LAB screening from various parts of

LAB screening from various parts of GI tracts of animals
is also used a modified MRS medium. In this case,
high producing lactic acid of LAB isolates that are usually
found in the GI tracts of animals may require some
substrates for suitable growths such as pH conditions
and nutrients. LAB has been isolated from GI tracts of
animals using a modified MRS medium by adding
0.3–1 % (w/v) CaCO3. This medium has been used to
isolate LAB successfully in various animals, including
chickens [62, 98], cattle [108] and dogs [99]. The
medium has also been used to cultivate LAB from
traditional fermented foods which were made from
various raw materials such as fish (Pla-chom) [102]
and beef (Mum) [29]. LAB was cultivated from fermented
foods in acidic conditions such as a traditional
pickle food using medium consisting the most
of glucose, yeast extract and peptone and 0.5 % (w/v)
CaCO3 [105].
LAB species were isolated from an air surrounding
sourdough and bakery room productions. Identification
of these LAB using molecular methods depends on
culture-dependent assays that they were cultivated using
MRS-5, a modified version of high nutritional MRS
medium [109], for a sample enrichment that these LAB
were successfully growths [27]. Thus, screening of probiotic
LAB from uncommon sources, such as soil and
air can be succeeded using accumulation methods that
they are cultivated using high nutrition modified MRS
medium such as MRS-5 and GYP plus BM medium
under anaerobic conditions.
Screening of some intestinal LAB probiotic and Bifidobacteria
are also not easy using the best anaerobic culture
methods because a large complex bacterial
community inhabiting the GI tract and many species of
the microbes have never been cultivated under laboratory
environments. Indigenous microbiota in intestinal
sources in both humans and animals are identified by
two main methods. The first one, a culture-based
method, is observed phenotype characteristics including
biochemical, physiological and morphological tests in accordance
with Bergey’s Manual. The culture-based
method associated with biological molecular technique
is a way for more effective identifications. The second
one, a culture-independent method is considered as alternative
techniques to investigate the large proportion
of the both cultured and uncultured bacteria in GI
tracts. These methods are developed to discriminate between
species of bacteria from the difference of their
DNA fragments in band profiles, such as the PCR in Denaturing
Gradient Gel Electrophoresis (PCR-DGGE) and
the PCR in Temperature Gradient Gel Electrophoresis
