Determination of fruit photosynthes

Determination of fruit photosynthesis under different CO2 and low PPFD levels
Fruits 94 DAFB were used for determining in-vitro response to different CO2 concentrations, and fruits 114 DAFB were for different low PPFD, respectively, because the mandarin fruits show active photosynthesis during these stages as reported previously [5]. Photosynthesis and respiration rates were measured by oxygen electrode apparatus (Rank Brothers, Cambridge, U.K.)supplemented with halogen lamps (Sumita Optical Glass, Saitama,Japan) as reported earlier [5]. Briefly, 10 rind discs (3 mm diameter)were prepared from equator zone of three fruits with the albedo tissue removed, soaked in 0.05 M phosphate buffer (pH 7.0) for 30 s, and placed in an electrode tank with 3 ml of fresh phosphate buffer at 25◦C. The CO2 concentration, 50–1000 ppm, was adjusted by adding different amount of NaHCO3 solution into the tank and PPFD of 135 ?mol m−2s−1was supplied. The pH in the tank was7.0. Meanwhile, PPFD, from 2.7 to 270 ?mol m−2s−1, was regulated by placing the lamp at various distances from the electrode tank containing 440 ppm CO2. The O2 increase (net photosynthesis) inthe buffer was recorded under light conditions for 15 min, then O2 decrease (respiration) was measured for 10 min under dark by covering the tank with three layers of aluminum foil. Before use, the buffer had been bubbled with N2 gas for 1 h and stored in a desiccator containing 2 M NaOH to remove CO2. Leaf photosynthes is and respiration rates were also measured as a control by using 10 discs (3 mm diameter) from five leaves at the same sampling date.Experiments were repeated at least 3 times and mean value ± SE was presented.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ผลไม้การสังเคราะห์ด้วยแสง CO2 ที่แตกต่างกันและระดับ PPFD ต่ำกำหนด ผลไม้ที่ใช้สำหรับการกำหนดเครื่องตอบสนองแตกต่างความเข้มข้นของ CO2 และผลไม้ 114 94 DAFB DAFB ได้สำหรับ PPFD ต่ำแตกต่างกัน ตามลำดับ เนื่องจากผลไม้โรงแรมแมนดารินแสดงงานสังเคราะห์ด้วยแสงในระหว่างขั้นตอนเหล่านี้ตามรายงานก่อนหน้านี้ [5] มีวัดอัตราการสังเคราะห์ด้วยแสงและการหายใจ ด้วยออกซิเจนเครื่องอิเล็กโทรด (พี่น้องอันดับ เคมบริดจ์ สหราชอาณาจักร) เสริม ด้วยโคมไฟฮาโลเจน (Sumita แสงแก้ว ไซตามะ ญี่ปุ่น) ก่อนหน้ารายงาน [5] สั้น ๆ แคบ 10 แผ่น (เส้นผ่าศูนย์กลาง 3 มิลลิเมตร) ได้จัดเตรียมห้องโซนผลไม้สามกับเนื้อเยื่อ albedo เอา นำไปแช่ใน 0.05 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ (pH 7.0) สำหรับ 30 s และใส่ในถังอิเล็กโทรดกับ ml 3 สดฟอสเฟตบัฟเฟอร์ที่ 25◦C ความเข้มข้น CO2, 50 – 1000 ppm ถูกปรับปรุง โดยเพิ่มจำนวน NaHCO3 โซลูชันต่าง ๆ ในถังและ PPFD 135 ? m−2s−1was โมลให้ ค่า pH ใน was7.0 ถัง ในขณะเดียวกัน PPFD จาก 2.7 การ 270 ? m−2s−1 โมล ถูกควบคุม โดยการทำโคมไฟที่มีระยะห่างต่าง ๆ จากถังอิเล็กโทรดที่ประกอบด้วย 440 ppm CO2 เพิ่ม O2 (สังเคราะห์ด้วยแสงสุทธิ) ในบัฟเฟอร์ถูกบันทึกภายใต้สภาพแสงสำหรับ 15 นาที นั้น O2 ลดลง (หายใจ) ถูกวัดใน 10 นาทีภายใต้ความมืด โดยครอบคลุมถังอลูมิเนียมสามชั้นด้วย ก่อนใช้ บัฟเฟอร์มีเป็นฟอง ด้วยก๊าซ N2 สำหรับ 1 h และเก็บไว้ใน desiccator ที่ประกอบด้วย 2 M NaOH เอา CO2 มีใบ photosynthes และยังถูกวัดเป็นตัวควบคุมอัตราการหายใจ โดย 10 แผ่น (เส้นผ่าศูนย์กลาง 3 มิลลิเมตร) จากใบที่ห้าในวันสุ่มตัวอย่างเดียวกัน ทดลองถูกทำซ้ำอย่างน้อย 3 ครั้ง และหมายถึง การนำเสนอค่า± SE

