3. Results and discussion3.1. Growth of Lactobacillus strains with pre การแปล - 3. Results and discussion3.1. Growth of Lactobacillus strains with pre ไทย วิธีการพูด

3. Results and discussion3.1. Growt

3. Results and discussion
3.1. Growth of Lactobacillus strains with prebiotic sources
The growth profiles of six different Lactobacillus strains in the
presence of lactulose, GOS-La, GOS-Lu are shown in Fig. 1. Glucose
was also included in this study for comparative purposes. All
Lactobacillus strains grew during the first 24 h for all the substrates.
Higher growth rates were observed for LC and LD with glucose and
lactulose than with GOS-La and GOS-Lu substrates, whereas for LP1,
LP2 and LS the initial growth rates were similar for all carbohydrates
tested, and for LB the lowest initial growth was obtained
with glucose. However, after this time, growth rates of all Lactobacillus
strains decreased quickly when they were grown with
glucose and lactulose, whilst all strains kept constant or were
slightly modified with GOS-Lu and GOS-La. This response could be
attributed to different reasons. It is known that carbohydrates with
longer chain lengths are fermented more slowly (Cummings et al.,
2001) which is in agreement with the fermentation kinetics of
Lactobacillus strains exhibited in presence of GOS-La and GOS-Lu
(Fig. 1). Likewise, this could also explain the initial higher growth
observed for LC and LD with glucose and lactulose at 24 h
of incubation. However, no notable differences were detected
between GOS-La and GOS-Lu for all fermentation times and strains.
Similar behaviour has previously been reported in some bifidobacteria
species, using fructooligosaccharides and inulin as the
carbon sources, where the oligomers with high molecular weight
promoted a higher bacterial growth than other substrates with
lower molecular weight (Vernazza et al., 2006).
Conversely the metabolism of large carbohydrate molecules
requires the use of glycosidases and specific transport mechanisms
for the hydrolysis products (Vernazza et al., 2006). In Lactobacillus
genus, the b-galactosidases are specifically located in the cytoplasm
(Fortina et al., 2003) which implies that for the metabolization
of GOS, Lactobacillus strains need a transport system in order to
hydrolyze these oligosaccharides into the cell by b-galactosidases.
This could explain the slower growth of LC and LD strains at 24 h
with GOS-Lu and GOS-La compared with glucose and lactulose;
however, for LP1, LP2 and LS, the similar values for initial growth
provide evidence for a strain-dependence on the assimilation of
carbon source.
Furthermore, it has been previously observed that the monomeric
composition, polymerization degree and type of glycosidic
linkages can affect the growth of probiotic strains (Rastall et al.,
2005). GOS-La obtained from Vivinal-GOS primarily consist of
b-(1-4) linkages (Coulier et al., 2009; Rastall, 2010) and GOS-Lu
consist of b-(1-6), being the most abundant trisaccharide 60-
galactosyl-lactulose (Hernández-Hernández et al., 2011). Cardelle-
Cobas et al. (2011) when studying the effect of different trisaccharides
isolated from GOS-Lu and GOS-La mixtures on different
bacteria strains, including Lactobacillus, reported a preference for
linkages b-(1-6) instead of b-(1-4); however, the results obtained in
our work showed no differences in growth responses of Lactobacillus
strains using GOS-Lu or GOS-La.
3.2. Lactic and acetic acid production
In general, for all strains and carbon sources tested, concentrations
of lactic acid were higher than that of acetic acid (Table 1).
Lactobacillus strains grown in glucose and lactulose generated
higher concentrations of lactic acid than GOS-La and GOS-Lu,
whilst similar levels of acetic acid were found for all assayed
carbohydrates. The low amount of lactic acid produced in GOS
grown culture could be due to the slower and prolonged fermentation
by the bacterial strains. This could also have an influence on
the higher survival rate of Lactobacillus strains grown in GOS
substrates (Fig. 1), as a lower acid production leads to less acidic pH
values. No significant differences were, in general, detected among
the different incubation times either for each carbohydrate or
between GOS-La and GOS-Lu. Lactic and acetic acids are fermentation
products of lactic acid bacteria (Lindgren and Dobrogosz,
1990). These acids decrease the pH and consequently can
prevent the over growth of pathogenic bacteria in the intestine
(Roy et al., 2006). Short chain fatty acids (SCFA) such as acetic and
lactic acids are involved in multiple beneficial effects on the host.