(PCR-TGGE). The fluorescence in situ hybridization
(FISH) technique was also used to detect the uncultured
bacteria [110]. Biochemical testing of LAB identification
is widely used by carbohydrate fermentation patterns
such as the API (API system, Biomerieux, France). Biological
molecular methods have been increasingly used
and there are many methods, including a DNA base
composition (mol % of guanine plus cytosine), a DNA
homology accompanied with polymerase chain reaction
(PCR) technique and DNA sequencing using 16S rRNA
gene region. 16S rRNA gene sequencing is developed
to simplify sequences using species-specific PCR
primers that targeted some regions of lactobacilli such
as the 16S – 23S rRNA spacer region [111], the shuttle
cloning vector to extract the bacterial plasmids [112],
internal transcribed spacer PCR (ITS-PCR) [113] and
amplifications with amplified ribosomal DNA restriction
analysis (ARDRA) [114]. Fingerprinting techniques
are the methods to differentiate the microbial community
at strain levels. These methods have been developed to
discriminate strains of LAB, especially lactobacilli, including
the ribotyping [115], randomly amplified polymorphic
DNA (RAPD)-PCR [116], amplified fragment length polymorphism
(AFLP) [117], plasmid profiling [118] and
pulsed-field gel electrophoresis (PFGE) [112]. A PFGE

ผลลัพธ์ (ไทย) 1:

ห้องปฏิบัติการตรวจคัดกรองจากส่วนต่าง ๆ ของซึ่งอาหารสัตว์คือยัง ใช้สื่อนางแก้ไข ในกรณีนี้สูงผลิตกรดแลคติของห้องปฏิบัติแยกที่มักพบในอาหารสัตว์ซึ่งอาจจำเป็นต้องบางพื้นผิวสำหรับการเจริญเติบโตที่เหมาะสมเช่นสภาวะ pHและสารอาหาร ห้องปฏิบัติได้รับการแยกจากซึ่ง GIสัตว์ที่ใช้ MRS กลางแก้ไข โดยการเพิ่ม0.3 – 1% (w/v) CaCO3 มีการใช้สื่อนี้แยกห้องปฏิบัติสำเร็จในสัตว์ต่าง ๆ รวมทั้งไก่ [62, 98], วัว [108] และสุนัข [99] การยังถูกใช้สื่อปลูกแล็บจากอาหารหมักดั้งเดิมซึ่งทำจากวัตถุดิบต่าง ๆ เช่นปลา (ปลา-ชม) [102]และเนื้อ (Mum) [29] ห้องปฏิบัติถูกปลูกฝังจากหมักอาหารในสภาพที่เป็นกรดเช่นแบบดั้งเดิมอาหารดองโดยใช้สื่อประกอบด้วยมากสุดกลูโคส สารสกัดจากยีสต์ และ peptone และ 0.5% (w/v)CaCO3 [105]สายพันธุ์ห้องปฏิบัติได้แยกต่างหากจากอากาศรอบตัวผลิตห้อง sourdough และเบเกอรี่ รหัสของห้องปฏิบัติการเหล่านี้ โดยใช้วิธีการระดับโมเลกุลขึ้นอยู่กับขึ้นอยู่กับวัฒนธรรม assays ที่เคยใช้เพาะปลูกMRS-5 เวอร์ชันแก้ไขของ MRS ทางโภชนาการสูงปานกลาง [109], สำหรับตกแต่งเป็นตัวอย่างที่ห้องปฏิบัติการเหล่านี้ได้ประสบความสำเร็จเจริญเติบโต [27] ดังนั้น การคัดกรองของโปรไบโอติกห้องปฏิบัติการจากเรื่องแหล่งที่มา เช่นดิน และอากาศสามารถประสบความสำเร็จโดยใช้วิธีการสะสมที่พวกเขาจะปลูกโดยใช้คุณค่าทางโภชนาการสูงแก้ไขนางปานกลางเช่น MRS-5 และ GYP บวก BM ปานกลางภายใต้เงื่อนไขที่ไม่ใช้ออกซิเจนคัดกรองของโปรไบโอติกแล็บที่ลำไส้และ Bifidobacteriaจะยังทำให้การใช้วัฒนธรรมดีที่สุดไม่ใช้ออกซิเจนวิธีเนื่องจากแบคทีเรียซับซ้อนขนาดใหญ่ชุมชนที่อาศัยอยู่ในทางเดินอาหารและหลายสายพันธุ์จุลินทรีย์ไม่เคยมีการเพาะปลูกภายใต้ห้องปฏิบัติการสภาพแวดล้อม จุลินทรีย์ท้องถิ่นในลำไส้ระบุแหล่งในมนุษย์และสัตว์สองวิธีหลัก คนแรก วัฒนธรรมคะแนนวิธี เป็นที่สังเกตกนิลักษณะรวมทั้งการทดสอบทางชีวเคมี สรีรวิทยา และสัณฐานตามมีคู่มือของ Bergey วัฒนธรรมตามวิธีเชื่อมโยงกับเทคนิคทางชีววิทยาโมเลกุลเป็นวิธีการสำหรับรหัสที่มีประสิทธิภาพมากขึ้น ครั้งที่สองหนึ่ง วิธีการอิสระวัฒนธรรมถือเป็นทางเลือกเทคนิคการตรวจสอบสัดส่วนขนาดใหญ่ของแบคทีเรียทั้งล้าง และ uncultured ใน GIในสถานที่ มีพัฒนาวิธีการแยกแยะระหว่างสายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรียจากผลต่างของพวกเขาชิ้นส่วนดีเอ็นเอในโปรไฟล์วง เช่น PCR ใน Denaturingอิเจไล่ระดับสี (PCR-DGGE) และPCR ในอุณหภูมิเจอิ(PCR-TGGE) เรืองแสงเสถียร hybridizationเทคนิค (ปลา) ยังใช้ในการตรวจสอบที่ unculturedแบคทีเรีย [110] การทดสอบทางชีวเคมีของรหัสห้องปฏิบัติการใช้รูปแบบการหมักคาร์โบไฮเดรตอย่างกว้างขวางเช่น API (ระบบ API, Biomerieux ฝรั่งเศส) ทางชีวภาพวิธีที่โมเลกุลมีการใช้มากขึ้นมีหลายวิธี รวมถึงฐานดีเอ็นเอองค์ประกอบ (โมล%ของอดีนีน), ดีเอ็นเอhomology พร้อมปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรสเทคนิค (PCR) และลำดับดีเอ็นเอโดยใช้ 16S rRNAภูมิภาคที่ยีน 16S rRNA ยีนลำดับได้รับการพัฒนาเพื่อทำให้ลำดับโดยใช้ PCR สายไพรเมอร์ที่บางภูมิภาคของแลคโตเช่นการกำหนดเป้าหมายเป็น 16S – 23S rRNA spacer ภูมิภาค [111] รถรับส่งเวกเตอร์การแยก plasmids แบคทีเรีย [112], โคลนภายในนั้นปรากฏ spacer PCR (ของ-PCR) [113] และamplifications กับขยาย ribosomal ดีเอ็นเอจำกัดวิเคราะห์ (ARDRA) [114] เทคนิคลายพิมพ์วิธีการแยกชุมชนจุลินทรีย์มีระดับความเครียด วิธีการเหล่านี้ได้รับการพัฒนาเพื่อสายพันธุ์แยกแยะของห้องปฏิบัติการ โดยเฉพาะอย่างยิ่งแลคโต รวมทั้งribotyping [115], สุ่มขยาย polymorphicดีเอ็นเอ (RAPD) -PCR [116], ขยายความแตกต่างของความยาวส่วน(AFLP) [117], plasmid ทำโปรไฟล์ [118] และฟิลด์พร้อมเจลอิ (PFGE) [112] PFGE การ

ผลลัพธ์ (ไทย) 2:

การตรวจคัดกรอง LAB จากส่วนต่างๆของผืน GI ของสัตว์
นอกจากนี้ยังใช้เป็นสื่อ MRS การแก้ไข ในกรณีนี้
สูงผลิตกรดแลคติกของเชื้อ LAB ที่มักจะ
พบในผืน GI ของสัตว์อาจต้องมี
พื้นผิวสำหรับการเจริญเติบโตที่เหมาะสมเช่นสภาพความเป็นกรดด่าง
และสารอาหาร LAB ได้รับการแยกออกจากผืน GI ของ
สัตว์โดยใช้สื่อ MRS แก้ไขโดยการเพิ่ม
0.3-1% (w / v) CaCO3 สื่อนี้ได้ถูกนำมาใช้เพื่อ
แยก LAB ประสบความสำเร็จในสัตว์ต่าง ๆ รวมทั้ง
ไก่ [62, 98] วัว [108] และสุนัข [99]
กลางยังได้ถูกนำมาใช้เพื่อปลูกฝัง LAB จาก
อาหารหมักดองแบบดั้งเดิมที่ทำจาก
วัตถุดิบต่างๆเช่นปลา (Pla-Chom) [102]
และเนื้อวัว (แม่) [29] LAB ได้รับการปลูกฝังจากการหมัก
อาหารในสภาพที่เป็นกรดเช่นดั้งเดิม
อาหารดองโดยใช้สื่อที่ประกอบด้วยส่วนใหญ่
ของน้ำตาลกลูโคส, สารสกัดจากยีสต์และเปปโตนและ 0.5% (w / v)
CaCO3 [105].
