In assisted reproduction technologi

In assisted reproduction technologies it is common result that
only a minority (5–10%) of oocytes are intrinsically able to generate
in vitro embryos with full developmental competence [1]. In
spite of many factors influencing and limiting successful in vitro
fertilization, one of the most important issues is pre-fertilization
assessment of the oocyte quality. This state is well described by
Wilson’s sentence – “Embryogensis starts during oogenesis”. Cited
sentence became a driving force for the development of new methods
of oocyte quality assessment. Therefore, for over twenty years
many of scientists are searching for the best method of oocytes
quality assessment. An objective characterization of the oocyte is
the first step towards oocyte quality assessment which can result in
higher in vitro fertilization probability, viable embryos, successful
implantation and finally – healthy and high quality offspring. The
definition of an “ideal” oocyte was modified several times by adding
some new factors of quality evaluation Most of the factors are
morphological, molecular, biochemical, cellular and metabolomical
features of the oocytes [2–6]. Emerging techniques of oocytes
quality assessment, including spectroscopy-based metabolomic
profiling, polscope-based spindle imaging or genetic screening, are
very sophisticated and advanced [7–9]. However, none of them
gives a clear answer to the question of oocyte quality. Most of
the techniques are invasive or destructive for the investigatedbiological material. Finally, some of them require specialized equipment
and they are very expensive.
On the other hand, the most common classification method of
oocytes quality is based on the optical microscopic evaluation of
the oocytes morphology [10,11]. The “ideal” oocyte observed under
light microscopy should be pale, has a round clear zona pellucida,
a small perivitelline space containing a single unfragmented first
polar body and moderately granular cytoplasm which does not
contain any inclusions. Only morphological observation enables
non-invasive and real-time quality assessment but it is a subjective
method based on evaluator’s experience and technical conditions
of the evaluation process (for example microscope type, mode of
observation, light distribution or magnification level). As the result,
the oocyte quality assessment by morphological criteria can give
poor correlation to successful in vitro fertilization.
At the age of microfluidic techniques, lab-on-a-chip (LOC)
instruments have been also used for enhancing the reproduction
techniques. Labs-on-a-chip have been successfully applied for single
oocyte or embryo manipulation [12], cumulus oocyte complex
removal [13], test and selection of sperm [14], in vitro fertilization
[15], embryo culture [16] or single embryo barcodes codification
[17]. However, non-destructive and on-chip characterization of a
reproductive cell, with a special attention paid to oocytes, is still a
challenging technique.
In this paper we present a novel methodology and lab-on-a-chip
for optical characterization of single living porcine oocytes. The
developed LOC enables loading and on-chip long-distance transport
of an oocyte into a measurement area, as well as safe uploading
of the oocyte for further operations. Some differences in collected
and analyzed absorbance spectra obtained for different porcine
0925-4005/$

