The samples of rumen content were t

The samples of rumen content were taken just before the morning feeding as well as at 4 and 8 h thereafter. The protozoa were purified as described above and lyophilized and stored at −80 °C (see above). The collection of material was repeated three times on three different days. The same animal was, however subjected to the sampling no more than 2 times a week.

The chitin content was assayed by quantification of N-acetylglucosoamine released after hydrolysis of lyophilized samples protozoa according to Chen and Johnson [5].

For this purpose the samples lyophilized of protozoa (200 mg) were hydrolyzed with 6 M hydrochloric acid at 105 °C for 12 h. After cooling to room temperature 150 mg of activated charcoal was added and all suspension was filtrated using the Filter Grade:390. The filter was washed with 20% ethanol solution. The filtrate was collected and evaporated to dryness at 45 °C and allowed to quantify N-acetylglucosoamine by the method Chen and Johnson [5]. The true content of this carbohydrate in the cells of protozoa was obtained by the comparison with standard curve of N-acetylglucosoamine. The content of chitin in the cell protozoa was calculated according to Volenc [31].

The chitin present in the zoospores was quantified by the same method.

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ตัวอย่างของเนื้อหาต่อที่ถ่าย ก่อนการให้อาหารเช้าเช่นเดียว กับ ที่ 4 และ 8 ชั่วโมงหลังจากนั้น โปรโตซัวที่บริสุทธิ์ตามที่อธิบายไว้ข้างต้น และ lyophilized และเก็บไว้ที่ −80 ° C (ดูข้างต้น) การเก็บรวบรวมวัสดุซ้ำสามครั้งสามวันแตกต่างกัน สัตว์ตัวเดียวกันได้ อย่างไรก็ตามภายใต้การสุ่มตัวอย่างไม่เกิน 2 ครั้งต่อสัปดาห์เนื้อหา chitin ถูก assayed โดยนับจำนวน N acetylglucosoamine ออกมาหลังจากการย่อยสลายของโปรโตซัวตัวอย่าง lyophilized ตามเฉินและจอห์นสัน [5]วัตถุประสงค์ตัวอย่าง lyophilized ของโปรโตซัว (200 mg) ถูกไลซ์ ด้วยกรดไฮโดรคลอริก 6 เมตรที่ 105 ° C เป็นเวลา 12 ชม. เพิ่มถ่าน 150 มิลลิกรัมหลังจากเย็นถึงอุณหภูมิห้อง และระบบกันสะเทือนทั้งหมดคือ filtrated ใช้กรองเกรด: 390 ตัวกรองถูกล้าง ด้วย 20% เอทานอลโซลูชั่น การกรองถูกรวบรวมไว้ และระเหยให้แห้งที่อุณหภูมิ 45 ° C และอนุญาตให้ปริมาณ N acetylglucosoamine โดยวิธีเฉินและจอห์นสัน [5] เนื้อหาจริงของคาร์โบไฮเดรตในเซลล์ของโปรโตซัวนี้ได้รับ โดยเปรียบเทียบกับกราฟมาตรฐานของ N-acetylglucosoamine เนื้อหาของ chitin ในโปรโตซัวเซลล์ที่คำนวณตาม Volenc [31]Chitin ใน zoospores ถูกวัด โดยวิธีเดียวกัน

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

ตัวอย่างของเนื้อหาในกระเพาะรูเมนถูกนำก่อนให้อาหารเช้าเช่นเดียวกับที่ 4 และ 8 ชั่วโมงหลังจากนั้น โปรโตซัวบริสุทธิ์ตามที่อธิบายไว้ข้างต้นและแห้งและเก็บไว้ที่ -80 ° C (ดูด้านบน) คอลเลกชันของวัสดุซ้ำสามครั้งในสามวันที่แตกต่างกัน สัตว์เดียวกัน แต่อยู่ภายใต้การสุ่มตัวอย่างไม่เกิน 2 ครั้งต่อสัปดาห์.

เนื้อหาไคตินได้รับการวิเคราะห์โดยปริมาณของ N-acetylglucosoamine การปล่อยตัวหลังจากการย่อยสลายของตัวอย่างแห้งโปรโตซัวตามเฉินและจอห์นสัน [5].

เพื่อจุดประสงค์นี้กลุ่มตัวอย่าง แห้งของโปรโตซัว (200 มก.) ได้รับการไฮโดรไลซ์ด้วย 6 M กรดไฮโดรคลอที่ 105 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 12 ชั่วโมง หลังจากที่เย็นที่อุณหภูมิห้อง 150 mg ของถ่านกัมมันถูกบันทึกและระงับทั้งหมดถูกกรองโดยใช้ตัวกรองเกรด: 390 ตัวกรองถูกล้างด้วยสารละลายเอทานอล 20% กรองถูกเก็บรวบรวมและระเหยแห้งที่ 45 องศาเซลเซียสและได้รับอนุญาตให้ปริมาณ N-acetylglucosoamine โดยวิธีเฉินและจอห์นสัน [5] เนื้อหาที่แท้จริงของคาร์โบไฮเดรตนี้ในเซลล์ของโปรโตซัวที่ได้รับโดยการเปรียบเทียบกับเส้นโค้งมาตรฐาน N-acetylglucosoamine เนื้อหาของไคตินในโปรโตซัวเซลล์ที่คำนวณได้ตาม Volenc [31].

ปัจจุบันไคตินใน zoospores ถูกวัดโดยวิธีการเดียวกัน