Acetic acid is metabolised by different human tissues representing
a route to obtain energy from non-digestible carbohydrates (Roy
et al., 2006; Roberfroid et al., 2010); however, lactic and acetic
acids are assimilated by different species present in the gut
microbiota, producing butyric acid which can be involved in
multiple positive effects such as the reduction of colon cancer risk
(Roy et al., 2006; Falony and De Vuyst, 2009; Roberfroid et al.,
2010).
These results support that Lactobacillus strains are able to
hydrolyze GOS synthesized from lactose and lactulose, as well as
lactulose to produce beneficial metabolites as final products.
0/5000
จาก: -
เป็น: -
ผลลัพธ์ (ไทย) 1: [สำเนา]
คัดลอก!
3. Results and discussion3.1. Growth of Lactobacillus strains with prebiotic sourcesThe growth profiles of six different Lactobacillus strains in thepresence of lactulose, GOS-La, GOS-Lu are shown in Fig. 1. Glucosewas also included in this study for comparative purposes. AllLactobacillus strains grew during the first 24 h for all the substrates.Higher growth rates were observed for LC and LD with glucose andlactulose than with GOS-La and GOS-Lu substrates, whereas for LP1,LP2 and LS the initial growth rates were similar for all carbohydratestested, and for LB the lowest initial growth was obtainedwith glucose. However, after this time, growth rates of all Lactobacillusstrains decreased quickly when they were grown withglucose and lactulose, whilst all strains kept constant or wereslightly modified with GOS-Lu and GOS-La. This response could beattributed to different reasons. It is known that carbohydrates withlonger chain lengths are fermented more slowly (Cummings et al.,2001) which is in agreement with the fermentation kinetics ofLactobacillus strains exhibited in presence of GOS-La and GOS-Lu(Fig. 1). Likewise, this could also explain the initial higher growthobserved for LC and LD with glucose and lactulose at 24 hof incubation. However, no notable differences were detectedbetween GOS-La and GOS-Lu for all fermentation times and strains.Similar behaviour has previously been reported in some bifidobacteriaspecies, using fructooligosaccharides and inulin as thecarbon sources, where the oligomers with high molecular weightpromoted a higher bacterial growth than other substrates withlower molecular weight (Vernazza et al., 2006).Conversely the metabolism of large carbohydrate moleculesrequires the use of glycosidases and specific transport mechanismsfor the hydrolysis products (Vernazza et al., 2006). In Lactobacillusgenus, the b-galactosidases are specifically located in the cytoplasm(Fortina et al., 2003) which implies that for the metabolizationof GOS, Lactobacillus strains need a