สายพันธุ์ LAB ที่แยกได้จากอากาศรอบ
sourdough และ ห้องเบเกอรี่โปรดักชั่น บัตรประจำตัว
ของเหล่านี้ห้องปฏิบัติการโดยใช้วิธีการโมเลกุลขึ้นอยู่กับ
การวิเคราะห์วัฒนธรรมขึ้นอยู่กับว่าพวกเขาได้รับการปลูกฝังใช้
MRS-5 รุ่นที่ปรับเปลี่ยน MRS ทางโภชนาการสูง
กลาง [109] สำหรับการเพิ่มปริมาณตัวอย่างที่เหล่านี้ห้องปฏิบัติการ
ได้รับการประสบความสำเร็จในการเจริญเติบโต [27] ดังนั้นการตรวจคัดกรองของโปรไบโอติก
LAB จากแหล่งที่ผิดปกติเช่นดินและ
อากาศสามารถประสบความสำเร็จโดยใช้วิธีการสะสมที่
พวกเขาจะได้รับการปลูกฝังใช้ MRS โภชนาการสูงมีการปรับเปลี่ยน
ขนาดกลางดังกล่าวเป็นสื่อกลางใน MRS-5 และ GYP บวก BM
ภายใต้สภาวะไร้ออกซิเจน.
คัดเลือกบาง LAB ลำไส้ โปรไบโอติกและไบฟิโดแบคทีเรีย
ยังไม่ง่ายที่ดีที่สุดโดยใช้วัฒนธรรมแบบไม่ใช้ออกซิเจน
วิธีเพราะมีขนาดใหญ่แบคทีเรียที่ซับซ้อน
ชุมชนที่พำนักอยู่ทางเดินอาหารและอีกหลายสายพันธุ์ของ
เชื้อจุลินทรีย์ที่ไม่เคยได้รับการปลูกฝังในห้องปฏิบัติการภายใต้
สภาพแวดล้อม microbiota พื้นเมืองในลำไส้
แหล่งทั้งในมนุษย์และสัตว์ที่มีการระบุโดย
สองวิธีหลัก ครั้งแรกหนึ่งวัฒนธรรมตาม
วิธีการที่เป็นที่สังเกตลักษณะฟีโนไทป์รวมทั้ง
ทางชีวเคมีสรีรวิทยาและสัณฐานวิทยาการทดสอบตาม
พร้อมกับคู่มือ Bergey ของ วัฒนธรรมตาม
วิธีการที่เกี่ยวข้องกับเทคนิคทางชีวภาพโมเลกุล
เป็นวิธีการที่ระบุมีประสิทธิภาพมากขึ้น ที่สอง
หนึ่งวิธีการที่วัฒนธรรมอิสระถือเป็นทางเลือกที่
เทคนิคในการตรวจสอบส่วนใหญ่
ของเชื้อแบคทีเรียทั้งการเพาะเลี้ยงและไม่มีมารยาทใน GI
ผืน วิธีการเหล่านี้มีการพัฒนาเพื่อแยกแยะระหว่าง
สายพันธุ์ของเชื้อแบคทีเรียจากความแตกต่างของพวกเขา
ชิ้นส่วนดีเอ็นเอในโปรไฟล์วงเช่น PCR ใน denaturing
ไล่โทนสี gel electrophoresis (PCR-DGGE) และ
PCR ในอุณหภูมิไล่โทนสี gel electrophoresis
(PCR-TGGE) เรืองแสงในแหล่งกำเนิดพันธุ์
(FISH) เทคนิคยังถูกนำมาใช้ในการตรวจสอบไม่มีมารยาท
แบคทีเรีย [110] การทดสอบทางชีวเคมีของประชาชน LAB
ถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายโดยรูปแบบการหมักคาร์โบไฮเดรต
เช่นของ API (ระบบ API, Biomerieux ฝรั่งเศส) ทางชีวภาพ
วิธีโมเลกุลที่มีการใช้มากขึ้น
และมีวิธีการมากมายรวมทั้งฐานดีเอ็นเอ
องค์ประกอบ (mol% ของ guanine บวก cytosine) ดีเอ็นเอ
ที่คล้ายคลึงกันพร้อมกับวิธี Polymerase chain reaction
(PCR) และลำดับดีเอ็นเอโดยใช้ 16S rRNA
ภูมิภาคยีน 16S rRNA ยีนลำดับมีการพัฒนา
เพื่อลดความซับซ้อนลำดับโดยใช้สายพันธุ์เฉพาะ PCR
ไพรเมอร์ที่มีการกำหนดเป้าหมายพื้นที่บางส่วนของแลคโตดังกล่าว
เป็น 16S - 23S rRNA ภูมิภาค spacer [111], บริการรถรับส่ง
พาหะในการสกัดพลาสมิดแบคทีเรีย [112]
spacer ถ่ายทอดภายใน PCR (ITS-PCR) [113] และ
เครื่องขยายเสียงที่มีข้อ จำกัด การขยายโซมอลดีเอ็นเอ
วิเคราะห์ (ARDRA) [114] เทคนิคการพิมพ์ลายนิ้วมือ
เป็นวิธีการที่จะแยกความแตกต่างในชุมชนจุลินทรีย์
ในระดับความเครียด วิธีการเหล่านี้ได้รับการพัฒนาเพื่อให้
เห็นความแตกต่างของสายพันธุ์ LAB โดยเฉพาะอย่างยิ่งแลคโตรวมทั้ง
ribotyping [115] สุ่มขยาย polymorphic
DNA (RAPD) -PCR [116] ขยายความยาวชิ้นส่วน polymorphism
(AFLP) [117], พลาสมิดโปรไฟล์ [118] และ
ชีพจรสนามข่าวคราว (PFGE) [112] PFGE

ผลลัพธ์ (ไทย) 3:

ห้องปฏิบัติการตรวจคัดกรองจากส่วนต่าง ๆของ กี โฆษกของสัตว์นอกจากนี้ยังใช้โดยคุณกลาง ในกรณีนี้สูงการผลิตกรดแลคติกแลป สายพันธุ์ที่มักจะที่พบในทางเดินอาหารของสัตว์ อาจต้องใช้กิสารอาหารสำหรับการเจริญเติบโตที่เหมาะสม เช่น สภาพอและรัง แล็บได้ถูกแยกจาก กี โฆษกของสัตว์ที่ใช้แก้ไข นางกลาง โดยการเพิ่ม0.3 - 1% ( w / v ) CaCO3 . กลางนี้จะถูกใช้เพื่อแยกห้องเรียบร้อยแล้วในสัตว์ต่าง ๆ ได้แก่ไก่ [ 62 , 98 ] โค [ 108 ] สุนัข [ 99 ] ที่สื่อยังถูกใช้เพื่อฝึกฝน ทดลองจากอาหารหมักพื้นบ้านที่ทำจากวัตถุดิบต่างๆ เช่น ปลา ( ปลาโฉม ) [ 102 ]และเนื้อ ( แม่ ) [ 29 ] ทดลองปลูกจากการหมักคืออาหารในภาวะเป็นกรด เช่น แบบดั้งเดิมอาหารดองที่ใช้สื่อประกอบมากที่สุดกลูโคส , สารสกัดจากยีสต์และ extract 0.5% ( w / v )CaCO3 [ 105 ]แล็บชนิดแยกจากอากาศรอบ ๆแป้งหมัก และห้องเบเกอรี่ การผลิต ระบุปฏิบัติการโดยใช้วิธีโมเลกุลเหล่านี้ขึ้นอยู่กับวัฒนธรรม ) ขึ้นอยู่กับว่าพวกเขาปลูกโดยใช้mrs-5 , แก้ไขเวอร์ชันของนางทางโภชนาการสูงกลาง [ 109 ] ตัวอย่างการเสริมเหล่านี้แล็บมีความเจริญ [ 27 ] ดังนั้น การคัดเลือกโปรไบโอติกLab จากแหล่งพิสดาร เช่น ดินอากาศสามารถประสบความสำเร็จใช้วิธีการสะสมที่พวกเขาจะปลูกโดยใช้สารอาหารสูงแก้ไขคุณนายปานกลาง เช่น mrs-5 จิ๊ปบวกและ BM ขนาดกลางภายใต้เงื่อนไขแบบไม่ใช้ออกซิเจนการคัดเลือกโปรไบโอติก และบิฟิโดแบคทีเรียในลำไส้ บางแลปยังไม่ได้ใช้งานง่าย วัฒนธรรมแบบที่ดีที่สุดวิธีการขนาดใหญ่ที่ซับซ้อน เนื่องจากแบคทีเรียชุมชนที่อาศัยอยู่ในทางเดินอาหารและหลายชนิดจุลินทรีย์ที่ไม่เคยปลูกภายใต้ห้องปฏิบัติการสภาพแวดล้อม ไมโครไบโ ้าพื้นเมืองในลําไส้แหล่งข้อมูลทั้งในมนุษย์และสัตว์จะถูกระบุโดยสองวิธีหลัก ชิ้นแรก เป็นวัฒนธรรมพื้นฐานวิธี คือ การสังเกตลักษณะ ได้แก่การทดสอบทางชีวเคมี สรีรวิทยา และตามพร้อมคู่มือวิธี . วัฒนธรรมจากวิธีการที่เกี่ยวข้องกับเทคนิคทางชีววิทยาโมเลกุลเป็นวิธีสำหรับการแสดงตัวของมีประสิทธิภาพมากขึ้น สองหนึ่ง , วัฒนธรรมอิสระ วิธีการถือว่าเป็นทางเลือกเทคนิคเพื่อศึกษาสัดส่วนใหญ่ของทั้งเลี้ยงและไร้การศึกษาแบคทีเรียในกีใบปลิว วิธีการเหล่านี้ได้ถูกพัฒนาขึ้นเพื่อแยกแยะระหว่างสายพันธุ์ของแบคทีเรียจากความแตกต่างของพวกเขาดีเอ็นเอในรูปแบบวง เช่น PCR ในี่การไล่ระดับสี gel electrophoresis ( ดีเอ็นเอ 9 แถบบ่งชี้ ) และการตรวจอุณหภูมิลาดเจล( pcr-tgge ) เรืองแสงใน situ hybridization( ปลา ) ซึ่งเป็นเทคนิคที่ถูกใช้เพื่อตรวจหาไร้การศึกษาแบคทีเรีย [ 110 ] การทดสอบทางชีวเคมีของตัวในฝันถูกใช้อย่างกว้างขวางโดยการหมักแบบคาร์โบไฮเดรตเช่น API ( ระบบ biomerieux ฝรั่งเศส API ) ทางชีวภาพวิธีการได้รับมากขึ้นที่ใช้โมเลกุลและมีหลายวิธี ได้แก่ ฐานดีเอ็นเอส่วนประกอบ ( โมล % ของกวานีนพลัสไซโตซีน ) , ดีเอ็นเอซึ่งตามมาด้วยปฏิกิริยาลูกโซ่พอลิเมอเรส( PCR ) และใช้เทคนิคดีเอ็นเอลำดับเบส 16S rRNAยีน ) ลำดับเบส 16S rRNA ยีนถูกพัฒนาขึ้นลำดับการใช้เพื่อลดความซับซ้อนโดยเฉพาะ - ขยายพันธุ์ไพรเมอร์ที่เป้าหมายบางภูมิภาค เช่น แลคโตบาซิลไล23s rRNA ( ) เป็นภูมิภาคหนึ่ง [ 111 ] , ส่งการแยกแบคทีเรียเวกเตอร์พลาสมิด [ 112 ]ภายในและ spacer PCR ( its-pcr ) [ 113 ] และamplifications กับข้อ จำกัด ของดีเอ็นเอ ไรโบโซมอลการวิเคราะห์ ( ardra ) [ 114 ] รูปแบบเทคนิคเป็นวิธีการที่จะทำให้ชุมชนจุลินทรีย์ความเครียดในระดับ วิธีการเหล่านี้ได้ถูกพัฒนาขึ้นเพื่อสายพันธุ์ระหว่างห้องปฏิบัติการ โดยเฉพาะอย่างยิ่ง แลคโตบาซิลไล ได้แก่การ ribotyping [ 115 ] สุ่ม amplified polymorphicDNA ( RAPD ) - PCR [ 116 ] , amplified fragment length polymorphism( AFLP ) [ 117 ] [ 118 ] และพลาสมิดโปรไฟล์พัลฟิลด์ gel electrophoresis ( PFGE ) [ 112 ] เป็น PFGE