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ในการทำซ้ำจน เทคโนโลยีร่วมกันผลที่เฉพาะชนกลุ่มน้อย (5-10%) ของการแช่สารละลายจะทำสร้างโคลนที่เพาะเลี้ยง มีความสามารถพัฒนาเต็มรูปแบบ [1] ในทั้ง ๆ ที่หลายปัจจัยชัก และจำกัดประสบความสำเร็จในหลอดการปฏิสนธิ ประเด็นสำคัญที่สุดคือก่อนการปฏิสนธิประเมินคุณภาพ oocyte รัฐนี้ได้อธิบายไว้โดยดีประโยคของ Wilson – "Embryogensis เริ่มต้นในระหว่างการสร้างไข่" อ้างประโยคกลายเป็น แรงผลักดันสำหรับการพัฒนาวิธีการใหม่ของการตรวจประเมินคุณภาพ oocyte ดังนั้น สำหรับยี่สิบปีมายนักวิทยาศาสตร์กำลังค้นหาวิธีการแช่สารละลายดีที่สุดการตรวจประเมินคุณภาพ การจำแนกวัตถุประสงค์ของ oocyte จะก้าวแรกประเมินคุณภาพ oocyte ซึ่งอาจส่งผลสูงในปัจจุบันน่าเป็น ได้โคลน ประสบความสำเร็จฤทธิ์ และสุดท้าย – คุณภาพสูง และดีต่อสุขภาพลูกหลาน ที่คำจำกัดความของ oocyte "เหมาะ" ถูกปรับเปลี่ยนหลายครั้ง โดยการเพิ่มบางปัจจัยใหม่ของการประเมินคุณภาพของปัจจัยมีมือถือของ โมเลกุล ชีวเคมี และ metabolomicalคุณลักษณะของการแช่สารละลาย [2-6] เกิดเทคนิคการแช่สารละลายประเมินคุณภาพการศึกษา รวมทั้ง metabolomic ที่ใช้กสร้างโพรไฟล์ แกน polscope ตามภาพ หรือคัด กรองทางพันธุกรรมมากซับซ้อน ทางขั้นสูง [7-9] อย่างไรก็ตาม ไม่มีพวกเขาให้ตอบคำถามของ oocyte คุณภาพชัดเจน ส่วนใหญ่เทคนิคจะรุกราน หรือทำลายสำหรับวัสดุ investigatedbiological สุดท้าย บางส่วนของพวกเขาต้องใช้อุปกรณ์พิเศษและจะมีราคาแพงมากในทางกลับกัน วิธีการจัดประเภทมากที่สุดแช่สารละลายคุณภาพตามการประเมินด้วยกล้องจุลทรรศน์แสงของการแช่สารละลายสัณฐานวิทยา [10,11] Oocyte "เหมาะ" ที่สังเกตภายใต้microscopy แสงควรจะซีด มีแบบกลมใสอสุจิ pellucidaช่อง perivitelline เล็กประกอบด้วยแรกจไม่ที่เดียวร่างกายขั้วโลกและไซโทพลาซึมปานกลาง granular ซึ่งไม่ประกอบด้วยการรวม ช่วยให้การสังเกตสัณฐานเท่านั้นประเมินคุณภาพไม่รุกราน แบบเรียลไทม์แต่มีแบบตามอัตวิสัยวิธีการถ่วงดุลของประสบการณ์และเงื่อนไขทางเทคนิคการประเมินผล (ตัวอย่างชนิดของกล้องจุลทรรศน์ โหมดการสังเกต การกระจายแสง หรือขยาย) เป็นผลสามารถทำให้การประเมินคุณภาพ oocyte ตามเกณฑ์ของความสัมพันธ์ที่ดีจะประสบความสำเร็จในปัจจุบันอายุของเทคนิค microfluidic แล็บบนเป็นชิ (ล็อค)เครื่องมือยังใช้สำหรับเพิ่มประสิทธิภาพการสืบพันธุ์เทคนิคการ แล็บบนเป็นชิได้ถูกนำไปใช้ในการoocyte หรือฝากตัวอ่อนการ [12], oocyte ลัสที่ซับซ้อนเอา [13], ทดสอบ และเลือกสเปิร์ม [14], ในการปฏิสนธิหลอด[15], ประมวลผลบาร์โค้ดเดียวตัวอ่อนหรือตัวอ่อนวัฒนธรรม [16][17] . อย่างไรก็ตาม ในชิป และไม่ทำลายคุณสมบัติของการเซลล์สืบพันธุ์ ความสนใจพิเศษที่จ่ายให้แช่สารละลาย จะยังคงเป็นเทคนิคท้าทายในเอกสารนี้ เรานำเสนอวิธีนวนิยายและแล็บบนเป็นชิสำหรับคุณสมบัติแสงของแช่สารละลายที่ช่วงชีวิตหนึ่ง ที่ล็อคการพัฒนาช่วยให้การโหลด และชิ พในการขนส่งทางไกลของ oocyte ที่เป็นตั้งวัด เป็นอัปโหลดเซฟของ oocyte สำหรับการดำเนินงานต่อไป ความแตกต่างในการเก็บรวบรวมและวิเคราะห์แรมสเป็คตรา absorbance ได้หลายช่วง0925-4005 / $