transport system in order tohydrolyze these oligosaccharides into the cell by b-galactosidases.This could explain the slower growth of LC and LD strains at 24 hwith GOS-Lu and GOS-La compared with glucose and lactulose;however, for LP1, LP2 and LS, the similar values for initial growthprovide evidence for a strain-dependence on the assimilation ofcarbon source.Furthermore, it has been previously observed that the monomericcomposition, polymerization degree and type of glycosidiclinkages can affect the growth of probiotic strains (Rastall et al.,2005). GOS-La obtained from Vivinal-GOS primarily consist ofb-(1-4) linkages (Coulier et al., 2009; Rastall, 2010) and GOS-Luconsist of b-(1-6), being the most abundant trisaccharide 60-galactosyl-lactulose (Hernández-Hernández et al., 2011). Cardelle-Cobas et al. (2011) when studying the effect of different trisaccharidesisolated from GOS-Lu and GOS-La mixtures on differentbacteria strains, including Lactobacillus, reported a preference forlinkages b-(1-6) instead of b-(1-4); however, the results obtained inour work showed no differences in growth responses of Lactobacillusstrains using GOS-Lu or GOS-La.3.2. Lactic and acetic acid productionIn general, for all strains and carbon sources tested, concentrationsof lactic acid were higher than that of acetic acid (Table 1).Lactobacillus strains grown in glucose and lactulose generatedhigher concentrations of lactic acid than GOS-La and GOS-Lu,whilst similar levels of acetic acid were found for all assayedcarbohydrates. The low amount of lactic acid produced in GOSgrown culture could be due to the slower and prolonged fermentationby the bacterial strains. This could also have an influence onthe higher survival rate of Lactobacillus strains grown in GOSsubstrates (Fig. 1), as a lower acid production leads to less acidic pHvalues. No significant differences were, in general, detected amongthe different incubation times either for each carbohydrate orbetween GOS-La and GOS-Lu. Lactic and acetic acids are fermentationproducts of lactic acid bacteria (Lindgren and Dobrogosz,1990). These acids decrease the pH and consequently canprevent the over growth of pathogenic bacteria in the intestine(Roy et al., 2006). Short chain fatty acids (SCFA) such as acetic andlactic acids are involved in multiple beneficial effects on the host.Acetic acid is metabolised by different human tissues representinga route to obtain energy from non-digestible carbohydrates (Royet al., 2006; Roberfroid et al., 2010); however, lactic and aceticacids are assimilated by different species present in the gutmicrobiota, producing butyric acid which can be involved inmultiple positive effects such as the reduction of colon cancer risk(Roy et al., 2006; Falony and De Vuyst, 2009; Roberfroid et al.,2010).These results support that Lactobacillus strains are able tohydrolyze GOS synthesized from lactose and lactulose, as well aslactulose to produce beneficial metabolites as final products.
การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 2:[สำเนา]
คัดลอก!
3. ผลการอภิปรายและ
3.1 การเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์กับแหล่ง prebiotic
โปรไฟล์การเจริญเติบโตของหกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่แตกต่างกันในการปรากฏตัวของ lactulose, GOS-La, GOS-Lu จะแสดงในรูป
1.
กลูโคสก็รวมอยู่ในการศึกษาเพื่อการเปรียบเทียบนี้ ทุกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสเพิ่มขึ้นในช่วงแรก 24 ชั่วโมงสำหรับพื้นผิวทั้งหมด. ที่สูงขึ้นอัตราการเจริญเติบโตถูกตั้งข้อสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสและlactulose กว่าด้วย GOS-La และพื้นผิว GOS-Lu, ในขณะที่สำหรับ LP1, lp2 และ LS อัตราการเจริญเติบโตเริ่มต้นได้ คาร์โบไฮเดรตที่คล้ายกันสำหรับทุกการทดสอบและLB การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดที่ได้รับกับกลูโคส อย่างไรก็ตามหลังจากที่เวลานี้อัตราการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ที่ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาเติบโตขึ้นโดยมีกลูโคสและlactulose ขณะที่ทุกสายพันธุ์คงที่หรือไม่ก็ถูกปรับเปลี่ยนเล็กน้อยกับGOS-Lu และ GOS-La การตอบสนองนี้สามารถนำมาประกอบกับเหตุผลที่แตกต่าง เป็นที่รู้จักกันว่าคาร์โบไฮเดรตที่มีความยาวโซ่อีกต่อไปหมักช้ากว่า (คัมมิ่งส์ et al., 2001) ซึ่งอยู่ในข้อตกลงกับจลนศาสตร์หมักสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสจัดแสดงในการปรากฏตัวของGOS-La และ GOS-Lu (รูปที่ 1). ในทำนองเดียวกันนี้ยังสามารถอธิบายได้ว่าการเจริญเติบโตที่สูงขึ้นเริ่มต้นสังเกต LC และ LD กับกลูโคสและ lactulose เวลา 24 ชั่วโมงของการบ่ม แต่ไม่มีความแตกต่างได้รับการตรวจพบที่น่าทึ่งระหว่าง GOS-La และ GOS-Lu สำหรับทุกครั้งที่หมักและสายพันธุ์. พฤติกรรมที่คล้ายกันได้รับก่อนหน้านี้รายงานใน bifidobacteria บางชนิดใช้คาร์บอเนตและอินนูลินเป็นแหล่งคาร์บอนที่oligomers ที่มีน้ำหนักโมเลกุลสูงการเลื่อนตำแหน่งการเจริญเติบโตของเชื้อแบคทีเรียที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆ ที่มีน้ำหนักโมเลกุลต่ำ(Vernazza et al., 2006). ในทางกลับกันการเผาผลาญคาร์โบไฮเดรตโมเลกุลขนาดใหญ่ที่ต้องใช้ของไกลโคซิเดและกลไกการขนส่งที่เฉพาะเจาะจงสำหรับผลิตภัณฑ์ไฮโดรไลซิ(Vernazza et al., 2006) ในแลคโตบาซิลลัสประเภท B-galactosidases อยู่เฉพาะในพลาสซึม (Fortina et al., 2003) ซึ่งหมายถึงว่าสำหรับ metabolization ของ GOS สายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสจำเป็นต้องมีระบบการขนส่งเพื่อย่อยสลายoligosaccharides เหล่านี้ลงในเซลล์ b-galactosidases . นี้สามารถอธิบายได้ว่าการเจริญเติบโตที่ช้าลงของ LC และสายพันธุ์ LD เวลา 24 ชั่วโมงกับGOS-Lu และ GOS-La เทียบกับกลูโคสและ lactulose; แต่สำหรับ LP1, lp2 LS