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

การหาปริมาณผลไม้ที่แตกต่างกันและ ppfd การสังเคราะห์แสงภายใต้ CO2 ต่ำระดับ
ผลไม้ 94 ถูกใช้เพื่อกำหนดว่าในการตอบสนองต่อความเข้มข้นของ CO2 ที่แตกต่างกันและผลไม้ 114 ว่าเป็น ppfd ต่ำแตกต่างกันตามลำดับ เพราะภาษาจีนกลางผลไม้แสดงงานสังเคราะห์แสง ในระหว่างขั้นตอนเหล่านี้ตามที่รายงานก่อนหน้านี้ [ 5 ]อัตราการสังเคราะห์แสงและการหายใจ วัดจากเครื่องมือไฟฟ้าออกซิเจน ( ตำแหน่งพี่น้อง , Cambridge , UK ) เสริมด้วยหลอดฮาโลเจน ( sumita แสงแก้ว , ไซตามะ , ญี่ปุ่น ) ตามที่รายงานก่อนหน้านี้ [ 5 ] สั้น ๆ , 10 แผ่นเปลือก ( 3 มม. เส้นผ่าศูนย์กลาง ) เตรียมได้จากเขตศูนย์สูตรของ 3 ผลไม้กับการสะท้อนของเยื่อออกแช่ใน 0.05 M ฟอสเฟตบัฟเฟอร์ pH 7.0 ) 30 วินาทีและวางไว้ในถังมีขั้ว 3 มล. ของฟอสเฟตบัฟเฟอร์ที่สด 25 ◦ C CO2 ความเข้มข้น 50 - 1000 ส่วนในล้านส่วน จะปรับเพิ่มปริมาณที่แตกต่างกันของโซเดียมไบคาร์บอเนต โซลูชั่น เข้าสู่ถัง ppfd 135 mol m −− 1was 2S มา pH ในถัง was7.0 . ขณะเดียวกัน ppfd จาก 2.7 ถึง 270 ? mol m − 2s − 1ถูกควบคุมโดยการวางหลอดไฟที่ระยะทางต่าง ๆจากขั้วถังบรรจุ 440 ppm CO2 เพิ่ม O2 ( การสังเคราะห์แสงสุทธิ ) ในบัฟเฟอร์ถูกบันทึกในสภาพแสง 15 นาทีแล้ว O2 ลดลง ( การหายใจ ) วัดเป็นเวลา 10 นาที ภายใต้ความมืด โดยครอบคลุมถัง 3 ชั้นของอลูมิเนียมฟอยล์ ก่อนใช้งานบัฟเฟอร์ได้ด้วย 2 ฟองก๊าซเป็นเวลา 1 ชั่วโมง และเก็บไว้ในเดซิกเคเตอร์ที่มี 2 M NaOH กำจัด CO2 photosynthes ใบและอัตราการหายใจก็วัดเป็นตัวควบคุมโดยใช้ 10 แผ่น ( ขนาดเส้นผ่าศูนย์กลาง 3 มิลลิเมตร ) จากห้าใบที่เหมือนกัน 2 วัน ทดลองซ้ำ อย่างน้อย 3 ครั้ง และมีค่าเฉลี่ย±เซถูกนำเสนอ