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ในเทคโนโลยีช่วยการเจริญพันธุ์มันเป็นผลทั่วไปที่มีเพียงส่วนน้อย (5-10%) ของเซลล์ไข่อยู่ภายในสามารถที่จะสร้างในตัวอ่อนในหลอดทดลองที่มีความสามารถในการพัฒนาเต็มรูปแบบ[1] ในทั้งๆที่มีหลายปัจจัยที่มีอิทธิพลและการ จำกัด ประสบความสำเร็จในการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพันธุ์หนึ่งในประเด็นที่สำคัญที่สุดคือก่อนการปฏิสนธิการประเมินคุณภาพไข่ รัฐนี้มีการอธิบายอย่างดีจากประโยคของวิลสัน - "Embryogensis เริ่มต้นในช่วง oogenesis" อ้างถึงประโยคที่กลายเป็นแรงผลักดันในการพัฒนาวิธีการใหม่ของการประเมินคุณภาพไข่ ดังนั้นการมานานกว่ายี่สิบปีที่ผ่านมาจำนวนมากของนักวิทยาศาสตร์ที่กำลังมองหาวิธีที่ดีที่สุดของการพัฒนาของไข่ประเมินคุณภาพ ลักษณะวัตถุประสงค์ของไข่เป็นก้าวแรกของการประเมินคุณภาพไข่ซึ่งจะส่งผลในการที่สูงขึ้นในความน่าจะเป็นปฏิสนธิตัวอ่อนที่ทำงานได้ประสบความสำเร็จในการปลูกและในที่สุด- ลูกหลานมีสุขภาพดีและมีคุณภาพสูง นิยามของ "อุดมคติ" ไข่มีการปรับเปลี่ยนหลายครั้งโดยการเพิ่มปัจจัยใหม่บางส่วนของการประเมินคุณภาพปัจจัยส่วนใหญ่มีลักษณะทางสัณฐานวิทยาโมเลกุลทางชีวเคมีของเซลล์และmetabolomical คุณสมบัติของเซลล์ไข่เมื่อ [2-6] เทคนิคการเกิดใหม่ของเซลล์ไข่ประเมินคุณภาพรวมทั้งสเปคโทรตาม metabolomic โปรไฟล์ถ่ายภาพแกน polscope หรือการตรวจคัดกรองทางพันธุกรรมที่มีความซับซ้อนมากและขั้นสูง[7-9] แต่ไม่มีของพวกเขาให้คำตอบที่ชัดเจนกับคำถามที่มีคุณภาพไข่ ที่สุดของเทคนิคที่มีการบุกรุกหรือทำลายสำหรับวัสดุ investigatedbiological สุดท้ายบางคนต้องใช้อุปกรณ์พิเศษและพวกเขามีราคาแพงมาก. บนมืออื่น ๆ , วิธีการจัดหมวดหมู่ที่พบมากที่สุดของคุณภาพไข่จะขึ้นอยู่กับการประเมินผลด้วยกล้องจุลทรรศน์แสงของสัณฐานวิทยาเซลล์ไข่เมื่อ[10,11] ว่า "อุดมคติ" ไข่สังเกตภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสงอ่อนควรจะมีรอบZona pellucida ชัดเจน, พื้นที่ perivitelline ขนาดเล็กที่มีซิงเกิ้ลแรกที่ไม่มีการแยกส่วนของร่างกายขั้วโลกและพลาสซึมเม็ดปานกลางซึ่งไม่ได้มีการรวมใดๆ เฉพาะการสังเกตลักษณะทางสัณฐานวิทยาช่วยให้การประเมินคุณภาพไม่รุกรานและเวลาจริงแต่มันเป็นอัตนัยวิธีการขึ้นอยู่กับประสบการณ์ของผู้ประเมินและเงื่อนไขทางเทคนิคของกระบวนการประเมินผล(เช่นกล้องจุลทรรศน์ชนิดโหมดของการสังเกตการกระจายแสงหรือระดับขยาย) เป็นผลให้การประเมินคุณภาพไข่ตามเกณฑ์ก้านสามารถให้ความสัมพันธ์ที่ไม่ดีที่จะประสบความสำเร็จในปฏิสนธิในหลอดทดลอง. ตอนอายุเทคนิคไมโครที่ห้องปฏิบัติการบนชิป (LOC) ตราสารได้ถูกนำมาใช้สำหรับการเสริมสร้างการทำสำเนาเทคนิค Labs-on-a-ชิปได้ถูกนำมาใช้ประสบความสำเร็จเดียวไข่หรือการจัดการตัวอ่อน [12], คิวมูลัสเซลล์ที่ซับซ้อนกำจัด[13] การทดสอบและการเลือกของสเปิร์ม [14], ปฏิสนธิในหลอดทดลอง[15] วัฒนธรรมตัวอ่อน [16] หรือบาร์โค้ดตัวอ่อนประมวลเดียว[17] แต่ไม่ทำลายและลักษณะบนชิปของเซลล์สืบพันธุ์ที่มีความสนใจเป็นพิเศษที่จ่ายให้กับเซลล์ไข่ยังคงเป็นเทคนิคที่ท้าทาย. ในบทความนี้เราจะนำเสนอวิธีการที่แปลกใหม่และห้องปฏิบัติการบนชิปสำหรับลักษณะแสงเดียวที่อาศัยอยู่ไข่สุกร พัฒนา LOC ช่วยให้โหลดและบนชิปการขนส่งทางไกลของไข่ลงไปในพื้นที่วัดเช่นเดียวกับการอัปโหลดปลอดภัยของไข่สำหรับการดำเนินการต่อไป บางความแตกต่างในการเก็บรวบรวมและวิเคราะห์สเปกตรัมการดูดกลืนแสงที่ได้รับแตกต่างกันสำหรับสุกร0925-4005 / $