และค่าที่คล้ายกันสำหรับการเจริญเติบโตเริ่มต้นให้หลักฐานสำหรับสายพันธุ์การพึ่งพาการดูดซึมของแหล่งคาร์บอน. นอกจากนี้ยังได้รับการปฏิบัติก่อนหน้านี้ว่า monomeric องค์ประกอบระดับพอลิเมอและชนิดของ glycosidic เชื่อมโยงจะมีผลต่อการเจริญเติบโตของสายพันธุ์โปรไบโอติก (Rastall et al., 2005) GOS-La ที่ได้รับจาก Vivinal-เกย์? ส่วนใหญ่ประกอบด้วยB- (1-4) การเชื่อมโยง (Coulier et al, 2009;. Rastall 2010) และ GOS-Lu ประกอบด้วย B- (1-6), เป็น trisaccharide มากที่สุด 60 galactosyl-lactulose (Hernández- Hernández et al., 2011) Cardelle- Cobas et al, (2011) เมื่อศึกษาผลกระทบของการ trisaccharides ที่แตกต่างกันที่แยกได้จากGOS-Lu และสารผสม GOS-La ที่แตกต่างกันในสายพันธุ์แบคทีเรียแลคโตบาซิลลัสรวมทั้งรายงานการตั้งค่าสำหรับการเชื่อมโยงB- (1-6) แทน B- (1-4); แต่ผลที่ได้รับในการทำงานของเราพบว่าไม่มีความแตกต่างในการตอบสนองต่อการเจริญเติบโตของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์โดยใช้GOS-Lu หรือ GOS-La. 3.2 แลคติคและการผลิตกรดอะซิติกโดยทั่วไปสำหรับทุกสายพันธุ์และแหล่งคาร์บอนทดสอบความเข้มข้นของกรดแลคติกสูงกว่ากรดอะซิติก(ตารางที่ 1). สายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่ปลูกในกลูโคสและ lactulose สร้างความเข้มข้นที่สูงขึ้นของกรดแลคติกกว่าGOS-La และ GOS-Lu, ในขณะที่ระดับที่คล้ายกันของกรดอะซิติกถูกพบ assayed ทั้งหมดคาร์โบไฮเดรต จำนวนเงินที่ต่ำของกรดแลคติคที่ผลิตใน GOS วัฒนธรรมที่ปลูกอาจจะเกิดจากการหมักช้าลงและเป็นเวลานานโดยสายพันธุ์แบคทีเรีย นอกจากนี้ยังอาจมีอิทธิพลต่ออัตราการรอดตายสูงขึ้นของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่ปลูกใน GOS พื้นผิว (รูปที่ 1). เป็นผลิตกรดต่ำนำไปสู่ค่า pH ที่เป็นกรดน้อยค่า ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญโดยทั่วไปในหมู่ผู้ที่ตรวจพบครั้งบ่มที่แตกต่างกันอย่างใดอย่างหนึ่งสำหรับแต่ละคาร์โบไฮเดรตหรือระหว่างGOS-La และ GOS-Lu กรดแลคติกและอะซิติกที่มีการหมักผลิตภัณฑ์ของแบคทีเรียกรดแลคติก (ลินด์เกรนและ Dobrogosz, 1990) กรดเหล่านี้ลดค่า pH จึงสามารถป้องกันการเจริญเติบโตมากกว่าของเชื้อแบคทีเรียก่อโรคในลำไส้(รอย et al., 2006) กรดไขมันสายสั้น (SCFA) เช่นอะซิติกและกรดแลคติกที่มีส่วนร่วมในผลประโยชน์หลายในพื้นที่. กรดอะซิติกเป็น metabolised โดยเนื้อเยื่อของมนุษย์ที่แตกต่างกันที่เป็นตัวแทนของเส้นทางที่จะได้รับพลังงานจากคาร์โบไฮเดรตที่ไม่ย่อย(รอยet al, 2006. . Roberfroid et al, 2010); แต่แลคติกและอะซิติกกรดจะหลอมรวมสายพันธุ์ที่แตกต่างกันอยู่ในลำไส้microbiota ผลิตกรดบิวทิริกซึ่งสามารถมีส่วนร่วมในผลในเชิงบวกหลายอย่างเช่นการลดลงของความเสี่ยงของมะเร็งลำไส้ใหญ่(รอย et al, 2006;. Falony และ De Vuyst 2009 . Roberfroid, et al,. 2010) ผลการศึกษานี้สนับสนุนว่าสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสสามารถที่จะGOS ย่อยสลายสังเคราะห์จากแลคโตสและ lactulose เช่นเดียวกับlactulose ในการผลิตสารประโยชน์เป็นผลิตภัณฑ์ขั้นสุดท้าย












































































การแปล กรุณารอสักครู่..
ผลลัพธ์ (ไทย) 3:[สำเนา]
คัดลอก!
