2.5. FirmnessFirmness was evaluated

2.5. Firmness
Firmness was evaluated using a texture analyzer (Santam, STM-
1),
fitted with an 8 mm probe with constant speed of 20 mm min1.
Two different measurements were carried out on two opposite
side of central zone of berries in each replicate. Values were
expressed as newton (N).
2.6. Titratable acidity (TA), soluble solid concentration (SSC) and pH
A bulked sample of all fruit with 1/8th of each fruit per replicate
juiced together and used for vitamin C, TA, SSC and pH measurements.
For TA, aliquots of 10 mL were titrated to pH 8.1 with 0.1 N
NaOH and expressed as % citric acid. The juice was also used to
measure SSC using an Atago Digital Refractometer (Brix 0–32%,
Atago, Japan). The pH of fruit juice was measured using a pH meter
(Metrohm, 827).
2.7. Vitamin C assay
Vitamin C content was determined by titration with 2,6-
dichlorophenolindophenol (DCPIP) (AOAC, 2000), using differentAA concentrations for the standard curve, and expressed as
mg kg1 of vitamin by fresh weight.
2.8. Total anthocyanin and total phenolic (TP) concentrations
After
firmness evaluation, a bulked sample of all fruit with 1/8th
of each fruit per replicate were removed, immediately frozen in
liquid nitrogen, and stored at
80
C until used for extraction and
analysis of the total anthocyanin, TP concentration and antioxidant
activity.
Total anthocyanin concentrations (TAC) were determined using
the pH differential method of Cheng and Breen (1991). Absorbance
was measured with spectrophotometer (UV-2100, New Jersey) at
520 nm and 700 nm in buffers at pH 1.0 and 4.5. Results were
expressed as mg kg1 of pelargonidin-3-glucoside on a fresh
weight basis. The absorbance difference between the buffer
systems was calculated according to the Eq. (1):
A
¼
A520
ð A700nm
ÞpH 1:0

A520
A700 ð nm
ÞpH 4:5
ð1Þ
Then, the concentration of total anthocyanin was calculated
according to the Eq. (2):
TAC mg L1



¼ A

MW

DF

1000
e
ð2Þ
MW: molecular weight of the pelargonidin 3-glucoside = 433.39
g mol1.
DF: dilution factor = 10.
e: coefficient of molar absorptivity = 15,600.
TP concentrations were measured by homogenizing 1 g of
frozen tissue from each replicate with 3 mL ice cold 1% HCl–
methanol solution and then centrifuged at 4
C for 15 min at
12,000

g. The supernatant was collected and used for phenol
determination. TP concentration in the extracts were determined
according to the Folin–Ciocalteu procedure (Orthofer and
Lamuela-Raventos, 1999), using gallic acid for the standard curve.
Results were expressed as mg kg1 of gallic acid on a fresh weight
basis.
2.9. Total antioxidant activity (TAA)
Antioxidant activity was determined by the 2,2-diphenyl-1-
picryl-hidrazil (DPPH) radical-scavenging method according to
Sanchez-Moreno et al. (1999). The absorbance was measured at
517 nm, using a spectrophotometer (UV-2100). Total antioxidant
activity was expressed as the percentage inhibition of the DPPH
radical and was determined using the following equation:
TAA % ð
Þ
¼ Abssample 
Abscontrol
Abssample

100
2.10. Microbiological evaluations
Fruit (1/8th of each fruit) per replicate were homogenized and
diluted with sterile peptone water to obtain the microbial count.
Serial dilutions were performed in triplicate. Total aerobic
mesophilic bacteria counts were enumerated using the pour
plate method on the plate count agar (PCA, Scharlau Chemie, S.A.,
Barcelona, Spain) after incubation at 30
C for 2 days. Total yeasts
and molds were enumerated using the surface plate method on
potato dextrose agar (PDA, Scharlau Chemie, SA., Barcelona,
Spain). Incubation for total yeast and mold counts was performed
at 25
C for 2 days. Each test was performed in duplicate and
results were expressed as colony-forming units (CFU) per mL
(Emamifar et al., 2010).

