงพาณิชย์จะดำเนินการในหมูใช้น้ำเชื้อแช่แข็งเนื่องจากการโพสต์อยู่รอดล่างละลายที่ส่งผลให้อัตราการคลอดและขนาดครอกต่ำ (Roca et al., ปี 2006 และเฮอ et al., 2007) แต่มีความหลากหลายของความคิดเห็นเกี่ยวกับสถานะความอุดมสมบูรณ์ของน้ำเชื้อแช่แข็ง.

อุดมสมบูรณ์ต่ำของการแช่แข็งละลายน้ำเชื้ออาจเป็นผลมาจากความเสียหายที่ยั่งยืนโดยเซลล์สเปิร์มในระหว่างการทำความเย็นแช่แข็งและกระบวนการของการเก็บรักษา (โฮลท์ 2000 และวัตสัน 2000 ละลาย ) ตั้งแต่หมูป่าตัวอสุจิเป็นอย่างสูงที่มีความไวต่อช็อตเย็นเมื่อสัมผัสกับอุณหภูมิต่ำกว่า 15 องศาเซลเซียส (Gilmore et al., 1996) ความเสียหายของสเปิร์มหมูป่าในระหว่างการแช่แข็งอาจจะเกี่ยวข้องกับองค์ประกอบของไขมันของเยื่อหุ้มเซลล์สเปิร์มพลาสม่าความเครียดออกซิเดชันและออกซิเจน (ROS) การก่อตัว ความเข้าใจที่เพิ่มขึ้นของ cryodamage มีความสำคัญสูงสุดที่อาจนำไปสู่วิธีการเก็บรักษาการปรับปรุงการแสดงผลที่มีคุณภาพน้ำเชื้อแช่แข็งที่เหนือกว่าและผลลัพธ์ความอุดมสมบูรณ์สูง การประเมินผลในหลอดทดลองของการเคลื่อนไหวของอสุจิ, น่าอสุจิสมบูรณ์เยื่อสถานะ acrosome ศักยภาพยลเมมเบรน (MMP) และ lipid peroxidation (LPO) ในระหว่างขั้นตอนการเก็บรักษาเป็นตัวบ่งชี้ที่ดีของคุณภาพของตัวอสุจิและสถานะความอุดมสมบูรณ์ของสเปิร์ม.

ตอนนี้มีวันที่เก็บรักษา วิธีการสำหรับน้ำเชื้อได้เน้นไปที่กลยุทธ์การแช่แข็งต่าง ๆ เพื่อการปรับปรุงคุณภาพของการโพสต์ละลายตัวอสุจิที่เพิ่มจำนวนตัวอสุจิของเซลล์ไข่ปฏิสนธิและการลดความเสียหายของสเปิร์ม มันได้รับการรับรองความเสียหายอสุจิเล็ดลอดออกมาในระหว่างขั้นตอนการเก็บรักษาอาจจะลดลงไปบ้างผ่านการปรับปรุงในกลยุทธ์การแช่แข็ง (ไฟเซอร์และ Fairfull 1990 Woelders และ Besten, ปี 1993 และ Roca et al., 2006) การยอมรับของโปรโตคอลการแช่แข็งที่เหมาะสมมีผลในการปรับปรุงเทคนิคการเก็บรักษาในหมูป่า (Eriksson และ Rodriguez-ร์ติเนซ, 2000) มันได้รับรายงานว่าอัตราการควบคุมของวิธีการแช่แข็งผลคุณภาพของตัวอสุจิละลายโพสต์ที่เหนือกว่าเมื่อเทียบกับวิธีการแช่แข็งแบบธรรมดา (Verheyen et al., 1993 Petyim et al., 2007 Kaeoket et al., 2008) การศึกษาเปรียบเทียบวิธีการแช่แข็งที่แตกต่างกันจะช่วยให้หาวิธีการแช่แข็งที่เหนือกว่าสำหรับการผลิตน้ำเชื้อแช่แข็ง; นอกจากนี้ยังมีการศึกษาน้อยได้รับการดำเนินการในด้านนี้ก่อนหน้านี้ ดังนั้นการศึกษาได้รับการออกแบบมาเพื่อประเมินผลกระทบจากการชุมนุมและควบคุมวิธีการแช่แข็งการนำอัตราการแช่แข็งทั้ง 20, 40 หรือ 60 องศาเซลเซียส / นาทีในการเคลื่อนไหวของอสุจิอสุจิสดสด acrosome ครบถ้วนสมบูรณ์ของเยื่อหุ้มเซลล์เมมเบรนยลที่มีศักยภาพและ เกิด lipid peroxidation ในเพื่อที่จะหาวิธีการแช่แข็งเหมาะสำหรับการเก็บรักษาของน้ำเชื้อ

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การผสมเทียม ( AI ) กับของเหลวน้ำเชื้อของการปรับปรุงพันธุ์ของหมูป่าเป็นสำคัญยิ่งสำหรับ upgradation ของสุกรพื้นเมืองในส่วนใหญ่ของประเทศกำลังพัฒนา ข้อดีของ AI สามารถ maximized ถ้าอสุจิที่ถูกตรวจสอบคุณภาพ เพราะมันเป็นทางเลือกที่ดีที่สุดสำหรับการกระจายคุณภาพทางพันธุกรรม ( ROCA et al . , 2006 ) น้ำเชื้อสามารถถูกใช้เพื่อสร้างธนาคารทรัพยากรพันธุศาสตร์เพื่อการอนุรักษ์ความหลากหลายทางพันธุกรรมและแม้กระทั่งสำหรับอุปกรณ์สำรองในการตอบสนองต่อการระบาดของโรคฉับพลัน ( โยชิดะ , 2000 ) แม้ว่าน้ำเชื้อสุกรแช่แข็ง มีตั้งแต่ยาว สัดส่วนต่ำมากของการค้าเทียม inseminations จะดําเนินการในสุกร โดยใช้น้ำเชื้อเนื่องจากการลดการโพสต์ละลายที่มีผลในอัตราต่ำและโรงเรือนขนาดครอก ( ROCA et al . , 2006 และ Hernandez et al . , 2007 ) อย่างไรก็ตาม มีความหลากหลายของความคิดเห็น เกี่ยวกับสถานภาพความอุดมสมบูรณ์ของน้ำเชื้อสุกรแช่แข็งความอุดมสมบูรณ์ต่ำของน้ำเชื้อสุกรแช่แข็งที่ละลายแล้ว และผลจากความเสียหายโดยเซลล์สเปิร์มในช่วงเย็น , การแช่แข็งและละลายกระบวนการของการเก็บรักษา ( Holt , 2000 และ วัตสัน , 2000 ) ตั้งแต่หมูป่า ผนังที่มีความไวสูงเย็นตกใจเมื่อสัมผัสกับอุณหภูมิต่ำกว่า 15 องศา C ( Gilmore et al . , 1996 ) หมูป่าอสุจิความเสียหายในระหว่างการแช่แข็งอาจจะเกี่ยวข้องกับองค์ประกอบของไขมันอสุจิเยื่อหุ้มเซลล์ ความเครียดออกซิเดชันและปฏิกิริยาชนิดออกซิเจน ( ROS ) เกิด ความเข้าใจที่เพิ่มขึ้นของ cryodamage เป็นสำคัญ อันจะนำไปสู่การปรับปรุงการเก็บรักษาวิธีการเรนเดอร์ superior คุณภาพน้ำเชื้อซึ่งสูงกว่า และความอุดมสมบูรณ์ ประสิทธิภาพในการประเมินผลของอสุจิได้สเปิร์ม น่าอยู่ เมมเบรนที่มีความสมบูรณ์ สถานะของไมโตคอนเดรีย , เมมเบรนที่มีศักยภาพ ( MMP ) และการเกิด lipid peroxidation ( LPO ) ในระหว่างกระบวนการเนื่องจากเป็นตัวบ่งชี้ที่ดีของคุณภาพของอสุจิและอสุจิสถานภาพความอุดมสมบูรณ์ของ .วิธีปลอกการเก็บรักษาน้ำเชื้อสุกรแช่แข็งได้เน้นกลยุทธ์ต่าง ๆเพื่อปรับปรุงคุณภาพของการโพสต์ลงท่อ เพิ่มจำนวนเซลล์ไข่และอสุจิสำหรับการทำให้อสุจิความเสียหาย มันมีเอกสารที่เสียหายต่องในระหว่างกระบวนการการเก็บรักษาอสุจิอาจจะบรรเทาได้บ้าง ผ่านการปรับปรุงในการแช่แข็งกลยุทธ์ ( fiser fairfull และ 1990 และ woelders besten , 2536 และ Roca et al . , 2006 ) การยอมรับพิธีสารเหมาะแช่แข็งมีผลในการปรับปรุงเทคนิคการเก็บรักษาในตัว ( และ ริคสัน โรดริเกซ มาร์ติเนซ , 2000 ) มันได้รับรายงานว่าควบคุมอัตราการแช่แข็งและละลายตัวอสุจิที่มีคุณภาพเหนือกว่าวิธีการโพสต์เมื่อเทียบกับวิธีการแบบแช่แข็ง ( verheyen et al . , 1993 , petyim et al . , 2007 และ kaeoket et al . , 2008 ) การศึกษาเปรียบเทียบที่แตกต่างกันวิธีการแช่แข็งช่วยหากว่าจุดเยือกแข็ง วิธีการผลิตน้ำเชื้อสุกรแช่แข็ง นอกจากนี้บางการศึกษาที่ได้รับการดำเนินการในด้านนี้มาก่อน ดังนั้น การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินผลปกติ และควบคุมวิธีการแช่แข็ง ( แช่แข็งทั้งในอัตรา 20 , 40 หรือ 60 ° C / มิน เปอร์เซ็นต์อสุจิเคลื่อนไหวอยู่ อสุจิ อยู่เหมือนเดิมที่มี ความสมบูรณ์ของเยื่อพลาสมา เมมเบรนที่มีศักยภาพและการเกิด lipid peroxidation ในเพื่อที่จะหาที่เหมาะสมสำหรับการเก็บรักษาด้วยวิธีแช่แข็ง น้ำเชื้อสุกร .