3 . ผลและการอภิปราย
3.1 . การเจริญเติบโตของเชื้อแลคโตบาซิลัสกับแหล่งที่มาพรีไบโอติก
การเจริญเติบโตโปรไฟล์ของหกสายพันธุ์ Lactobacillus ต่างๆใน
ตนของทูโลส โก ลา โกลู แสดงในรูปที่ 1 กลูโคส
ก็รวมอยู่ในการศึกษานี้เพื่อเปรียบเทียบ สายพันธุ์ Lactobacillus ทั้งหมด
เติบโตในช่วงแรก 24 ชั่วโมง
พื้นผิวทั้งหมดอัตราการเติบโตที่สูงขึ้นเป็นสังเกตสำหรับ LC และ LD กับกลูโคสและแลคทูโลสมากกว่าไป
LA ไปลู่พื้นผิวในขณะที่ LP1
lp2 LS , และอัตราการเจริญเติบโตเริ่มต้นคล้ายคาร์โบไฮเดรตทั้งหมด
ทดสอบและปอนด์การเจริญเติบโตเริ่มต้นต่ำสุดได้
กับกลูโคส อย่างไรก็ตาม หลังจากเวลานี้ อัตราการเจริญเติบโตของเชื้อ Lactobacillus
ลดลงอย่างรวดเร็วเมื่อพวกเขาเติบโตขึ้นด้วย
กลูโคสและแลคทูโลส ในขณะที่สายพันธุ์ที่คงที่หรือมีการแก้ไขเล็กน้อยกับโก
Lu และไป LA การตอบสนองนี้อาจ
เกิดจากเหตุผลที่แตกต่างกัน มันเป็นที่รู้จักกันว่าคาร์โบไฮเดรตกับ
ห่วงโซ่ยาวความยาวมีการหมักช้า ( Cummings et al . ,
2001 ) ซึ่งในข้อตกลงกับการหมักจลนพลศาสตร์ของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์
จัดแสดงในการแสดงตนของลาโก โก และลู่
( รูปที่ 1 )อนึ่ง นี้ยังไม่สามารถอธิบายเริ่มต้นการเพิ่มขึ้น
) LC และ LD กับกลูโคสและแลคทูโลสใน 24 H
ของการบ่ม อย่างไรก็ตามไม่พบความแตกต่างเด่น
ระหว่างไป LA และ QoS ลู่สำหรับครั้งหมักและสายพันธุ์ ก่อนหน้านี้ได้รับรายงานมีพฤติกรรมคล้ายกัน

ในบางชนิดบิฟิโดแบคทีเรีย ใช้ fructooligosaccharides อินนูลินเป็น
และแหล่งคาร์บอนที่หน่วยที่มีน้ำหนักโมเลกุลสูง
ส่งเสริมการเจริญเติบโตที่สูงกว่าพื้นผิวอื่น ๆที่มีน้ำหนักโมเลกุลต่ำด้วย
( เวอนาซซา et al . , 2006 ) .

แต่การเผาผลาญคาร์โบไฮเดรตโมเลกุลใหญ่ ต้องใช้ glycosidases
กลไกการขนส่งและเฉพาะผลิตภัณฑ์เอนไซม์ ( เวอนาซซา et al . , 2006 ) ในสกุลแลคโตบาซิลลัส
,
การแปล กรุณารอสักครู่..
 
ภาษาอื่น ๆ
การสนับสนุนเครื่องมือแปลภาษา: กรีก, กันนาดา, กาลิเชียน, คลิงออน, คอร์สิกา, คาซัค, คาตาลัน, คินยารวันดา, คีร์กิซ, คุชราต, จอร์เจีย, จีน, จีนดั้งเดิม, ชวา, ชิเชวา, ซามัว, ซีบัวโน, ซุนดา, ซูลู, ญี่ปุ่น, ดัตช์, ตรวจหาภาษา, ตุรกี, ทมิฬ, ทาจิก, ทาทาร์, นอร์เวย์, บอสเนีย, บัลแกเรีย, บาสก์, ปัญจาป, ฝรั่งเศส, พาชตู, ฟริเชียน, ฟินแลนด์, ฟิลิปปินส์, ภาษาอินโดนีเซี, มองโกเลีย, มัลทีส, มาซีโดเนีย, มาราฐี, มาลากาซี, มาลายาลัม, มาเลย์, ม้ง, ยิดดิช, ยูเครน, รัสเซีย, ละติน, ลักเซมเบิร์ก, ลัตเวีย, ลาว, ลิทัวเนีย, สวาฮิลี, สวีเดน, สิงหล, สินธี, สเปน, สโลวัก, สโลวีเนีย, อังกฤษ, อัมฮาริก, อาร์เซอร์ไบจัน, อาร์เมเนีย, อาหรับ, อิกโบ, อิตาลี, อุยกูร์, อุสเบกิสถาน, อูรดู, ฮังการี, ฮัวซา, ฮาวาย, ฮินดี, ฮีบรู, เกลิกสกอต, เกาหลี, เขมร, เคิร์ด, เช็ก, เซอร์เบียน, เซโซโท, เดนมาร์ก, เตลูกู, เติร์กเมน, เนปาล, เบงกอล, เบลารุส, เปอร์เซีย, เมารี, เมียนมา (พม่า), เยอรมัน, เวลส์, เวียดนาม, เอสเปอแรนโต, เอสโทเนีย, เฮติครีโอล, แอฟริกา, แอลเบเนีย, โคซา, โครเอเชีย, โชนา, โซมาลี, โปรตุเกส, โปแลนด์, โยรูบา, โรมาเนีย, โอเดีย (โอริยา), ไทย, ไอซ์แลนด์, ไอร์แลนด์, การแปลภาษา.

Copyright ©2025 I Love Translation. All reserved.

E-mail: