Two types of natural must were used for pilot scale experiments,
a rosé one, from red Grenache grapes, and a white one, from Char-donnay grapes. Grapes from the 2011 harvest session were
collected, destemmed and pressed, and grape juice was treated with
Velcorin
(150 ppm) and sulphited (30 mg/L SO
2
, fi nal concentra-tion). Sugar content was estimated by FTIR and corrected with su-crose when necessary, in order to get the desired estimated fi nal
alcohol by volume (predicted ABV). The Boehringer Mannheim
Ammonia Kit (R-Biopharm AG, Darmstadt) and the method ofDukes
and Butzke (1998) were used for determination of ammonia and
amino acids respectively. Yeast Assimilable Nitrogen (YAN) content
was calculated as the sum of ammonia and amino acids contents,
and corrected with diammonium phosphate and organic commer-cial products when necessary. Starters were prepared in commercial
must, grown for 2 days at 22
C, and inoculated to an initial con-centration of 10
6
cells/mL. Fermentation was carried out at 16 e17
C
in 15 L vats. Fermentation kinetics was monitored daily by density
determination and samples were taken up to quantify sugar con-sumption and fermentation products. Dominance of the inoculated
strains was verifi ed by restriction analysis of mitochondrial DNA
(Querol, Barrio, Huerta, & Ramon, 1992) of 20 random isolates from
the appropriate dilutions grown on YPD plates
Two types of natural must were used for pilot scale experiments,a rosé one, from red Grenache grapes, and a white one, from Char-donnay grapes. Grapes from the 2011 harvest session werecollected, destemmed and pressed, and grape juice was treated withVelcorin(150 ppm) and sulphited (30 mg/L SO2, fi nal concentra-tion). Sugar content was estimated by FTIR and corrected with su-crose when necessary, in order to get the desired estimated fi nalalcohol by volume (predicted ABV). The Boehringer MannheimAmmonia Kit (R-Biopharm AG, Darmstadt) and the method ofDukesand Butzke (1998) were used for determination of ammonia andamino acids respectively. Yeast Assimilable Nitrogen (YAN) contentwas calculated as the sum of ammonia and amino acids contents,and corrected with diammonium phosphate and organic commer-cial products when necessary. Starters were prepared in commercialmust, grown for 2 days at 22C, and inoculated to an initial con-centration of 106cells/mL. Fermentation was carried out at 16 e17Cin 15 L vats. Fermentation kinetics was monitored daily by densitydetermination and samples were taken up to quantify sugar con-sumption and fermentation products. Dominance of the inoculatedstrains was verifi ed by restriction analysis of mitochondrial DNA(Querol, Barrio, Huerta, & Ramon, 1992) of 20 random isolates fromthe appropriate dilutions grown on YPD plates
การแปล กรุณารอสักครู่..

สองประเภทของธรรมชาติต้องมีวัตถุประสงค์เพื่อนำร่องการทดลอง
) รอสเป็นหนึ่ง จาก grenache องุ่นแดงและสีขาว จาก Char โดนแน่องุ่น 2011 เก็บเกี่ยวองุ่นจากเซสชันถูกเก็บรวบรวมและ destemmed
, กด , และผลไม้องุ่นถูกปฏิบัติด้วย
velcorin
( 150 ppm ) และ sulphited ( 30 มิลลิกรัม / ลิตร ดังนั้น
2
, ไฟนัล ครุ่นคิด tion )ปริมาณน้ำตาลประมาณโดย FTIR และแก้ไขกับ ซู crose เมื่อจำเป็น เพื่อให้ได้รับประมาณ Nal Fi
เครื่องดื่มแอลกอฮอล์โดยปริมาตร ( คาดการณ์ abv ) ส่วนความ Mannheim
แอมโมเนียชุด ( r-biopharm AG , Darmstadt ) และวิธีการและ ofdukes
butzke ( 1998 ) ใช้สำหรับการวิเคราะห์แอมโมเนียและ
กรดอะมิโนตามลำดับ ยีสต์ assimilable ไนโตรเจน ( ยัน ) เนื้อหา
คำนวณเป็นผลรวมของแอมโมเนีย และกรดอะมิโนเนื้อหา
และแก้ไขกับ diammonium ฟอสเฟตและผลิตภัณฑ์่โคมเมอร์อินทรีย์เมื่อจำเป็น เริ่มเตรียมในเชิงพาณิชย์
ต้องปลูก 2 วันที่ 22
C และเชื้อเป็น centration con ครั้งแรก 10
6
เซลล์ / มิลลิลิตร และกระทำที่ 16 e17
C
ใน 15 ลิตร ถัง . จลนพลศาสตร์การหมักคือตรวจสอบทุกวันโดยความหนาแน่น
การกำหนดจำนวนรับและให้ปริมาณผลิตภัณฑ์ซ้ำชั้น con และน้ำตาลหมัก การปกครองของหัวเชื้อ
สายพันธุ์เป็น verifi จำกัด ed โดยการวิเคราะห์ดีเอ็นเอ
( querol Barrio Huerta &ราโมน , , , 1992 ) 20 สุ่มแยกจาก
ปลูกบนแผ่น ypd เจือจางที่เหมาะสม
การแปล กรุณารอสักครู่..