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

2.5. ไอซ์ไอซ์ได้ถูกประเมินโดยใช้การวิเคราะห์เนื้อสัมผัส (Santam อิ-1),อาบตัวโพรบ 8 มม.ด้วยความเร็วคง 20 มม.นาที 1วัดสองแตกต่างกันได้ดำเนินการในสองตรงข้ามด้านของพื้นที่ส่วนกลางของครบในแต่ละซ้ำ ได้ค่าแสดงเป็นนิวตัน (N)2.6. มี titratable (TA), ความเข้มข้นของแข็งละลายน้ำ (SSC) และ pHตัวอย่าง bulked ของผลไม้ทั้งหมดมี 1/8 ของผลไม้แต่ละต่อจำลองjuiced กัน และใช้สำหรับวัด pH และ SSC วิตามินซี TAสำหรับ TA, aliquots 10 mL มี titrated ให้ pH 8.1 ด้วย 0.1 NNaOH และแสดงเป็น%กรดซิตริก น้ำถูกใช้ไปวัด SSC ใช้ Refractometer ดิจิตอลอาตาโกะ (Brix 0-32%อาตาโกะ ญี่ปุ่น) PH ของน้ำผลไม้ถูกวัดโดยใช้เครื่องวัด pH(Metrohm, 827)2.7 ทดสอบวิตามินซีวิตามินซีเนื้อหาถูกกำหนด โดยการไทเทรตกับ 2,6-dichlorophenolindophenol (DCPIP) (AOAC, 2000), ใช้ความเข้มข้น differentAA โค้งมาตรฐาน และแสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1 วิตามินโดยน้ำหนักสด2.8. รวมมีโฟเลทสูงและรวมฟีนอ (TP) ความเข้มข้นหลังจากประเมินไอซ์ ตัวอย่าง bulked ของผลไม้ทั้งหมดมี 1/8ผลไม้แต่ละต่อการจำลองแบบถูกเอาออก แช่แข็งในทันทีไนโตรเจนเหลว และเก็บไว้ที่จนกระทั่งใช้สำหรับสกัด 80 C และวิเคราะห์มีโฟเลทสูงรวม TP ความเข้มข้น และสารต้านอนุมูลอิสระกิจกรรมการความเข้มข้นรวมมีโฟเลทสูง (มาตรวัด) ถูกกำหนดโดยใช้ค่า pH แตกต่างวิธีการเช็งและบรีน (1991) Absorbanceวัด ด้วยเครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-2100, New Jersey) ที่520 nm และ 700 nm ในบัฟเฟอร์ที่ pH 4.5 และ 1.0 ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1 ของ pelargonidin-3-glucoside ในสดน้ำหนักพื้นฐาน ต่าง absorbance บัฟเฟอร์ระบบคำนวณตาม Eq. (1):A¼A520ð A700nmÞpH 1:0A520A700 ð nmÞpH 4:5ð1Þแล้ว คำนวณความเข้มข้นของทั้งหมดมีโฟเลทสูงตาม Eq. (2):มาตรวัด mg L 1
¼ AMWDF1000อีð2ÞMW: น้ำหนักโมเลกุลของ pelargonidin 3-glucoside = 433.39โมล g 1DF: สัดส่วนการเจือจาง = 10e:สัมประสิทธิ์ของสบ absorptivity = 15,600มีวัดความเข้มข้นของ TP โดย homogenizing g 1 ของแช่แข็งเนื้อเยื่อจากแต่ละซ้ำ 3 mL น้ำแข็งเย็น 1% HCl –เมทานอลโซลูชั่น และ centrifuged ที่ C 4 ใน 15 นาทีที่แล้ว12000กรัม supernatant ถูกรวบรวม และใช้สำหรับวางกำหนด ความเข้มข้นของ TP ในบางส่วนถูกกำหนดตามขั้นตอน Folin-Ciocalteu (Orthofer และLamuela-Raventos, 1999) กรด gallic ใช้สำหรับเส้นโค้งมาตรฐานผลลัพธ์ที่แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1 ของกรด gallic ในน้ำหนักสดพื้นฐาน2.9 การกิจกรรมรวมสารต้านอนุมูลอิสระ (แหลมยายณี)กำหนดกิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระ โดยการ 2,2-ฟีนิลได-1 -picryl-hidrazil (DPPH) รัศมี scavenging วิธีตามซาน-Moreno et al. (1999) Absorbance ที่วัดได้517 nm การใช้เครื่องทดสอบกรดด่าง (UV-2100) สารต้านอนุมูลอิสระทั้งหมดกิจกรรมที่แสดงเป็นยับยั้งเปอร์เซ็นต์ของ DPPHรุนแรง และถูกกำหนดโดยใช้สมการต่อไปนี้:Ð%แหลมยายณีÞ¼ AbssampleAbscontrolAbssample1002.10 การทางจุลชีววิทยาการประเมินผลไม้ (1/8 ของผลไม้แต่ละ) ต่อการจำลองแบบถูก homogenized เป็นกลุ่ม และผสมกับน้ำ peptone กอซเพื่อขอรับการตรวจนับจุลินทรีย์Dilutions ประจำถูกดำเนินการใน triplicate แอโรบิกรวมการตรวจนับแบคทีเรีย mesophilic ได้ระบุใช้เทวิธีแผ่นใน agar จำนวนของแผ่น (PCA, Scharlau Chemie, S.A.บาร์เซโลน่า สเปน) หลังจากบ่มที่ 30 C วัน 2 Yeasts รวมและแม่พิมพ์ที่ระบุโดยใช้วิธีการพื้นผิวแผ่นบนมันฝรั่งขึ้น agar (PDA, Scharlau Chemie, SA. บาเซโลน่าสเปน) ทำการบ่มสำหรับนับจำนวนยีสต์และราทั้งหมดที่ 25 C 2 วัน ทำการทดสอบแต่ละสำเนา และผลลัพธ์ที่แสดงเป็นอาณานิคมขึ้นหน่วย (CFU) ต่อมิลลิลิตร(Emamifar et al., 2010)