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ในเทคโนโลยีช่วยการเจริญพันธุ์ " มันเป็นเรื่องธรรมดาที่
เพียงส่วนน้อย ( 5 – 10% ) ไข่จะสามารถที่จะสร้างภายในตัวอ่อนในหลอดทดลองด้วย
[ 1 ] เต็มความสามารถพัฒนาการ ใน
ทั้งๆที่หลายปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อความสำเร็จในการเพาะเลี้ยงและ
การปฏิสนธิ หนึ่งในปัญหาที่สำคัญที่สุดคือก่อนการปฏิสนธิ
การประเมินคุณภาพไข่ . รัฐนี้มีการอธิบายโดย
วิลสัน ( " ประโยค embryogensis เริ่มต้นในเมืองกรุง " อ้าง
ประโยคกลายเป็นแรงขับเคลื่อนการพัฒนา
วิธีการใหม่ของการประเมินคุณภาพไข่ . ดังนั้น กว่ายี่สิบปี
หลายนักวิทยาศาสตร์กำลังค้นหาวิธีการที่ดีที่สุดของการประเมินคุณภาพไข่

มีลักษณะของไข่คือ
ก้าวแรกผ่านประเมินคุณภาพ ซึ่งได้ผลใน
สูงกว่าผสมเทียมความน่าจะเป็นได้ตัวอ่อนฝังที่ประสบความสำเร็จ
และในที่สุด–สุขภาพดี และลูกที่มีคุณภาพสูง
ความหมายของ " ดีเยี่ยม " ไข่ที่แก้ไขหลายครั้ง โดยการเพิ่มปัจจัยใหม่ของการประเมินคุณภาพ

ส่วนใหญ่ของปัจจัยลักษณะทางชีวเคมีโมเลกุลเซลล์และ metabolomical
คุณสมบัติของไข่ ( 2 ) [ 6 ] เทคนิคใหม่ของการประเมินคุณภาพไข่
รวมทั้งสเปกโทรสโกปี metabolomic
โปรไฟล์ตาม polscope แกนภาพหรือพันธุกรรมคัดกรองตาม ,
ที่ซับซ้อนมากและขั้นสูง [ 7 – 9 ] แต่ไม่มีใครให้คำตอบที่ชัดเจนกับ
คำถามคุณภาพของไข่ . ที่สุดของ
เทคนิควิธีการหรือทำลายสำหรับวัสดุ investigatedbiological . และบางส่วนของพวกเขาต้องการอุปกรณ์พิเศษ

และจะแพงมาก บนมืออื่น ๆ , การจำแนกวิธีที่พบมากที่สุดคุณภาพ
ไข่จะขึ้นอยู่กับการประเมินแสงของกล้องจุลทรรศน์เซลล์ไข่ของ 10,11
[ ] " อุดมคติ " ไข่ที่พบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แสง
ควรจะอ่อนมีรอบชัดเจนโซนา pellucida
ขนาดเล็ก , perivitelline พื้นที่ประกอบด้วยเดียว unfragmented แรก
โพลาร์บอดีและเม็ดขนาดปานกลางซึ่งไม่
ประกอบด้วย inclusions . เฉพาะทางให้
ไม่สังเกตและประเมินคุณภาพจริง แต่มันเป็นวิธีอัตวิสัย
ตามประสบการณ์การประเมินผลและเทคนิคเงื่อนไข
ของการประเมินกระบวนการ ( ตัวอย่างเช่นประเภทกล้องจุลทรรศน์แบบแสงกระจายหรือระดับ
แบบขยาย ) ผลการประเมินคุณภาพโดยเกณฑ์ไข่

) โดยสามารถให้ผู้ที่ประสบความสำเร็จผสมเทียม .
อายุเทคนิคไมโครฟลูอิดิก lab-on-a-chip ( loc )
, เครื่องมือได้รับการใช้เพื่อส่งเสริมการสืบพันธุ์
เทคนิคlabs-on-a-chip ได้รับเรียบร้อยแล้วใช้ไข่หรือตัวอ่อนจัดการเดียว
[ 12 ] , Cumulus อัตราการกำจัดที่ซับซ้อน
[ 13 ] , ทดสอบและคัดเลือกอสุจิ [ 14 ] , ผสมเทียม
[ 15 ] [ 16 ] การเพาะเลี้ยงคัพภะหรือเดี่ยวตัวอ่อนบาร์โค้ดการเข้ารหัส
[ 17 ] อย่างไรก็ตาม ไม่ทําลายและลักษณะของเซลล์สืบพันธุ์บน
ที่มีความสนใจเป็นพิเศษที่จ่ายให้เซลล์ยังคง
เทคนิคที่ท้าทาย .
ในบทความนี้เรานำเสนอวิธีการใหม่และ lab-on-a-chip
สมบัติทางแสงของสิ่งมีชีวิตเซลล์เดียวจาก .
พัฒนา Loc ให้โหลดและการขนส่งทางไกลบน
ของไข่ลงในพื้นที่วัด ตลอดจนปลอดภัยอัพโหลด
ของไข่สำหรับการดำเนินงานต่อไป ความแตกต่างบางอย่างในการเก็บรวบรวม
วิเคราะห์สเปกตรัมการดูดกลืนแสงซึ่งแตกต่างจาก 0925-4005 /
$