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

2.5 ความแน่นกระชับได้รับการประเมินโดยใช้วิเคราะห์พื้นผิว (Santam, STM- 1) เหมาะกับการสอบสวน 8 มมด้วยความเร็วคงที่ 20 มิลลิเมตรนาที? 1. สองวัดที่แตกต่างกันออกไปทั้งสองตรงข้ามกับด้านข้างของเขตภาคกลางของผลเบอร์รี่ในแต่ละซ้ำ. ค่านิยมที่ถูกแสดงเป็นนิวตัน (N). 2.6 ปริมาณกรด (TA) ความเข้มข้นของแข็งที่ละลายน้ำได้ (SSC) และค่า pH ตัวอย่างเนื้อมีหนังของผลไม้ทั้งหมดที่มี 1/8 ของผลไม้ต่อทำซ้ำแต่ละjuiced ร่วมกันและใช้สำหรับวิตามิน C, TA, เอสเอสและการวัดค่า pH. สำหรับ TA, aliquots 10 มิลลิลิตรถูกปรับขนาดตามค่า pH 8.1 0.1 N NaOH และแสดงเป็น% กรดซิตริก น้ำผลไม้ยังถูกใช้ในการวัด SSC ใช้ Atago Refractometer ดิจิตอล (Brix 0-32% Atago ญี่ปุ่น) พีเอชของน้ำผลไม้ที่ได้รับการวัดโดยใช้ค่า pH เมตร(เมทโธรห์, 827). 2.7 ทดสอบวิตามิน C วิตามิน C เนื้อหาถูกกำหนดโดยการไตเตรทกับ 2,6- dichlorophenolindophenol (DCPIP) (AOAC, 2000) โดยใช้ความเข้มข้น differentAA สำหรับโค้งมาตรฐานและแสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม1 ของวิตามินโดยน้ำหนักสด. 2.8 anthocyanin รวมและฟีนอลรวม (TP) ความเข้มข้นหลังจากการประเมินผลความแน่นตัวอย่างเนื้อมีหนังของผลไม้ทั้งหมดที่มี1/8 ของผลไม้ต่อทำซ้ำแต่ละถูกถอดออกแช่แข็งทันทีในไนโตรเจนเหลวและเก็บไว้ที่? 80? C จนใช้ในการสกัดและการวิเคราะห์ของ anthocyanin รวมความเข้มข้นของสารต้านอนุมูลอิสระและ TP กิจกรรม. ความเข้มข้น anthocyanin รวม (TAC) ได้รับการพิจารณาโดยใช้วิธีการที่แตกต่างกันของพีเอชและบรีนเฉิง(1991) การดูดกลืนแสงวัดกับ spectrophotometer (UV-2100, นิวเจอร์ซีย์) ที่ 520 นาโนเมตรและ 700 นาโนเมตรในบัฟเฟอร์ที่ pH 1.0 และ 4.5 ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1 ของ pelargonidin-3-glucoside สดบนพื้นฐานน้ำหนัก ความแตกต่างระหว่างการดูดกลืนแสงบัฟเฟอร์ระบบที่คำนวณได้ตามสมการ (1): ¼ A520 ð A700nm? ÞpH 1: 0? A520 A700 ðนาโนเมตร? ÞpH 4: 5 ð1Þจากนั้นความเข้มข้นของ anthocyanin รวมที่คำนวณได้ตามสมการ (2): TAC mg L 1??? ¼? เมกะวัตต์? DF? 1000 อีð2Þเมกะวัตต์: น้ำหนักโมเลกุลของ pelargonidin 3 glucoside = 433.39 กรัมโมล 1. DF: ปัจจัยที่ทำให้เจือจาง = 10 อีเมล์: ค่าสัมประสิทธิ์ของฟันกราม ดูดซึม = 15,600. ความเข้มข้น TP ถูกวัดโดย homogenizing 1 กรัมของเนื้อเยื่อแช่แข็งจากแต่ละทำซ้ำ3 มิลลิลิตรน้ำแข็งเย็น 1% HCl- วิธีการแก้ปัญหาและเมทานอลจากนั้นหมุนเหวี่ยงที่ 4 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 15 นาทีที่12,000? กรัม สารละลายที่ถูกเก็บรวบรวมและใช้สำหรับฟีนอลมุ่งมั่น ความเข้มข้นของ TP ในสารสกัดได้รับการพิจารณาตามขั้นตอนFolin-Ciocalteu (Orthofer และLamuela-Raventos, 1999) โดยใช้กรดฝรั่งเศสสำหรับกราฟมาตรฐาน. ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม 1 ของกรดฝรั่งเศสในน้ำหนักสดพื้นฐาน. 2.9 . รวมสารต้านอนุมูลอิสระ (TAA) กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระได้รับการกำหนดโดย 2,2-diphenyl-1 picryl-hidrazil (DPPH) วิธีการที่รุนแรง-ไล่ตามSanchez-et al, เรโน (1999) การดูดกลืนแสงที่ได้รับการวัดที่517 นาโนเมตรโดยใช้สเปก (UV-2100) สารต้านอนุมูลอิสระรวมกิจกรรมที่ได้รับการแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์การยับยั้งของ DPPH รุนแรงและได้รับการพิจารณาโดยใช้สมการต่อไปนี้: TAA% d Þ? ¼ Abssample Abscontrol Abssample? 100 2.10 การประเมินผลทางจุลชีววิทยาผลไม้ (1/8 ของแต่ละผลไม้) ต่อซ้ำถูกปั่นและเจือจางด้วยน้ำเปปโตนผ่านการฆ่าเชื้อที่จะได้รับการนับจุลินทรีย์. เจือจางอนุกรมได้ดำเนินการในเพิ่มขึ้นสามเท่า แอโรบิกรวมแบคทีเรีย mesophilic นับถูกระบุโดยใช้เทวิธีแผ่นบนแผ่นวุ้นนับ(PCA, Scharlau Chemie, SA, บาร์เซโลนา, สเปน) หลังจากการบ่มที่อุณหภูมิ 30 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2 วัน รวมยีสต์และราที่ถูกระบุโดยใช้วิธีการแผ่นพื้นผิววุ้นเดกซ์โทรสมันฝรั่ง(PDA, Scharlau Chemie, SA. บาร์เซโลนา, สเปน) บ่มเพาะสำหรับยีสต์รวมและนับแม่พิมพ์ที่ได้ดำเนินการอยู่ที่ 25 องศาเซลเซียสเป็นเวลา 2 วัน แต่ละการทดสอบได้รับการดำเนินการในที่ซ้ำกันและผลการวิจัยที่แสดงเป็นหน่วยอาณานิคมขึ้นรูป (CFU) ต่อมิลลิลิตร (Emamifar et al., 2010)

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

2.5 ความแน่น กระชับ ถูกประเมินโดยใช้เนื้อ
Analyzer ( santam STM -
1
พอดีกับความยาว 8 ตัว ความเร็วคงที่ 20 มม มิน  1
2 การวัดแตกต่างกัน พบว่า ทั้งสองฝั่งตรงข้าม
ของโซนกลางของผลในแต่ละจําลอง ค่าแสดงเป็น นิวตัน ( N )
.
2.6 ปริมาณกรด ( TA ) ปริมาณของแข็งที่ละลายน้ำ ( SSC ) และ pH
เป็นยกตัวอย่างของผล 1 / 8 ของแต่ละผลต่อ ทำซ้ำ
Juiced ด้วยกันและใช้วิตามินซี ทา SSC และการวัด pH .
สำหรับทาเฉยๆ 10 มิลลิลิตร pH pH 8.1 0.1 N
NaOH และแสดงเป็น % กรดซิตริก น้ำยังใช้
SSC วัดโดยใช้ atago ( Brix Refractometer ดิจิตอล 0 – 32 %
atago , ญี่ปุ่น ) ความเป็นกรดของน้ำผลไม้คือการวัดโดยใช้เครื่องวัด
( metrohm 827 , ) .
2.7 . วิตามิน C (
วิตามินซีถูกตัดสินใจโดยไทเทรตกับ 2,6 -
dichlorophenolindophenol ( dcpip ) ( โปรตีน , 2000 ) , การใช้ differentaa ความเข้มข้นสำหรับเส้นโค้งมาตรฐาน และแสดงเป็น
 1 มิลลิกรัมต่อกิโลกรัมของวิตามินโดยน้ำหนักสด
2.8 . แอนโธไซยานินทั้งหมดและรวมฟีนอล ( TP )

( หลังจากการประเมินความแน่น , ยก ตัวอย่างของผลไม้กับ 1 / 8
ของผลไม้แต่ละ ต่อ ซ้ำถูกถอดออกทันที แช่แข็งในไนโตรเจนเหลวและเก็บไว้ที่
,
 80
C จนกระทั่งใช้สำหรับการสกัดและการวิเคราะห์ของแอนโธไซยานิน
รวมและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของ TP
.
ปริมาณแอนโธไซยานินทั้งหมด ( TAC ) คำนวณโดยใช้วิธีดิฟ
อเฉิง และ บรีน ( 2534 ) . การดูดกลืนแสง Spectrophotometer ( วัดด้วย

uv-2100 , New Jersey )520 nm และ 700 nm ในบัฟเฟอร์พีเอช 1.0 และ 4.5 . ผลลัพธ์ที่ได้
แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม  1 pelargonidin-3-glucoside บนพื้นฐานน้ำหนักสด

นความแตกต่างระหว่างกันชน
ระบบก็คำนวณตามอีคิว ( 1 ) :



ðเป็น¼ a520  a700nm
Þ pH 1 : 0


 a520 มากð nm
Þ pH 4 : 5
ð 1 Þ
แล้ว ความเข้มข้นของแอนโธไซยานินทั้งหมดถูกคำนวณ
เป็นไปตามอีคิว ( 2 ) :
แทค mg L  1




 ¼เป็น 


 เมกะวัตต์DF


E
 1000 ð 2 Þ
MW : น้ำหนักโมเลกุลของ pelargonidin 3-glucoside = 433.39
g mol  1 .
df : เจือจางปัจจัย = 10
E : สัมประสิทธิ์การดูดกลืนแสงโมล = 15 , 600 .
TP เท่ากับวัดจากการเติม 1 g
แช่แข็งเนื้อเยื่อจากแต่ละซ้ํากับ 3 สกัดเย็น 1 % HCL –โซลูชั่นและระดับ
เมทานอลที่ 4
เป็นเวลา 15 นาทีที่ 12


 Gการรวบรวมและนำใช้ฟีนอล
ความมุ่งมั่น TP ความเข้มข้นในแยกวิเคราะห์
ตามการ folin – ciocalteu ขั้นตอน ( orthofer และ
lamuela raventos , 1999 ) การใช้เพิ่มขึ้นสำหรับเส้นโค้งมาตรฐาน
ผลลัพธ์ที่ได้แสดงเป็นมิลลิกรัมต่อกิโลกรัม  1 ของกรดแกลลิคบนพื้นฐานน้ำหนักสด
.
2.9 . ต้านอนุมูลอิสระทั้งหมด ( TAA )
สารต้านอนุมูลอิสระถูกกำหนดจาก 22-diphenyl-1 -
picryl hidrazil ( dpph ) เป็นตัวเร่งปฏิกิริยาวิธีตาม
ซานเชส Moreno et al . ( 1999 ) นเป็นวัดที่
517 นาโนเมตรโดยใช้ Spectrophotometer ( uv-2100 ) ต้านอนุมูลอิสระ
ทั้งหมดถูกแสดงเป็นเปอร์เซ็นต์การยับยั้งของ dpph
รุนแรงและถูกกำหนดโดยใช้สมการต่อไปนี้ : % ð


ถ้าÞ¼ abssample  abscontrol




abssample  100 2.10 .จุลชีววิทยาการประเมิน
ผลไม้ ( 1 / 8 ของผลไม้แต่ละ ต่อ ซ้ำถูกบดและ
เจือจางด้วยน้ำหมัน ตามลำดับเพื่อให้ได้นับจุลินทรีย์ .
อนุกรมเจือจาง มีการปฏิบัติทั้งสามใบ ทั้งหมดมีแบคทีเรียแอโรบิก
นับได้ระบุการใช้เท
วิธีเพลทบนจานนับ ( PCA scharlau chemie .
, บาร์เซโลนา , สเปน ) หลังจากบ่มที่อุณหภูมิ 30
C เป็นเวลา 2 วัน
รวมและรามีปริมาณยีสต์ ระบุใช้วิธีแผ่นผิว
อาหารเลี้ยงเชื้อ potato dextrose agar ( PDA , scharlau CHEMIE , SA , บาร์เซโลนา ,
สเปน ) การบ่มยีสต์และราทั้งหมดนับได้

ที่ 25 C เป็นเวลา 2 วัน การทดสอบแต่ละครั้งจะแสดงในผลลัพธ์และถูกแสดงเป็นรูปซ้ำ
( CFU ) หน่วยโคโลนีต่อมิลลิลิตร
( emamifar et al . , 2010 )